White spot syndrome virus (WSSV) is a major threat to the shrimp farming industry and so far there is no effective therapy for it, and thus early diagnostic of WSSV is of great importance. However, at the early stage of infection, the extremely low-abundance of WSSV DNA challenges the detection sensitivity and accuracy of PCR. To effectively detect low-abundance WSSV, here we developed a pre-amplification PCR (pre-amp PCR) method to amplify trace amounts of WSSV DNA from massive background genomic DNA. Combining with normal specific PCR, 10 copies of target WSSV genes were detected from ${\sim}10^{10}$ magnitude of backgrounds. In particular, multiple target genes were able to be balanced amplified with similar efficiency due to the usage of the universal primer. The efficiency of the pre-amp PCR was validated by nested-PCR and quantitative PCR, and pre-amp PCR showed higher efficiency than nested-PCR when multiple targets were detected. The developed method is particularly suitable for the super early diagnosis of WSSV, and has potential to be applied in other low-abundance sample detection cases.
Park, Jong-Lyul;Park, Seong-Min;Kim, Jeong-Hwan;Lee, Han-Chul;Lee, Seung-Hwan;Woo, Kwang-Man;Kim, Seon-Young
Genomics & Informatics
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v.11
no.4
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pp.277-281
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2013
RNA analysis has become a reliable method of body fluid identification for forensic use. Previously, we developed a combination of four multiplex quantitative PCR (qRT-PCR) probes to discriminate four different body fluids (blood, semen, saliva, and vaginal secretion). While those makers successfully identified most body fluid samples, there were some cases of false positive and negative identification. To improve the accuracy of the identification further, we tried to use multiple markers per body fluid and adopted the NanoString nCounter system instead of a multiplex qRT-PCR system. After measuring tens of RNA markers, we evaluated the accuracy of each marker for body fluid identification. For body fluids, such as blood and semen, each body fluid-specific marker was accurate enough for perfect identification. However, for saliva and vaginal secretion, no single marker was perfect. Thus, we designed a logistic regression model with multiple markers for saliva and vaginal secretion and achieved almost perfect identification. In conclusion, the NanoString nCounter is an efficient platform for measuring multiple RNA markers per body fluid and will be useful for forensic RNA analysis.
The multiple real-time PCRs against pathogens of Bombus species including DWV, IAPV, KBV, SBV, BQCV, kSBV, SBPV and Paenibacillus larvae, Mellisococcus plutonius, Lysinibacillus fusiformis, and Klebsiella oxytoca have been developed. One extracted nucleic acid from Beesample could be applied to 11 different PCRs in same time and condition. Specific PCR-products were amplified qualitative and quantitative manner inner 20 minutes successfully, when each 1000 molecules of pathogen-specific target DNA is existed as template, respectively. The multiple PCR detection that we propose would be expected to apply to quarantine test for international exchange of Bombus species.
Kwak, Kyu-Won;Nam, Sung-Hee;Choi, Ji-Young;Lee, Seokhyun;Kim, Hong Geun;Kim, Sung-Hyun;Park, Kwan-Ho;Han, Myung-Sae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.30
no.2
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pp.64-74
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2015
Beetles Protaetia brevitarsis seulensis Kolbe (Coleoptera: Cetoniidae) and Allomyrina dichotoma Linn. (Coleoptera: Scarabaeidae) are widely used in traditional medicine, and the number of insect-rearing farms is increasing in South Korea. The purpose of this study was to establish a multiplex PCR-based assay for rapid simultaneous detection of multiple pathogens causing insect diseases. Six insect parasites such as fungi Beauveria bassiana (Bals.-Criv.) Vuill. (Hypocreales: Cordycipitaceae) and Metarhizium anisopliae (Metschn.) Sorokin (Hypocreales: Clavicipitaceae), bacteria Bacillus thuringiensis Berliner (Bacillales: Bacillaceae), Pseudomonas aeruginosa Migula (Pseudomonadales: Pseudomonadaceae), and Serratia marcescens Bizio (Enterobacteriales: Enterobacteriaceae), and Oryctes rhinoceros nudivirus were chosen based on the severity and incidence rate of insect diseases in South Korea. Pathogen-specific primers were designed and successfully applied for simultaneous detection of multiple infectious agents in farm-bred insects P. b. seulensis and A. dichotoma using multiplex PCR and high resolution capillary electrophoresis. Our results indicate that multiplex PCR is an effective and time-saving method for simultaneous detection of multiple infections in insects, and the QIAxcel capillary electrophoresis system is useful for quantitative evaluation of the individual impact of each infectious agent on the severity of insect disease. The approach designed in this study can be utilized for rapid and accurate diagnostics of infection in insect farms.
In present study, we described the reliability of the dual priming oligonucleotide (DPO) multiplex polymerase chain reaction (PCR) for the detection of Mycobacterium tuberculosis complex (MTC) and non-Mycobacterium tuberculosis (NMT) in blood samples of the Korea native cattle, Hanwoo. Among 340 samples 22 (6.5%) were positive in using DPO multiplex PCR, 21 (6.2%) were positive in PCR. The relative agreement between 2 tests was 99.7%, and the agreement quotient (kappa), was 0.95 (excellent). In these results, we demonstrated the successful application of DPO multiplex PCR for the diagnosis of bovine tuberculosis in Hanwoo. Multiplex PCR, using DPO primers, can be useful for the simple diagnosis of bovine tuberculosis in bovine blood samples.
