Chemical and photochemical processes during storage and preparation rapidly degrade retinol, the most active form of vitamin A. therefore, the efficacy of incorporation into liposomes in order to modulate the kinetics of retinol degradation was investigated. Retinol was readily incorporated into multilamellar liposomes that were prepared form soybean phosphatidylcholine; the extent of the incorporation was 98.14±0.93% at pH 9.0 at a ratio of 0.01 : 1 (wt:wt) retinol : phospholipid. It was only marginally lower at higher retinol concentrations. The pH of the hydration buffer had a small effect. The incorporation efficiency ranged from 99.25±0.47% at pH 3 to 97.45±1.13% at pH 11. The time course of the retinol degradation in the aqueous solution in liposomes was compared to that of free retinol and free retinol with α-tocopherol under a variety of conditions of pH(3, 7, and 11), temperature(4, 25, 37, and 50℃), and light exposure(dark, visible, and UV). The retinol that was incorporated into the liposomes degraded significantly slower than the free retinol or retinol with α-tocopherol at pH 7 and 11. At pH 3, where the free retinol degrades rapidly, the degradation kinetics were similar in liposomes and the presence of α-tocopherol. At pH 7.0 and 4℃ in the light, for example, free aqueous retinol was completely degraded within 2 days, while only 20% of the retinol in the liposomes were degraded after 8 days. In general, the protective effect of the liposome incorporation was greater at low temperatures, at neutral and high pH, and in the dark. The results suggest that protection is greater in the solid, gel phase than in the fluid liquid crystalline phase lipids. These results indicate that the incorporation into liposomes can extend the shelf-life of retinol under a variety of conditions of temperature, pH, and ambient light conditions.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.04a
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pp.286-286
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1996
In order to elucidate the mechanism of action of transdermal absorption-enhancing compounds, i.e., pyrrolidone derivatives (2-pyrrolidone, 1-methyl-2-pyrrolidone, 1-ethyl-2-pyrrolidone, 1,5-dimethyl-pyrrolidone and 5-methyl-2-pyrrolidone), multilamellar liposome was prepared from the simulated stratum corneum lipid and employed as a model system for the barrier function of the stratum corneum. The liposomal membrane of the stratum corneum lipid liposome (SCLL) behaves as an osmometer and has an excellent barrier function. In addition, its phase transition temperatures are similar to those of human stratum corneum intercellular lipid region. Therefore, SCLL seems to be a useful skin model. To estimate the barrier function of SCLL, the osmotic behavior of SCLL was measured in the presence of pyrrolidone derivatives and the effect on the phase transition temperature of SCLL was also investigated using differential calorimetry. Above a certain concentration (MLAC), enhances perturb the barrier function of the liposome. The relationship between MLACs and the partition coefficient of the pyrrolidone derivatives was observed; the greater the partition coefficients, the smaller the MLAC. This suggests that the more hydrophobic enhancers penetrate into the lipid layer more easily and reduce the barrier function of membrane more effectively. The results of differential scanning thermograms of the SCLL suggest that the pyrrolidone derivatives had incorporated into the lipid layer in the liposome and increased the fluidity of the lipid layer in the liposome. Such activity might have some correlation with the transdermal absorption-enhancing activity these compounds.
To elucidate the mechanism of action of local anesthetics, the effects of local anethetics on the microenvironment of the lipid bilayers of synaptosomal plasma membrane vesicles (SPMV) isolated from bovine brain and dimyristoylphosphatidylcholine (DMPC) multilamellar liposomes were investigated employing the intermolecular excimer fluorescence technique and differential scanning calorimetry (DSC). The relative intensities of excimer and monomer fluorescence of pyrene are a simple linear function of the viscosity of a homologous series of solvents. The microviscosity(${\eta}$)of the hydrocarbon region of SPMV was measured by this method and the value was $57.3{\pm}5.3\;cP$ at $37^{\circ}C$. In the presence of lidocaine-HCl and procaine-HCl, the values decreased to $46.5{\pm}5.1\;cP$ and $54.7{\pm}4.8\;cP$, respectvely. The differential scanning thermograms of DMPC multilamellar liposomes showed that local anesthetics significantly lowered the phase transition temperature, broadened the thermogram peaks, and reduced the size of the cooperative unit. These results indicate that local anesthetics have significant fluidizing effects on biomembranes and perturbation of membrane lipids may produce some, but not all, of their pharmacological actions.
