Plasmodium falciparum malaria is a major public health problem in Thailand due to the emergence of multidrug resistance. The understanding of genetic diversity of malaria parasites is essential for developing effective drugs and vaccines. The genetic diversity of the merozoite surface protein-1 (PfMSP-1) and merozoite surface protein-2 (PfMSP-2) genes was investigated in a total of 145 P. falciparum isolates collected from Mae Sot District, Tak Province, Thailand during 3 different periods (1997-1999, 2005-2007, and 2009-2010). Analysis of genetic polymorphisms was performed to track the evolution of genetic change of P. falciparum using PCR. Both individual genes and their combination patterns showed marked genetic diversity during the 3 study periods. The results strongly support that P. falciparum isolates in Thailand are markedly diverse and patterns changed with time. These 2 polymorphic genes could be used as molecular markers to detect multiple clone infections and differentiate recrudescence from reinfection in P. falciparum isolates in Thailand.
Lee, Kyoung In;Moon, Young Sook;Pyo, Byoung Sik;Choi, Chul Hee
Natural Product Sciences
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v.18
no.4
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pp.211-214
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2012
Since 15-hydroxyprostaglandin dehydrogenase (15-PGDH) is the key metabolic enzyme of prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$), inhibition of 15-PGDH is supposed to facilitate various physiological functions by increasing $PGE_2$. Methanol extract of Artemisia argyi (AAME) inhibited 15-PGDH ($IC_{50}$: $13.13{\mu}g/mL$) with relatively low cytotoxicity ($IC_{50}$: $415.00{\mu}g/mL$) and elevated extracellular $PGE_2$ levels in HaCaT cells. Real-time PCR analysis showed that AAME decreased significantly mRNA expression of PG transporter (PGT) in HaCaT cells. These results indicate that AAME could be applicable to functional materials as a 15-PGDH inhibitor and PGT expression inhibitor for the upregulation of extracellular $PGE_2$ level.
Human P-gp is one of the protein responsible for the multidrug resistance (MDR) develpment. MDR is a major cause of the cancer chemotherapy. In this paper, we performed homology modeling, docking study of papayriferic acid into the P-gp nucleotide binding domain (NBD2). For human P-gp, X-ray crystal structure is not known yet. We developed homology model for human NBD2 using HlyB ABC transporter structure (PDB code: 1XEF, resolution 2.5 ${\AA}$). Docking study was performed using Autodock. Docking result was analyzed, which shows that ligand docks into steroid binding site and interacts through hydrophobic and hydrophilic interactions.
Autophagy regulators are often effective as potential cancer therapeutic agents. Here, we investigated paclitaxel sensitivity in cells with knockout (KO) of ATG5 gene. The ATG5 KO in multidrug resistant v-Ha-ras-transformed NIH 3T3 cells (Ras-NIH 3T3/Mdr) was generated using the CRISPR/Cas9 technology. The qPCR and LC3 immunoblot confirmed knockout of the gene and protein of ATG5, respectively. The ATG5 KO restored the sensitivity of Ras-NIH 3T3/Mdr cells to paclitaxel. Interestingly, ATG5 overexpression restored autophagy function in ATG5 KO cells, but failed to rescue paclitaxel resistance. These results raise the possibility that low level of resistance to paclitaxel in ATG5 KO cells may be related to other roles of ATG5 independent of its function in autophagy. The ATG5 KO significantly induced a G2/M arrest in cell cycle progression. Additionally, ATG5 KO caused necrosis of a high proportion of cells after paclitaxel treatment. These data suggest that the difference in sensitivity to paclitaxel between ATG5 KO and their parental MDR cells may result from the disparity in the proportions of necrotic cells in both populations. Thus, our results demonstrate that the ATG5 KO in paclitaxel resistant cells leads to a marked G2/M arrest and sensitizes cells to paclitaxel-induced necrosis.
