Glioma-Associated Oncogene Homolog1 (Gli1) is known to be activated in malignant glioma; however, its downstream pathway has not been fully explained. The aim of this study was to explore the role of Gli1-Aquaporin1 (AQP1) signal pathway in glioma cell survival. Our data suggests that both Gli1 and AQP1 are upregulated in glioma tissues, as in comparison to in normal tissues. These up-regulation phenomena were also observed in glioma U251 and U87 cells. It was demonstrated that Gli1 positively regulated the AQP1 expression. By luciferase reporter gene and ChIP assay, we observed that this modulation process was realized by combination of Gli1 with AQP1 promotor. In addition, knock down of Gli1 by siRNA interference reduced the viability of glioma cells as well as suppressed cell metastasis. Also, the inhibitory effects of cell survival by silenced Gli1 were abrogated by AQP1 overexpression. In summary, glioma cell survival is a regulatory process and can be mediated by Gli1-AQP1 pathway.
NAFLD induces the development of advanced liver diseases such as NASH and liver cancer. Therefore, understanding the mechanism of NAFLD development is critical for its prevention and treatment. Ablation of PTEN or Hippo pathway components induces liver cancer in a murine model by hyperactive AKT or YAP/TAZ, respectively. Although the regulation of these two pathways occurs in the same hepatocyte, the details of crosstalk between Hippo-YAP/TAZ and PTEN-AKT pathways in liver homeostasis and tumorigenesis still remain unclear. Here, we found that depletion of both PTEN and SAV1 in liver promotes spontaneous NAFLD and liver cancer through hyperactive AKT via YAP/TAZ-mediated up-regulation of IRS2 transcription. Conversely, NAFLD is rescued by both ablation of YAP/TAZ and activation of the Hippo pathway. Furthermore, human HCC patients with NAFLD showed strong correlation between YAP/TAZ and IRS2 or phospho-AKT expression. Finally, the inhibition of AKT by MK-2206 treatment attenuates NAFLD development and tumorigenesis. Our findings indicate that Hippo pathway interacts with AKT signaling during the intervention with IRS2 to prevent NAFLD and liver cancer.
In this study, the roles of the p38 MAPK, ERK1/2 and JNK signaling pathway in IGF-I-induced AR induction and activation were examined. C2C12 cells were treated with IGF-I in the absence or presence of various inhibitors of p38 MAPK (SB203580), ERK1/2 (PD98059), and JNK (SP600125). Inhibition of the MAPK pathway with SB203580, PD98059, or SP600125 significantly decreased IGF-I-induced AR phosphorylation and total AR protein expression. IGF-I-induced nuclear fraction of total AR and phosphorylated AR were significantly inhibited by SB203580, PD98059, or SP600125. Furthermore, IGF-I-induced AR mRNA and skeletal ${\alpha}-actin$ mRNA were blocked by those inhibitors in dose-dependent manner. Confocal images showed that IGF-I-induced AR nuclear translocation from cytosol was significantly blocked by SB203580, PD98059, or SP600125, suggesting that the MAPK pathway regulates IGF-I-induced AR nuclear localization in skeletal muscle cells. The present results suggest that the MAPK pathways are required for the ligand-independent activation of AR by IGF-I in C2C12 skeletal muscle cells.
Toll-like receptors (TLRs) play an important role in host defense by sensing invading microbial pathogens and initiating innate immune responses. The stimulation of TLRs by microbial components triggers the activation of myeloid differential factor 88 (MyD88)- and toll-interleukin-1 receptor domain-containing adapter inducing interferon-${\beta}$ (TRIF)-dependent downstream signaling pathways. Isoliquiritigenin (ILG), an active ingredient of Licorice, has been used for centuries to treat many chronic diseases. ILG inhibits the MyD88-dependent pathway by inhibiting the activity of inhibitor-${\kappa}B$ kinase. However, it is not known whether ILG inhibits the TRIF-dependent pathway. To evaluate the therapeutic potential of ILG, we examined its effect on signal transduction via the TRIF-dependent pathway of TLRs induced by several agonists. ILG inhibited nuclear factor-${\kappa}B$ and interferon regulatory factor 3 activation induced by lipopolysaccharide or polyinosinic-polycytidylic acid. ILG inhibited the lipopolysaccharide-induced phosphorylation of interferon regulatory factor 3 as well as interferon-inducible genes such as interferon inducible protein-10, and regulated activation of normal T-cell expressed and secreted (RANTES). These results suggest that ILG can modulate TRIF-dependent signaling pathways of TLRs, leading to decreased inflammatory gene expression.
