In this work we investigated coupling of the m2 and m4 subtypes of muscarinic acetylcholine receptors expressed in chinese hamster ovary (CHO) cells to activation of neuronal nitric oxide synthase (nNOS). Stimulation of guanylate cyclase activity in detector neuroblastoma cells was used as an index of generation of nitric oxide (NO) in CHO cells. The agonist carbachol induced marked time and concentration-dependent enhancement of the activity of nNOS at m2 receptors. In sharp contrast, the response in CHO cells transfected with the m4 receptor gene was similar in magnitude to that observed in non-transfected cells, suggesting lack of significant coupling of m4 muscarinic receptors to NO signaling. This novel observation of functional divergence of the two muscarinic receptor subtypes at the level of activation of nNOS is quite intriguing, in light of the currently accepted dogma that they belong to the same functional class. This functional selectivity was not due to differential effects on intracellular Ca$\^$2+/ concentration, since activation of both subtypes of muscarinic receptors produced a comparable, albeit quite small, Ca$\^$2+/ signal. Taken together, our present data strongly suggest that the generally assumed functional equivalence of m2 and m4 muscarinic receptors should be carefully reexamined. These data also suggest the presence of alternate mechanisms of activation of nNOS, which might be operative in the absence of large changes in the concentration of cellular Ca$\^$2+/. The latter mechanisms are expected to be activated by m2, but not m4 muscarinic receptors. Both sets of findings are quits important in regards to refining the functional classification of muscarinic receptor subtypes and the cellular mechanisms of activation of NOS.
The binding characteristic of oxomemazine to muscarinic receptor in the cerebrum, heart, and ileum were compared to those of pirenzepine to investigate whether oxomemazine could classify the muscarinic receptor subtypes. 〔$^3$H〕Quinucl idinyl benzilate(QNB) identified a single class of muscarinic receptors with apparent K$\sub$D/ value of about 60 pM in three tissues. Analysis of the pirenzepine inhibition curve of 〔$^3$H〕QNB binding to cerebral microsome indicated the presence of two receptor subtypes with high (Ki=16 nM, M$_1$-receptor) and low (Ki=400 nM, M$_2$-receptor) affinity for pirenzepine. Oxomemazine also identified two receptor subtypes with high (Ki=84 nM, On-receptor) and low (Ki=1 4 ${\mu}$M, O$\sub$L/-receptor) affinity in rat cerebral microsome, The percentage population of the M$_1$-and M$_2$-receptors to the total receptors were 61 : 39, and those of the O$\^$H/- and O$\sub$L/-receptors 39 : 61, respectively, However, the Hill coefficients of these two drugs for the inhibition of 〔$^3$H〕QNB binding to the heart and ileum were close to unity which indicated that these drugs bound to a uniform population of receptors in these two tissues. The Ki values for the low affinity sites of pirenzepine and oxomemazine in the cerebrum were similar to those of these drugs in the heart ileum. Both pirenzepine and oxomemazine increased K$\sub$D/ value for 〔$^3$H〕QNB without affecting the binding sites concentration and Hill coefficient for the 〔$^3$H〕QNB binding. Oxomemazine had a 10-fold lower affinity at Ma-receptors than at M$_1$-receptors, and pirenzepine a 8-fold lower affinity at O$\sub$L/-receptors than OH-receptors. Analysis of the shal low competition curves of oxomemazine for the H$_1$ receptors and pirenzepine for the O$\sub$L/-receptors yielded that 69% of the M$_1$-receptors were of the O$\sub$H/-receptors and the remaining 31% of the O$\sub$L/-receptors, and that 29% of the O$\sub$L/-receptors were of the M$_1$-receptors and 71% of the M$_2$-receptors. However, M$_2$ for oxomemazine and O$\sub$H/ for pirenzepine were composed of a uniform population. These results suggest that oxomemazine could discriminatethe muscarnic receptor subtypes and may subclassify the M$_1$-receptors into two subtypes.
