Fungal ${\beta}$-glucan, known to have immunostimulatory and antitumor activities, can be recognized by host immune cells as one of the pathogen-associated molecular patterns (PAMPs). Although there are several reports on the diverse immunostimulatory activities of ${\beta}$-glucan, little is known about the intracellular signal transduction of ${\beta}$-glucan. Stimulation of RAW264.7 macrophage cells with ${\beta}$-glucan from Ganoderma lucidum induced the expressions of dectin-1, toll-like receptor 2 (TLR2), TLR4, and TLR6 at the transcription stage. Treatment with ${\beta}$-glucan also induced inflammatory mediators such as macrophage inflammatory proteins (MIP)-$1{\alpha}$, MIP-$1{\beta}$, MIP-$1{\gamma}$, interleukin (IL)-$1{\beta}$, and tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$. Treatment of the cells with polymyxin B, an inhibitor of lipopolysaccharides (LPS), blocked the induction of inflammatory mediators in LPS- or ${\beta}$-glucan-stimulated systems. Pretreatment of the cells in our cell culture system with LY294002, a phosphoinositide 3-kinase (PI3K) inhibitor, or U0126, a mitogen-activated protein kinase/extracellular-signal-regulated kinase (MAPK/ERK) kinase (MEK)1/MEK2 inhibitor, led to a reduction in the induction of inflammatory mediators in a concentration-dependent manner. These results show that stimulation of the macrophage cells by ${\beta}$-glucan induced the expressions of both dectin-1 and TLRs. We also found that the PI3K/Akt and MEK pathways were involved in the induction of inflammatory mediators in macrophage cells during intracellular signal transduction of ${\beta}$-glucan.
Background: Little information is available on the identification and characterization of the upstream regulators of the signal transduction cascades for Mycobacterium tuberculosis (M. tbc)-induced ERK 1/2 activation and chemokine expression. We investigated the signaling mechanisms involved in expression of CCL3 /MIP-1 and CCL4/MIP-1 in human primary monocytes infected with M. tbc. Methods: MAP kinase phosphorylation was determined using western blot analysis with specific primary antibodies (ERK 1/2, and phospho-ERK1/2), and the upstream signaling pathways were further investigated using specific inhibitors. Results: An avirulent strain, M. tbc H37Ra, induced greater and more sustained ERK 1/2 phosphorylation, and higher CCL3 and CCL4 production, than did M. tbc H37Rv. Specific inhibitors for mitogen-activated protein kinase (MAPK) kinase (MEK; U0126 and PD98059) significantly inhibited the expression of CCL3 and CCL4 in human monocytes. Mycobactetia-mediated expression of CCL3 and CCL4 was not inhibited by the Ras inhibitor manumycin A or the Raf-1 inhibitor GW 5074. On the other hand, phospholipase C (PLC) inhibitor (U73122) and protein kinase C (PKC)specific inhibitors ($G\ddot{o}6976$ and Ro31-8220) significantly reduced M. tbc-induced activation of ERK 1/2 and chemokine synthesis. Conclusion: These results are the first to demonstrate that the PLC-PKC-MEK-ERK, not the Ras-Raf-MEK-ERK, pathway is the major signaling pathway inducing M. tbc-mediated CCL3 and CCL4 expression in human primary monocytes.