Background: The purpose of this study was to analyze the relationship between the gene mutation patterns by the GenoType MTBDRplus (MTBDRplus) assay and the phenotypic drug susceptibility test (pDST) results of isoniazid (INH) and prothionamide (Pto). Methods: A total of 206 patients whose MTBDRplus assay results revealed katG or inhA mutations were enrolled in the study. The pDST results were compared to mutation patterns on the MTBDRplus assay. Results: The katG and inhA mutations were identified in 68.0% and 35.0% of patients, respectively. Among the 134 isolated katG mutations, three (2.2%), 127 (94.8%) and 11 (8.2%) were phenotypically resistant to low-level INH, high-level INH, and Pto, respectively. Among the 66 isolated inhA mutations, 34 (51.5%), 18 (27.3%) and 21 (31.8%) were phenotypically resistant to low-level INH, high-level INH, and Pto, respectively. Of the 34 phenotypic Pto resistant isolates, 21 (61.8%), 11 (32.4%), and two (5.9%) had inhA, katG, and both gene mutations. Conclusion: It is noted that Pto may still be selected as one of the appropriate multidrug-resistant tuberculosis regimen, although inhA mutation is detected by the MTBDRplus assay until pDST confirms a Pto resistance. The reporting of detailed mutation patterns of the MTBDRplus assay may be important for clinical practice, rather than simply presenting resistance or susceptibility test results.
Autophagy is a complex signaling process and has been implicated in tumor suppression and anticancer therapy resistance. Autophagy can produce tumor-suppressive effect by inducing autophagic cell death, either in collaboration with apoptosis. In this current study, we found that celecoxib (CCB), a nonsteroidal anti-inflammatory drug (NSAID) with multifaceted effects, induced autophagy including enhanced LC3 conversion (LC3-I to LC3-II) and reduced autophagy substrate protein p62 level in multidrug-resistant (MDR) cancer cells. CCB sensitized human multidrug resistant (MDR) cancer cells to the ansamycin-based HSP90 inhibitor 17-allylamino-17-demethoxygeldanamycin (17-AAG), a benzoquinoid ansamycin, which causes the degradation of several oncogenic and signaling proteins, by inducing autophagic cell death and apoptosis. CCB significantly augmented 17-AAG-mediated level of LC3-II/LC-I, indicating the combined effect of 17-AAG and CCB on the induction of autophagy. Autophagic degradation of mutant p53 (mutp53) and activation of caspase-3 in 17-AAG-treated MDR cells were accelerated by CCB. Inhibition of caspase-3-mediated apoptotic pathway by Z-DEVD-FMK, a caspase-3 inhibitor, did not completely block CCB-induced cell death in MCF7-MDR cells. In addition, treatment of MDR cells with Z-DEVD-FMK failed to prevent activation of autophagy by combined treatment with 17-AAG and CCB. Based on our findings, the ability of clinically used drug CCB to induce autophagy has important implications for its development as a sensitizing agent in combination with Hsp90 inhibitor of MDR cancer.
Although the outcome of cancer patients after cytotoxic chemotherapy is related diverse mechanisms, multidrug resistance (MDR) for chemotherapeutic drugs due to cellular P-glycoprotein (Pgp) or multidrug-resistance associated protein (MRP) is most important factor in the chemotherapy failure to cancer. A large number of pharmacologic compounds, including verapamil, quinidine, tamoxifen, cyclosporin A and quinolone derivatives have been reported to overcome MDR. Single photon emission computed tomography (SPECT) and positron emission tomography (PET) are available for the detection of Pgp and MRP-mediated transporter. $^{99m}Tc$-MIBI and other $^{99m}Tc$-radiopharmaceuticals are substrates for Pgp and MRP, and have been used in clinical studies for tumor imaging, and to visualize blockade of PgP-mediated transport after modulation of Pgp pump. Colchicine, verapamil and daunorubicin labeled with $^{11}C$ have been evaluated for the quantification of Pgp-mediated transport with PET in vivo and reported to be feasible substrates with which to image Pgp function in tumors. Leukotrienes are specific substrates for MRP and $N-[^{11}C]acetyl-leukotriene$ E4 provides an opportunity to study MRP function non-invasively in vivo. SPECT and PET pharmaceuticals have successfully used to evaluate pharmacologic effects of MDR modulators. Imaging of MDR and reversal of MDR with bioluminescence in a living animal is also evaluated for future clinical trial. We have described recent advances in molecular imaging of MDR and reviewed recent publications regarding feasibility of SPECT and PET imaging to study the functionality of MDR transporters in vivo.