The binding characteristics of pirenzepine and oxomemazine to muscarinic receptor were studied to evaluate the selectivity of oxomemazine for the muscarinic receptor subtypes in rat cerebral microsomes. Equililbrium dissociation constant $(K_D){\;}of{\;}(-)[^3H]$quinuclidinyl benzilate$([^3H)QNB)$ determined from saturation isotherms was 64-pM. Analysis of the pirenzepine inghibition curve of [$^3H$]QNB binding to cerebral microsome indicatd the presence of two receptor subtypes with high $(K_1 = 16 nM, M_1 receptor)$two receptor subypes with about 20-fold difference in the affinity for high $(k_1 = 84nM, {\;} O_H receptor){\;} and {\;}low{\;} (K_1{\;} ={\;} 1.65\muM, {\;} O_L receptor$) affinity sites. The percentage populations of $M_1{\;} and M_3$, /TEX> receptors to the total receptors were 61 : 39, and those of $O_H{\;} and{\;} O_L$ receptors 39 : 61, resepectively. Both pirenzepine and oxomemazine increaed the $K_D$ value for $[^3H]QNB$ without affecting the binding site concentrations and Hii coefficient for the $[^3H]QNB$ without affecting the binding site concentractions and Hill coefficient for the [$^{3}$H]QNB binding. Oxomemazine had a 10-fold higher affinity at $M_1$ receptors than at $M_3$ receptors, and pirenzepine a 8-fold higher affinity at $O_H$ receptors were of $O_H$ receptors and 71% of $M_3$ receptors. However, $M_3$for oxomemazine and $O_H$for pirenzepine were composed of a uniform population. These results suggest that oxomemazine could be classified as a selective drug for $M_1$ receptors and also demonstrate that rat cerebral microsomes contain three different subtypes of $M_1{\;} M_3$ and the other site which is different from $M_1, {\;} M_2$, /TEX> receptors.
The oligomerization of G-proteincoupled receptors (GPCRs) has been shown to occur by various mechanisms, such as via disulfide covalent linkages, non covalent (ionic, hydrophobic) interactions of the N-terminal, and/or transmembrane and/or intracellular domains. Interactions between GPCRs could involve an association between identical proteins (homomers) or non-identical proteins (heteromers), or between two monomers (to form dimers) or multiple monomers (to form oligomers). It is believed that muscarinic receptors may also be arranged into dimeric or oigomeric complexes, but no systematic experimental evidence exists concerning the direct physical interaction between receptor proteins as its mechanism. We undertook this study to determine whether muscarinic receptors form homomers or a heteromers by direct protein-protein interaction within the same or within different subtypes using a yeast two-hybrid system. Intracellular loops (i1, i2 and i3) and the C-terminal cytoplasmic tails (C) of human muscarinic (Hm) receptor subtypes, Hm1, Hm2 and Hm3, were cloned into the vectors (pB42AD and pLexA) of a two-hybrid system and examined for heteromeric or homodimeric interactions between the cytoplasmic domains. No physical interaction was observed between the intracellular domains of any of the Hm/Hm receptor sets tested. The results of our study suggest that the Hm1, Hm2 and Hm3 receptors do not form dimers or oligomers by interacting directly through either the hydrophilic intracellular domains or the C-terminal tail domains. To further investigate extracellular domain interactions, the N-terminus (N) and extracellular loops (o1 and o2) were also cloned into the two-hybrid vectors. Interactions of Hm2N with Hm2N, Hm2o1, Hm2o2, Hm3N, Hm3o1 or Hm3o2 were examined. The N-terminal domain of Hm2 was found to have no direct interaction with any extracellular domain. From our results, we excluded the possibility of a direct interaction between the muscarinic receptor subtypes (Hm1, Hm2 and Hm3) as a mechanism for homo- or hetero-meric dimerization/oligomerization. On the other hand, it remains a possibility that interaction may occur indirectly or require proper conformation or subunit formation or hydrophobic region involvement.
The muscarinic acetylcholine receptors of the dog unpregant uterus were characterized using $[^3H]quinuclidinyl$ benzilate(QNB) as a radioligand and the binding of muscarinic receptor agonists and antagonists in the uterus was compared to that in the urinary bladder which contains almost exclusively the M2 receptors in order to determine the receptor subtypes in the uterus. $[^3H]QNB$ binding to uterus and bladder was rapid, saturable and reversible. Scatchard analysis of the saturation data gave linear plots and the Hill coefficients were close to unit, which indicated that each preparation contained a single population of specific binding sites for $[^3H]QNB$. The KD values(120 pM) for QNB were almost identical in both organs, whereas the $B_{max}$ value of 256 fmol/mg protein in the uterus was significantly different from that of 563 fmol/mg protein in the bladder. Muscarinic agonists and antagonists inhibited in a competitive manner the $[^3H]QNB$ binding to the same extent in both organs. The competition binding studies using antagonists(atropine and pirenzepine) exhibited a single binding site and this site had a low affinity for pirenzepine with the Ki value of about 330 nM. However, high and low affinity binding sites were observed with carbachol, methacholine and oxotremorine. These binding studies with agonists and antagonists did not show any differences in drug affinities between uterus and bladder. These results indicate that the muscarinic receptors in the uterus are M2 receptors which have a low affinity for pirenzepine.