Kim, Young-Il;Lee, Jang-Hoon;Park, Seung-Won;Choi, In-Hwa;Friedman, Scott L.;Woo, Hong-Jung;Kim, Young-Chul
Advances in Traditional Medicine
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v.10
no.4
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pp.254-262
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2010
Artemisia capillaris (A. capillaries) is known to play roles in many cellular events, such as cell proliferation, differentiation, and apoptosis. We investigated the antifibrogenic efficacy of A. capillaris in the immortalized human hepatic stellate cell line LX2. Cell proliferation was determined by the MTT assay. Cell cycle was analyzed by the flow cytometry. Apoptotic cells were measured using a cell death detection ELISA. Caspase activity was detected by a colorimetric assay. The mRNA level of Bcl-2 and Bax mRNA were measured by real-time PCR. MEK and ERK protein were detected by Western blot analysis. We provide evidence that A. capillaris induces cell cycle arrest, apoptosis, and potently inhibits the mitogen-activated protein kinase pathway. A. capillaris inhibited cell proliferation of LX2 cells in a dose- and time-dependent manner, increased the apoptosis fraction at cell cycle analysis with an accompanying DNA fragmentation, and resulted in a significant decrease in Bcl-2 mRNA levels and an increase in Bax expression. Exposure of LX2 cells to A. capillaris induced caspase-3 activation, but co-treatment of A. capillaris with the pan-caspase inhibitor Z-VAD-FMK, and the caspase-3 inhibitor Z-DEVE-FMK, blocked apoptosis. A. capillaris down-regulated Mcl-1 protein levels and inhibited phosphorylation of MEK/ERK, suggesting that it mediates cell death in LX2 cells through the down-regulation of Mcl-1 protein via a MEK/ERK-independent pathway.
The expression of interleukin-1α (IL-1α) is elevated in monocytic cells, such as monocytes and macro-phages, within atherosclerotic arteries, yet the cellular molecules involved in cytokine upregulation remain unclear. Because peptidoglycan (PG), a major component of gram-positive bacterial cell walls, is detected within the inflammatory cell-rich regions of atheromatous plaques, it was investigated if PG contributes to IL-1α expression in monocytes/macrophages. Exposure of THP-1 monocytic cells to PG resulted in elevated levels of IL-1α gene transcripts and increased secretion of IL-1α protein. The transcription and secretion of IL-1α were abrogated by OxPAPC, an inhibitor of TLR2/4, but not by polymyxin B that inhibits lipopolysaccharide-induced TLR4 activation. To understand the molecular mechanisms of the inflammatory responses due to bacterial pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) in diseased arteries, we attempted to determine the cellular factors involved in the PG-induced upregulation of IL-1α expression. Pharmacological inhibition of cell signaling pathways with LY294002 (a PI3K inhibitor), Akti IV (an inhibitor of Akt activation), rapamycin (an mTOR inhibitor), U0126 (a MEK inhibitor), SB202190 (a p38 MAPK inhibitor), SP6001250 (a JNK inhibitor), and DPI (a NOX inhibitor) also significantly attenuated the PG-mediated expression of IL-1α. These results suggest that PG induces the monocytic or macrophagic expression of IL-1α, thereby contributing to vascular inflammation, via multiple signaling molecules, including TLR2, PI3K/Akt/mTOR, and MAPKs.
The principal objective of this study was to evaluate the chemopreventive and therapeutic effects of a combination of all-trans-retinoic acid (RA) and knockdown of delta-like 1 homologue (Drosophila) (DLK1) on neuroblastoma, the most common malignant disease in children. As unfavorable neuroblastoma is poorly differentiated, neuroblastoma cell was induced differentiation by RA or DLK1 knockdown. Neuroblastoma cells showed elongated neurite growth, a hallmark of neuronal differentiation at various doses of RA, as well as by DLK1 knockdown. In order to determine whether or not a combination of RA and DLK1 knockdown exerts a greater chemotherapeutic effect on neuroblastoma, cells were incubated at 10 nM RA after being transfected with SiRNA-DLK1. Neuronal differentiation was increased more by a combination of RA and DLK1 knockdown than by single treatment. Additionally, in order to assess the signal pathway of neuroblastoma differentiation induced by RA and DLK1 knockdown, treatment with the specific MEK/ERK inhibitors, U0126 and PD 98059, was applied to differentiated neuroblastoma cells. Differentiation induced by RA and DLK1 knockdown increased ERK phosphorylation. The MEK/ERK inhibitor U0126 completely inhibited neuronal differentiation induced by both RA and DLK1 knockdown, whereas PD98059 partially blocked neuronal differentiation. After the withdrawal of inhibitors, cellular differentiation was fully recovered. This study is, to the best of our knowledge, the first to demonstrate that the specific inhibitors of the MEK/ERK pathway, U0126 and PD98059, exert differential effects on the ERK phosphorylation induced by RA or DLK1 knockdown. Based on the observations of this study, it can be concluded that a combination of RA and DLK1 knockdown increases neuronal differentiation for the control of the malignant growth of human neuroblastomas, and also that both MEK1 and MEK2 are required for the differentiation induced by RA and DLK1 knockdown.