Recent studies have indicated a link between levels of cyclooxygenase-2 (COX-2) and development of the multidrug resistance (MDR) phenotype. The ATP-binding cassette sub-family G member 2 (ABCG2) is a major MDR-related transporter protein that is frequently overexpressed in cancer patients. In this study, we aimed to evaluate any positive correlation between COX-2 and ABCG2 gene expression using the COX-2 inducer 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) in human breast cancer cell lines. ABCG2 mRNA and protein expression was studied using real-time RT-PCR and flow cytometry, respectively. A significant increase of COX-2 mRNA expression (up to 11-fold by 4 h) was induced by TPA in MDA-MB-231 cells, this induction effect being lower in MCF-7 cells. TPA caused a considerable increase up to 9-fold in ABCG2 mRNA expression in parental MCF-7 cells, while it caused a small enhancement in ABCG2 expression up to 67 % by 4 h followed by a time-dependent decrease in ABCG2 mRNA expression in MDA-MB-231 cells. TPA treatment resulted in a slight increase of ABCG2 protein expression in MCF-7 cells, while a time-dependent decrease in ABCG2 protein expression was occurred in MDA-MB-231 cells. In conclusion, based on the observed effects of TPA in MDA-Mb-231 cells, it is proposed that TPA up-regulates ABCG2 expression in the drug sensitive MCF-7 breast cancer cell line through COX-2 unrelated pathways.
Purpose: Multidrug resistance (MDR) of the cancer cells related to mdr1 gene expression can be effectively treated by selective short hairpin RNA for mdr1 gene (shMDR). Sodium/iodide symporter (NIS) gene is well known to have both reporter and therapeutic gene characteristics. We have co-transfected both shMDR and NIS gene into colon cancer cells (HCT15 cell) expressing MDR and Tc-99m sestamibi and I-125 uptake were measured. In addition, cytotoxic effects of doxorubicin and I-131 therapy were also assessed after transfection. Material and Methods: At first, shMDR was transfected with liposome reagent into human embryonic kidney cells (HEK293) and HCT cells. shMDR transfection was confirmed by RT-PCR and western blot analysis. Adenovirus expressing NIS (Ad-NIS) gene and shMDR (Ad-shMDR) were co-transfected with Ad-NIS into HCT15 cells. Forty-eight hours after infection, inhibition of P-gycoprotein (Pgp) function by shMDR was analyzed by a change of Tc-99m sestamibi uptake and doxorubicin cytotoxicity, and functional activity of induced NIS gene expression was assessed with I-125 uptake assay. Results: In HEK293 cells transfected with shMDR, mdr1 mRNA and Pgp protein expressions were down regulated. HCT15 cells infected with 20 MOI of Ad-NIS was higher NIS protein expression than control cells. After transfection of 300 MOI of Ad-shMDR either with or without 10 MOI of Ad-NIS, uptake of Tc-99m sestamibi increased up to 1.5-fold than control cells. HCT15 cells infected with 10 MOI of Ad-NIS showed approximately 25-fold higher I-125 uptake than control cells. Cotransfection of Ad-shMDR and Ad-NIS resulted in enhanced cytotoxic by doxorubicin in HCT15 cells. I-131 treatment on HCT15 cells infected with 20 MOI of Ad-NIS revealed increased cytotoxic effect. Conclusion: Suppression of mdr1 gene expression, retention of Tc-99m sestamibi, enhanced doxorubicin cytotoxicity and increases in I-125 uptake were achieved in MDR expressing cancer cell by co-transfection of shMDR and NIS gene. Dual therapy with doxorubicin and radioiodine after cotransfection shMDR and NIS gene can be used to overcome MDR.
Multidrug resistance 3 (MDR3) is expressed on the canalicular membrane of the hepatocytes and plays an important role in protecting the liver from bile acids. Altered ABCB4 gene expression can lead to a rare hepatic disease, low phospholipid-associated cholelithiasis (LPAC). In this study, we characterized 3 ABCB4 mutations in LPAC patients using various in vitro assay systems. We first measured the ability of each mutant to transport paclitaxel and then the mechanisms by which these mutations might change MDR3 transport activity were determined using immunoblotting, cell surface protein biotinylation, and immunofluorescence. Through a membrane vesicular transport assay, we observed that the uptake of paclitaxel was significantly reduced in membrane vesicles expressing 2 ABCB4 mutations, F165I and S320F. Both mutants showed significantly decreased total and cell surface MDR3 expression. These data suggest two missense mutations of ABCB4 may alter function of MDR3 and ultimately can be determined as LPAC-causing mutations.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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