Nonsedating antihistamines do net cause sedation in therapeutic doses because these drugs hardly cross the blood-brain barrier. Since most of the peripheral side dffects of conventional antihistamines are related to their muscarinic receptor blocking action, the present study was performed to investigate whether nonsedating antihistamines interact with the muscarinic receptors and discriminate the muscarinic receptor subtypes in the rat cerebral microsomal fraction which containes both $M_1,{\;}M_2,{\;}M_3{\;}and{\;}M_4$ receptors. Five nonsedating antihistamines at high concentrations inhibited [$^3H$]QNB binding to the muscarinic receptor in a dose-dependent manner. The inhibition curves of these drugs except loratadine which showed positive cooperativity (nH=1.55) were steep (nH=1), indicating interaction with a single homogenous population of the binding sites. Astemizole, clemizole and mequitazine increased the $K_D$ value for [$^3H$]QNB without affecting the binding site concentrations, and this increase in the $K_D$ value resulted from the ability of these drugs to slow [$^3H$]QNB-receptor association. The Ki values of astemizole, clemizole and mequitazine for the inhibition for the inhibition of [$^3H$]QNB binding to muscarinic receptor were 0.58, 5.99 and $0.007{\;}{\mu}M$, respectively. However, loratadine and terfenadine inhibited noncompetitively [$^3H$]QNB binding with the normalized $IC_50$ value of about $2{\;}{\mu}M$. These results demonstrate that; 1) astemizole, clemizole and mequitazine interact directly with the muscarinic receptor at high concentrations; 2) muscarinic receptor blocking potency of these drugs varies widely among drugs; 3) these drugs do not discriminate between muscarinic receptor subtypes.
The C-terminus ends of the second putative transmembrane domains of both m1 and m2 muscarinic receptors contain a triplet of amino acid residues consisting of leucine (L), tyrosine (Y) and threonine (T), This triplet is repeated as LYT-LYT in m2 receptors at the interface between the second transmembrane domain and the first extracellular loop. Interestingly, however, it is repeated in a transposed fashion (LYT-TYL) in the sequence of m1 receptors. In this work we employed site-directed mutagenesis to investigate the possible significance of this unique sequence diversity for determining the distinct differential drug-receptor interaction and cellular function at m1 muscarinic receptor. Mutation of the LYTTYL sequence of m1 receptors to the corresponding m2 receptor LYTLYT sequence, however, did not result in a significant change in the binding affinity of the agonist carbachol or in the affinity of the majority of a series of receptor antagonists which are able to discriminate between wild-type m1 and m2 receptors. Surprisingly, the LYTLYT ml receptor mutant demonstrated markedly enhanced coupling to activation of phospholipase C without a change in its coupling to increased cyclic AMP formation. There was also an enhanced receptor sensitivity in transducing elevation of intracellular Ca$\^$2+/. These changes were not due to alterations in the rate of receptor. desensitization or sequestration, On the other hand, the reverse LYTLYT-LYTTYL mutation in the m2 receptor did not alter its coupling to inhibition of adenylate cyclase, but slightly enhanced its coupling to stimulation of PI hydrolysis, Our data suggest that the LYTTYL/LYTLYT sequence difference between ml and n12 muscarinic receptors is not involved in determining receptor pharmacology. On the other hand, while these differences might play a role in the modulation of muscarinic receptor coupling to PI hydrolysis, they are not important for specifying coupling of various subtypes of muscarinic receptors to different cellular signaling pathways.
The C-terminus ends of the second putative transmembrane domains of both $M_1$ and $M_2$ muscarinic receptors contain a triplet of amino acid residues consisting of leucine (L), tyrosine (Y) and threonine (T). This triplet is repeated as LYT-TYL in $M_1$ receptors at the interface between the second transmembrane domain and the first extracellular loop. Interestingly, however, it is repeated in a transposedfashion (LYT-LYT) in the sequence of $M_2$ receptors. In our previous work, we investigated the possible significance of this unique sequence diversity for determining the distinct differential receptor function at the two receptor subtypes. However, we found mutation of the LYTTYL sequence of $M_1$ receptors to the corresponding $M_2$ receptor LYTLYT sequence demonstrated markedly enhanced the stimulation of phosphoinositide (PI) hydrolysis by carbachol without a change in its coupling to increased cyclic AMP formation. In this work, thus, the enhanced stimulation of PI hydrolysis in the LYTLYT $M_1$ receptor mutant was further investigated. The stimulation of PI hydrolysis by carbachol was enhanced in the mutant $M_1$ receptor, and this change was not due to alterations in the rate of receptor desensitization or sequestration. The observed larger response to carbachol at mutant $M_1$ receptors was also not due to an artifact resulting from selection of CHO cells which express higher levels of G-proteins or phospholipase C. Our data suggest that although the LYTTYL sequence in $M_1$ muscarinic receptors is not involved in determining receptor pharmacology, mutation of the sequence enhanced the coupling of $M_1$ receptors to the stimulation of phospholipase C.