Renal fibrosis is a final common manifestation of every type of chronic kidney disease. Plasminogen activator inhibitor (PAI)-1 is induced by lipopolysaccharide (LPS) and is known to play an essential role in the progress of renal fibrosis. In this paper, we found that an isoprenoid antibiotic, ascofuranone (AF), suppresses expression of profibrotic factors, PAI-1 and promoter activity of PAI-1 induced by LPS in rat kidney fibroblast cells. We therefore investigated signaling pathway mediated inhibitory effects of LPS-induced PAI-1 by AF in rNRK-49F cells. PAI-1 expression is suppressed by treatment with kinase inhibitors for MEK-1/2, as it isin inhibition of PAI-1 expression by AF, and AF inhibits phosphorylation of ERK-1/2. This study suggest that AF suppresses expression of PAI-1 through the inhibition of an ERK-1/2-dependent signal transduction pathway. The data indicates the possibility that AF can be used to prevent the development and progression of renal fibrosis.
Objectives : This study was designed to investigate the neuroprotective effect of Hwansodan(Huanshao-dan) on the apoptosis induced by withdrawal of neurotrophic support. Methods : PCl2 pheochromocytoma cells have been used extensively as a model for studying the cellular and molecular effects of neuronal cells. The viability of cells was measured by MTT assay. We used DNA fragmentation and caspase 3-like protease activation assay. Results : The water extract of Hwansodan(Huanshao-dan) significantly showed protective effects on serum and glucose deprivation-induced apoptotic death. Hwansodan(Huanshao-dan) also prevents DNA fragmentation and caspase 3-like protease activation, representing typical neuronal apoptotic phenomena in PCl2 pheochromocytoma cells and induces tyrosine phosphorylation of proteins around 44 kDa, which was identified as ERK1 with electrophoretic gel mobility shift by Western blot. In addition, MAPK kinase(MEK) inhibitor PD98059 and Ras inactivator, ${\alpha}-hydroxyfarnesylphosphonic$ acid attenuated the neuroprotective effects of Hwansodan(Huanshao-dan) in serum-deprived PCl2 cells. Conclusions : These results indicate that Ras/MEK/ERK signaling pathway plays a key role in neuroprotective effects of Hwansodan(Huanshao-dan) in serum-deprived PCl2 cells. Taken together, we suggest the possibility that Hwansodan(Huanshao-dan) might provide a neurotrophic-like activity in PCl2 cells.
In most larvae of ascidian, two sensory pigment cells, otolith and ocellus, lie in their brain vesicle. They also have a third type of sensory cells: hydrostatic pressure receptor (Hpr) cells. The Hpr cells were presumed to be hydrostatic pressure-detection cells, but their precise functions is still disputed. In this study, we investigated whether an FGF signaling is involved in formation of Hpr cells. When fertilized eggs were injected with Hr-FGF9/16/20 antisense MO, the resulting larvae showed severe abnormalities with no expression of the Hpr cell-specific Hpr-1 antigen. Similar results were obtained using an FGF receptor inhibitor, SU5402, and an MEK inhibitor, U0126. Embryos treated with SU5402 or U0126 during the 32-cell and hatching stages did not express the Hpr-1 antigen. To elucidate the temporal requirement for the FGF signaling in formation of Hpr cells, embryos were treated with SU5402 for 2 h, or U0126 for 20 min during various embryonic stages. Larvae treated with SU5402 from the 16-cell stage to the 64-cell stage did not express the Hpr-1 antigen, whereas those treated at the early gastrula stage expressed the Hpr-1 antigen. When U0126 treatment was carried out at various stages between the 8-cell and late gastrula stages, larvae scarcely formed the Hpr cells. They showed expression of the Hpr-1 antigen when embryos were placed in U0126 just before the neural plate stage. These results suggest that FGF9/16/20 signaling is involved in formation of Hpr cells from the primary neural induction stage to the late gastrula stage.
