A system was established for induction of multi-shoots and plant regeneration from mesophyll protoplasts of alfalfa, Medicago sativa L. cv. Vernal. Different hormonal effects were tested at each step of protoplast culture, i.e. cell division in modified Kao's liquid medium (K566-7). calli formation on SH semi solid medium, and multi-shoot regeneration from calli on SHa and SHb solid media. Frequency of multi-shoots and plant regeneration was affected by various combinations of phytohormones in final step. The evaluation of multi-shoots induction systems via protoplast culture was discused.
Protoplasts of palisade cells were aseptically isolated from leaves of Nicotiono apicona Merxm. by the one step enzymatic method. Efficiency of colony formation were depended on cell density and light condition during incubation, but an intensity of 47 ft-c during a period of 2 weeks after isolation of the protoplasts in the Nagata and Takebe's medium promoted the planting efficiency. Protoplast - derived calli of N. africana can be differentiated into shoot when cultured on Murashige and skoog's medium containing IAA(0.Smg/$\ell$) and zeatin(5.0mg/$\ell$).
The regenerative capacities of protoplasts isolated from potato (Solamum tuberosum L.) tubers and tobacco (Nicotiana tabacum L.) mesophyll tissues were examined, and then their intergeneric protoplast fusion was carried out. The potato tuber-derived protoplasts proliferated into the calli some of which showed rudimentary shoot-like structures, which had not been attempted before from tubers, while the tobacco protoplasts were regenerated into the whole plants. Intergeneric protoplast fusion between potato and tobacco was carried out and the heteroplasmic fusion products were formed. The first cell division of some of them was observed after 5 days of culture.
To obtain a basic information on the development of Genus Viola, ultrastructure and electrofusion process between the two protoplasts from wild Viola callus cells and pansy mesophyll cells were observed with a scanning electron microscopy(SEM) and transmission electron microscopy(TEM). In the ultrastructural observation of wild viola callus protoplasts and pansy mesophyll protoplasts using SEM, their cell walls were removed completely. A knob-like formation was observed on the enlarge surface of viola callus protoplasts. On the surface of pansy mesophyll protoplasts net-like chloroplasts were observed. In SEM observation of pansy mesophyll protoplasts, chloroplasts devoid of membrane were observed on the surface the protoplasts. Pearl chain was formed by applying AC field of 200 V/cm at 1.0 MHz for 43 sec. The lysis of plasma membranes and fusion process occurred by applying a 1,600 V/cm DC pulse twice for 1 sec. After 1-2 hours of a DC pulse application, it was observed that the two protoplasts were fused completely into one cell. In TEM observation of the fused cell, many small vacuoles were located in the fusion area of the two protoplasts. Indeed, two distinct regions were observed during fusing process; in one region, a nucleus was found, while in the other region, both nucleus and nucleous were found.
The insecticidal protein gene in the pKL-20-1 clone derived from Bacillus thuringiensis serovar. kurstaki plasmid was subcloned in the plant shuttle vector, pGA643. The 7.3 kb fragment was cloned in the BglII and Hpal sites of pGA643 vector and expressed in E. coli S17-1, which produced insecticidal proteins killing Bombyx mori larvae. The clone was named pHL-20. The protoplast formation, calli induction and plantlet regeneration of Nicotiana tabacum was carried out. A tremendous number of mesophyll protoplasts of N. tabacum were formed, up to 7$\times$105 protoplast per ml, for 20 hours in darkness in the enzyme solution of 0.5% cellulase and 0.1% macerosin, pH 5.8. The viabilities of the protoplasts were maintained above 80% for 6 days in the media containing 2mg/1 of NAA and 1mg/1 of kinetin. Calli were induced from the protoplasts and leaves of the N. tabacum on MS medium containing 0.5mg/1 BAP. Under the culture conditions the protoplasts underwent repeated cell division into calli. Plantlets were regenerated from callus cultures derived from protoplast and leaves. Shoots were induced in a medium containing 1mg/1 of BAP.
세포질 유전형질의 도입을 성공적으로 수행코자 세질 웅성 불임(eMS; cytoplasmic male sterilit ty) 계통의 담배 MS(male sterility) Burley 21의 callus tissue에서 cytoplast를 분리시키고 이와 Nic cotiana tabacum Burley 64의 mesophyll protoplast 를 PEG방법에 의한 세포융합으로 cybrid cell올 유도할 수 있었다. cytoplast의 분라는 density gradient solution의 osmolarity를 일정하게 하는 것보다 gradient간의 차이가 더 효과적이였으며 분리된 cytoplast의 양은 재료로 이용된 protoplast의 20-30% 정도를 나타 내었다. 또한 cytoplast와 protoplast의 융합은 P PEG농도 50%에셔 효과적이었다.
4주 배양된 애기장대의 엽육조직으로부터 원형질체를 분리하여 2.0mg/L NAA, 0.5mg/L BAP및 9% mannitol이 포함된 MS 액체배지에서 $25^{\circ}C$, 암조건에서 배양하였다. 원형질체 유래 microcolonies를 dehydration시켜 배양하였을 때 non-dehydration에 비해 7배의 높은 캘러스 유도율을 나타내었다. Dehydrated microcolonies들 중에서 50개의 캘러스를 선별하여 0.05 mg/L NAA, 7mg/L 2-iP가 첨가된 MS배지에서 광조건으로 배양하였을 때 점차적으로 녹화되기 시작하였으며 배양 4주 후부터 전체적으로 녹화된 SF캘러스에서 green spots이 형성되었다 Shoot형성률은 식물생장조절물질의 종류에 따라 3.5%~56%로 나타났다. 재분화된 shoot는 식물생장조절물질이 첨가되지 않은 MS배지에서 뿌리를 유도하였으며 이들을 토양에 이식하여 완전한 재분화 식물체를 얻을 수 있었다. Shoot 형성과정을 조직학적인 측면에서 관찰한 결과, 배양초기에는 신장된 무정형의 세포가 대부분이었으나 배양이 진전됨에 따라 주위 세포들과 구별이 뚜렷한 도관요소 (tracheary element)와 분열조직군 (meristemoid)이 형성되면서 shoot primodia가 shoot로 발달되는 것을 관찰할 수 있었다. 재분화 식물체는 형태적으로 normal type이 78%이고 abnormal type이 22%였다.
술패랭이꽃의 엽육원형질체를 2.0mg/L NAA, 0.5 mg/L BAP 및 9%의 mannitol이 포함된 MSPI 9M 액체배지에서 배양하였다. 27$^{\circ}C$, 암조건에서 배양 3-4주일 후 활발한 분열과정을 거쳐 원형질체로부터 colony가 형성되었으며 이들colony는 연속광 (21.5 $\mu$Eㆍ $m^{-2}$ ㆍse $c^{-1}$)하에서 배양 2주일 후 직경 약 3 mm의 녹색 microcallus로 생장하였다. 녹색 microcallus는 2.0 mg/L 2,4-D가 첨가된 고체배지에서 배양30일 후 배발생 캘러스를 형성하였으며 이들 배발생 캘러스는 0.1 mg/L 2,4-D, 2.0 mg/L kinetin 및 2.0 g/L casein hydrolysate가 포함된 $N_{6-}$2 배지에서 캘러스당 10-15개의 multiple shoot의 분화가 이루어졌다. 재분화된 shoot는 2.0mg/L NAA가 포함된 MS 배지에서 뿌리가 유도되었으며 이들을 pot로 이식하여 재분화 개체를 획득할 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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