In murine gastrointestinal myocytes muscarinic stimulation activates nonselective cation channels via a G-protein and $Ca^{2+}$-dependent pathway. We recorded inward cationic currents following application of carbachol ($I_{CCh}$) to murine gastric myocytes held at -60 mV, using the whole-cell patch-clamp method. The properties of the inward cationic currents were similar to those of the nonselective cation channels activated by muscarinic stimulation in other gastrointestinal smooth muscle cells. CCh-induced $I_{CCh}$ and spontaneous decay of $I_{CCh}$ (desensitization of $I_{CCh}$) occurred. Unlike the situation in guinea pig gastric myocytes, desensitization was not affected by varying $[EGTA]_i$. Pretreatment with the PLC inhibitor (U73122) blocked the activation of $I_{CCh}$, and desensitization of $I_{CCh}$ was attenuated in PLC ${\beta}_1$ knock-out mice. These results suggest that the desensitization of $I_{CCh}$ in murine gastric myocytes is not due to a pathway dependent on intracellular $Ca^{2+}$ but to the PLC ${\beta}_1$ pathway.
Jung, Ju Ri;Kim, Hongtae;Jeun, Sin-Soo;Lee, Joo Yong;Koh, Eun-Jeoung;Ji, Cheol
Molecules and Cells
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v.20
no.2
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pp.196-200
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2005
The neurofibromatosis type2 (NF2) tumor suppressor gene product, merlin, is structurally related to the ezrin-radixin-moesin (ERM) family of proteins that anchor the actin cytoskeleton to specific membrane proteins and participate in cell signaling. However, the basis of the tumor suppressing activity of merlin is not well understood. Previously, we identified a role of merlin as an inhibitor of the Ras-ERK signaling pathway. Recent studies have suggested that phosphorylation of merlin, as of other ERM proteins, may regulate its function. To determine whether phosphorylation of merlin affects its suppression of Ras-ERK signaling, we generated plasmids expressing full-length merlin with substitutions of serine 518, a potential phosphorylation site. A substitution that mimics constitutive phosphorylation (S518D) abrogated the ability of merlin to suppress effects of the Ras-ERK signaling pathway such as Ras-induced SRE transactivation, Elk-mediated SRE transactivation, Ras-induced ERK phosphorylation and Ras-induced focus formation. On the other hand, an S518A mutant, which mimics nonphosphorylated merlin, acted like wild type merlin. These observations show that mimicking merlin phosphorylation impairs not only growth suppression by merlin but also its inhibitory action on the Ras-ERK signaling pathway.
In yeast the key gluconeogenic enzyme, fructose-1,6-bisphosphatase (FBPase), is selectively targeted from the cytosol to the lysosome (vacuole) for degradation when glucose starved cells are replenished with glucose. The pathway for glucose induced FBPase degradation is unknown. To identify the receptor-mediated degradation pathway of FBPase, we investigated the presence of the FBPase receptor on the vacuolar membrane by cell fractionation experiments and binding assay using vid mutant (vacuolar import and degradation), which is defective in the glucose-induced degradation of FBPase. FBPase sedimented in the pellets from vid24-1 mutant after centrifugation at $15,000{\times}g$ for 15 min, suggesting that FBPase is associated with subcellular structures. Cell fractionation experiments revealed that FBPase is preferentially associated with the vacuole, but not with other organelles in vid24-1. FBPase enriched fractions that cofractionated with the vacuole were sensitive to proteinase K digestion, indicating that FBPase is peripherally associated with the vacuole. We developed an assay for the binding of FBPase to the vacuole. The assay revealed that FBPase bound to the vacuole with a Kd of $2.3{\times}10^6M$. The binding was saturable and specific. These results suggest that a receptor for FBPase degradation exists on the vacuolar membrane. It implies the existence of the receptor-mediated degradation pathway of FBPase by the lysosome.