Cho, Young-Suk;Kim, Chan Hyung;Ha, Tae-Sun;Lee, Sang Jin;Ahn, Hee Yul
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.2
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pp.133-137
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2013
Vascular cell adhesion molecule 1 (VCAM-1), intercellular adhesion molecule 1 (ICAM-1), P- and E-selectin play a pivotal role for initiation of atherosclerosis. Ginsenoside, a class of steroid glycosides, is abundant in Panax ginseng root, which has been used for prevention of illness in Korea. In this study, we investigated the mechanism(s) by which ginsenoside Rg2 may inhibit VCAM-1 and ICAM-1 expressions stimulated with lipopolysaccharide (LPS) in human umbilical vein endothelial cell (HUVEC). LPS increased VCAM-1 and ICAM-1 expression. Ginsenoside Rg2 prevented LPS-mediated increase of VCAM-1 and ICAM-1 expression. On the other hand, JSH, a nuclear factor kappa B (NF-${\kappa}B$) inhibitor, reduced both VCAM-1 and ICAM-1 expression stimulated with LPS. SB202190, inhibitor of p38 mitogen-activated protein kinase (p38 MAPK), and wortmannin, phosphatidylinositol 3-kinase (PI3-kinase) inhibitor, reduced LPS-mediated VCAM-1 but not ICAM-1 expression. PD98059, inhibitor of mitogen-activated protein kinase kinase/extracellular signal-regulated kinase (MEK/ERK) did not affect VCAM-1 and ICAM-1 expression stimulated with LPS. SP600125, inhibitor of c-Jun N-terminal kinase (JNK), reduced LPS-mediated ICAM-1 but not VCAM-1 expression. LPS reduced IkappaB${\alpha}$ ($I{\kappa}B{\alpha}$) expression, in a time-dependent manner within 1 hr. Ginsenoside Rg2 prevented the decrease of $I{\kappa}B{\alpha}$ expression stimulated with LPS. Moreover, ginsenoside Rg2 reduced LPS-mediated THP-1 monocyte adhesion to HUVEC, in a concentration-dependent manner. These data provide a novel mechanism where the ginsenoside Rg2 may provide direct vascular benefits with inhibition of leukocyte adhesion into vascular wall thereby providing protection against vascular inflammatory disease.
Objective: The mechanism of action of fatty acid synthase (FASN) in drug tolerance of breast cancer cells with epithelial-mesenchymal transition (EMT) features was investigated. Methods: The breast cancer cell line MCF-7-MEK5 with stably occurring EMT and tumour necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$) tolerance was used as the experimental model, whereas MCF-7 acted as the control. Tumour cells were implanted into nude mice for in vivo analysis, and cerulenin was used as a FASN inhibitor. RT-PCR, real-time quantitative PCR and Western blot were employed to detect the expression of FASN, TNFR-1, TNFR-2, Wnt-1, ${\beta}$-catenin and cytC at the RNA and protein levels. Results: Compared with MCF-7, TNFR-1 expression in MCF-7-MEK5 was slightly changed, TNFR-2 was decreased, and FASN, Wnt-1, ${\beta}$-catenin and cytC were increased. The expression of Wnt-1 and ${\beta}$-catenin in MCF-7-MEK5 decreased after cerulenin treatment, whereas cytC expression increased. Conclusions: The important function of FASN in the drug tolerance of breast cancer may be due to the following mechanisms: FASN downregulated TNFR-2 expression through lipid rafts to make the cells less sensitive to TNF-${\alpha}$, and simultaneously activated the Wnt-$1/{\beta}$-catenin signalling pathway. Thus, cytC expression increased, which provided cells with anti-apoptotic capacity and induced drug tolerance.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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