Liposomes are artificial membranes prepared by phospholipid. In this study, liposomes were prepared by dehydration-rehydration method, and then nano-sized by sonication and pressure. The sizes of the prepared multilamellar vesicles (MLV) were greater than 10 μm. Sonication with a tip-type sonifier or pressurization with a French press on MLV were carried out to reduce size. Sonication with an output of 112.5 W for 10 min on MLV resulted in sizes less than 450 nm. French press with 6,000 psi of pressure was able to manufacture liposomes of approximately 100 nm uniformly. Also, the sonication or pressure clarified the color of the liposome solutions. The results indicate that sonication and pressure via French press can be applied to obtain nano-sized liposomes.
Although liposome has many advantages as a pharmaceutical dosage form, its application in the industrial field has been limited because of some problems such as preparation method, reproducibility, scale-up, stability and sterilization etc. Liposomes prepared by microemulsification method had defined size, narrow size distribution, reproducibility and high entrapment efficiency. For enhancing the stability, the dry form of liposome was recommended. These types of liposome are proliposome and freeze-dried liposome. The liposome must have some properties for preparing of freeze-dried liposome; small size $(50{\sim}200\;nm)$, narrow size distribution and cryoprotectant. In this experiment, the liposomes containing 5-Fluorouracil(5-FU) and its prodrug(pentyl-5-FU-1-acetate; PFA, hexyl-5-FU-1-acetate; HFA) were made with soybean phosphatidylcholine, cholesterol, stearylamine(SA) and dicetyl phosphate(DCP) employing hydration method or microemulsification method using $Microfluidizer^{TM}$. Both or liposome types were MLV and MEL. After preparation, freeze drying and rehydration were performed. In the process of freezing, trehalose(Tr) was added as a cryoprotectant. Their evaluation methods were as follows; entrapment efficiency, mean particle size and size distribution, dissolution test, retain of entrapment efficiency and turbidity after freeze-drying. The results are summarized as belows. The entrapment efficiency of 5-FU was dependent on total lipid concentration and cholesterol content but that of PFA and HFA was decreased when cholesterol was added. When DCP and SA were added, entrapment efficiency was decreased. As the partition coefficient of drug was increased, entrapment efficiency was increased. Under the same condition, entrapment efficiency of MEL is similar to that of MLV. The mean particle size and size distribution of MEL were smaller than those of MLV. Dissolution rates of drug from both liposome types were comparatively similar. Dissolution rates of drugs with serum and liver homogenate were faster than without these material. After preparation of liposome, free drug was removed efficiency by Dowex 50W-X4. When liposome was freeze-dried and then rehydrated in the presence of Tr, characteristics of liposome were maintained well in MEL than MLV. Tr Was used successfully as a cryoprotectant in the process of freeze drying and the optimal ratio of Tr:Lipid was 4:1(g/g).
A new concept of "photo" -antisense method has been evaluated, where the inhibition of gene expression by the conventional antisense method is enhanced by photochemical binding between antisense oligonucleotides conjugated with photo-reactive compound and target mRNA or DNA. Fluorescein labeled oligodeoxyribonucleotides (F-DNA) was delivered to cell nuclei in the encapsulated form in multilamellar lecithin liposomes with neutral charge. F-DNA was previously shown to photo-bind to the complementary stranded DNA, and the delivery system using neutral liposome to be effective in normal human keratinocytes. In the present study, we used human kidney cancer G401.2/6TG.1 cell line to be advantageous in reproducible experiments. p53 was adopted as a target gene since antisense sequence information has been accumulated. The nuclear localization ofF-DNA was identified by comparing the fluorescence ofF-DNA with that of Hoechst 33258 under fluorescence microscope. After 7hr incubation to accumulate p53 protein induced by UV -B, p53 protein was quantified by Western blot. After 2hrs from F-DNA application, about 30% of cell population incorporated F-DNA in their nuclei with some morphological change possibly due to liposomal toxicity. Irradiation of visible light longer than 400nm from solar simulator at this time enhanced the inhibitory action of antisense F-DNA. The present results suggest that photo-antisense method is promising to control gene expression in time and space dependent manner. Further improvement of F-DNA delivery to cancer cells in the stability and toxicity is in progress. progress.
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