The human muscarinic acetylcholine receptor (mAChR) subtypes Hml, Hm2 and Hm3 have been expressed in insect cells (Spodoptera frugiperda, Sf9) using the baculovirus expression system. Expression of relevant DNA, transcript and receptor proteins was identified by PCR, Northern blotting and [$^{3}H$]QNB binding, respectively. As assessed by [$^{3}H$]QNB binding sites, yields of muscarinic receptors in membrane preparations in this study were as about 5-20 times high as those in mammalian cells reported in previous studies. The [$^{3}H$]QNB competition binding studies with well-known subtype-selective mAChR antagonists showed that the receptors expressed in Sf9 cells retain the pharmacological characteristics expected for the ml , m2 and m3 muscarinic receptors. The ml-selective antagonist, pirenzepine, displayed a considerably higher affinity for Hml by 110-fold and 35-fold than for Hm2 and Hm3, respectively, The m2-selective methoctramine displayed a significantly higher affinity for Hm2 than for Hml and Hm3 (10- and 26-fold, respectively). p-F-HHSiD exhibited high affinity for Hm3 that is not significantly different from those for Hml, but 66-fold higher than its affinity for Hm2. The functional coupling of the recombinant receptors to second messenger systems was also examined. While both Hml and Hm3 stimulated phosphoinositide hydrolysis upon activation by carba-chol, Hm2 produced no response. On the other hand, activation of mAChRs induced the inhibition of forsko-lin-stimulated cyclic AMP formation in Hm2-expressing cells, whereas the significant dose-dependent increase in or poor response on cyclic AMP formation were produced in Hml or Hm3-expressing cells, respectively. These results indicate the differential coupling of recombinant Hml, Hm2 and Hm3 receptors expressed in SF9 cells to intracellular signalling system.
Oxomemazine이 muscarinic receptor subtypes에 대하여 선택성을 가지는지에 관한 지견을 얻고자, 대뇌, 심실 및 회장 muscarinic receptor에 대한 oxomemazine의 결합성질을 조사, 비교하였다. $[^3H]QNB$ 포화결합실험 결과 세 조직의 muscarinic receptor는 $[^3H]QNB$에 대해서는 affinity가 약 60pM인 단일 receptor인 것으로 추정되었다. 대뇌에서 pirenzepine과 oxomemazine의 $[^3H]QNB$ 결합억제에 대한 Hill coefficient는 각각 0.67 및 0.8로서 대뇌에는 이들 약물에 대하여 affinity가 서로 다른 두 종류의 muscarinic receptor subtypes가 존재하는 것으로 나타났으며, pirenzepine에 대한 high $affinity(M_1)$와 $low affinity(M_2)$ receptor 및 oxomemazine에 대한 high $affinity(O_H)$와 $low\;affinity (O_L)$ receptor의 분포비는 약 60:40 및 40:60이었고, $M_1$과 $M_2$ receptor에 대한 pirenzepine의 $K_i$치는 16nM 및 431 nM, $O_H$와 $O_L$, receptor에 대한 oxomemazine 의 $K_i$치는 80nM 및 1350nM이었다. 그러나 심실과 회장에서 이들 약물의 $[^3H]QNB$ 결합억제에 대한 Hill coefficient는 1에 가까웠다. 심실과 회장 muscarinic receptor에 대한 pirenzepine의 $K_i$치는 850nM 및 250nM, oxomemazine의 $K_i$치는 1460nM 및 670nM로서 대피에서 이들 약물의 low affinity receptor에 대한 $K_i$치에 가까웠다. 즉, muscarinic receptor에 대한 affinity면에서 oxomemazine은 pirenzepine과 같이 대뇌에서 가장 높았으며, 회장에 대해서는 중등도였고, 심실에서 가장 낮았다. 이로 보아 oxomemazine은 $M_1\;receptor$에 선택성이 있는 것으로 추정된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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