A new GFP-based T-vector for cloning of PCR products was developed by using a green fluorescent protein (GFP) as a mafker. In order to facilitate the DNA inserts, multiple restriction sites, SP6 and T7 RNA polymerase promoter sites, were introduced close to the PCR DNA insertion site of a pCRGv vector. The XcmI-digested pHNT plasmid can be used to clone a 3' A-overhanged PCR DNA amplified by Taq DNA polymerase. A potential method of easing some difficulties from its use along with its cost savings proveded by this vector are likely to lead to the replacement of other T-vectors for PCR DNA cloning.
Purpose: This study was aimed at evaluating the diagnostic validity of peritoneal dissemination of gastric cancer cells by performing multiple genetic marker analysis via quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) in gastric cancer cell lines and gastric cancer tissues. Materials and Methods: Quantitative RT-PCR was performed on 12 human gastric cancer cell lines and 10 gastric cancer tissues with four mRNAs of carcinoembryonic antigen (CEA), Cytokeratin 20 (CK20), dopa decarboxylase (DDC), and L-3-phosphoserine phosphatase (L3PP). Results: Out of the 12 human gastric cancer cell lines we tested, CEA was overexpressed in four cell lines (33%), CK20 in one (8%), DDC in six (50%) and L3PP was expessed in all the lines (100%). Out of the 10 gastric cancer tissues we tested, CEA was overexpressed in nine tissues, CK20 in eight, DOC in nine and L3PP was overexpressed in all the tissues. L3PP was overexpressed in all the gastric cancer cell lines and tissues, but the levels of overexpression were lower than those of CEA and DDC. Conclusion: Multiple genetic marker analysis can compensate for the weak points of single marker analysis when testing gastric cancer, and three mRNAs of CEA, DDC and L3PP can be used as candidate genes.
Explants of lettuce (Lactuca sativa L.) were co-cultivated with Agrobacterium tumifacience GV 3101 strain containing nptII gene and cold regulated gene (BN115) from Brassica napus for transformation. Multiple shoots were obtained from the explants in the selection medium (MS basal medium supplemented with 100 mg/L kanamycin, 500 mg/L carbenicillin, 0.1 mg/L NAA, 0.5 mg/L kinetin) after 3 to 4 weeks of co-culture. The putative transgenic shoots were transferred to rooting medium (1/2 MS basal medium supplemented with 100 mg/L kanamycin and 250 mg/L carbenicillin). The selected shoots were tested with PCR analysis using nptll, BN115 primers whether cold-regulated gene was introduced to genome of the plants. The vir G primers were particularly used to check contamination of Agrobacterium during PCR analysis. The nptII and BN115 primers produced the specific PCR bands in the putative transgenic lines but the vir G primers did not. These results confirmed that the PCR products were not the result of contamination with Agrobacterium. Additionally the Southern analysis of the PCR products and RT-PCR analysis proved that the cold-regulated gene was successfully integrated and transcribed in the putative transgenic lettuce plants.
General PCR technique alone has a limitation for preimplantation genetic diagnosis(PGD) using single blastomere. Recntly developed primer extension preamplification(PEP) technology amplifies the whole genome and thus, simultaneous multiple locus analysis became possible. In this study, we report the efficacy of PEP-PCR for PGD in three muscular dystrophy carriers undergoing IVF-ET. A total of 37 blastomeres were obtained from 40 embryos at six to eight cell stage in three IVF cycles in two DMD and one BMD carriers. Whole genome from single blastomeres were amplified using I5-base oligonucleotide random primers. PCR amplified products of exon 45 in the dystrophin gene and alphoid X/Y loci for gender determination were analysed by 2% metaphor gel electrophoresis. A total of 37 PEP-PCR replicates from 37 single blastomeres from 40 embryos and 37 blanks were performed. We obtained the reliable results for exon 45 and alphoid X/Y. Transfer of female embryos and unaffected male embryo was attempted in three couples. Unfortunately, pregnancy was not achieved in these cases. PEP-PCR is a reliable and efficient PGD method in multiple locus analysis using single blastomere.
Gram-positive antagonistic bacilli were isolated from agricultural soils for possible use in biocontrol of plant pathogenic fungi, Fusarium oxysporum, Rhizoctonia solani, and/or Pythium ultimum. Among the 65 antagonistic Gram-positive soil isolates, 22 strains were identified as Bacillus species by 16S rDNA sequence analyses. Four strains, including DF14, especially exhibited multiple antagonistic properties against the three damping-off fungi. Genotypic properties of the Bacillus isolates were characterized by rapid molecular fingerprinting methods using repetitive extragenic palindromic-PCR (REP-PCR), ribosomal intergenic spacer-length polymorphisms (RIS-LP), 16S rDNA PCR-restriction fragment length polymorphisms (PCR-RFLP), and strain-specific PCR assays. The results indicated that the REP-PCR method was more valuable than the RIS-LP and 16S rDNA PCR-RFLP analyses as a rapid and reliable approach for bacilli typing and identification. The use of strain-specific primers designed based on 16S rDNA sequence comparisons enabled it to be possible to selectively detect a strain, DF14, which is being used as a biocontrol agent against damping-off fungi.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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