The Toll signalling pathway in invertebrates is responsible for defense against Gram-positive bacteria and fungi, leading to the expression of antimicrobial peptides via NF-$\kappa$B-like transcription factors. Gram-negative binding protein 3 (GNBP3) detects beta-1,3-glucan, a fungal cell wall component, and activates a three step serine protease cascade for activation of the Toll signalling pathway. Here, we showed that the recombinant N-terminal domain of Tenebrio molitor GNBP3 bound to beta-1,3-glucan, but did not activate down-stream serine protease cascade in vitro. Reversely, the N-terminal domain blocked GNBP3-mediated serine protease cascade activation in vitro and also inhibited beta-1,3-glucan-mediated antimicrobial peptide induction in Tenebrio molitor larvae. These results suggest that the N-terminal GNBP homology domain of GNBP3 functions as a beta-1,3-glucan binding domain and the C-terminal domain of GNBP3 may be required for the recruitment of immediate down-stream serine protease zymogen during Toll signalling pathway activation.
The Hippo pathway plays prominent and widespread roles in various forms of human carcinogenesis. Specifically, the Yes-associated protein (YAP), a downstream effector of the Hippo pathway, can lead to excessive cell proliferation and the inhibition of apoptosis, resulting in tumorigenesis. It was reported that the YAP is strongly elevated in multiple types of human malignancies such as breast, lung, small intestine, colon, and liver cancers. Recent work indicates that, surprisingly, Hippo signaling components' (SAV1, MST1/2, Lats1/2) mutations are virtually absent in human cancer, rendering this signaling an unlikely candidate to explain the vigorous activation of the YAP in most, if not all human tumors and an activated YAP promotes the resistance to RAF-, MAPK/ERK Kinase (MEK)-, and Epidermal growth factor receptor (EGFR)-targeted inhibitor therapy. The analysis of YAP expressions can facilitate the identification of patients who respond better to an anti-cancer drug treatment comprising RAF-, MEK-, and EGFR-targeted inhibitors. The prominence of YAP for those aspects of cancer biology denotes that these factors are ideal targets for the development of anti-cancer medications. Therefore, our report strongly indicates that the YAP is of potential prognostic utility and druggability in various human cancers.
Park, Jong-Koo;Cho, Hi-Jae;Lim, Yoon-Gho;Cho, Youl-Hee;Lee, Chul-Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.12
no.2
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pp.222-227
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2002
Squalene synthase catalyzes the reductive dimerization of two molecules of farnesyl diphosphate to form squalene at the final branch point of the cholesterol biosynthetic pathway. Due to the unique position of this enzyme in the pathway, its inhibitors may have advantages as antihypercholesterolemic agents. Therefore, selective inhibitors of squalene synthase do not prevent the formation of the essential branch products of the isoprene pathway, such as dolichol, coenzyme-Q, and prenylated proteins, as might be expected for inhibitors of enzymes earlier in the pathway; for example, lovastatin and mevalotin. The current study reports that CJ90002, a pentagalloylglucose isolated from Paeonia moutan SIM (Paeoniaceae), which is an important Chinese crude drug used in many traditional prescriptions, was a potent inhibitor of rat microsomal squalene synthase, and also a potent inhibitor of cholesterol biosynthesis in vitro. In addition, the intraperitoneal and oral administration of CJ90002 had a significant lowering effect on plasma cholesterol levels in hamsters.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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