Leonowicz, Andrzej;Cho, Nam-Seok;Wasilewska, Maria W.;Rogalski, Jerzy;Luterek, Jolanta
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.25
no.2
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pp.1-20
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1997
목재를 분해시키는 담자균류들은 목재 및 목질복합체에 쉽사리 침투하여 복잡한 리그노셀룰로오스 복합체를 분해시킨다. 이러한 분해에는 많은 효소시스템들이 복합적으로 작용하면서 상호 협동하는 것으로 보고되고 있다. 지금까지 일려진 효소들은 통상 3개의 그룹으로 나눌 수 있는데 그 하나는 목재성분을 직접적으로 공격하는 효소균들, 예를 들면 cellulase complex, laccase(LAC), lignin peroxidase(LIP), horse-radish peroxidase(HRP), manganese-independent peroxidase(MIP) 및 protocatechuate 3,4-dioxygenase(PCD) 등이 있고, 두번째 그룹으로서 manganese-dependent peroxidase(MnP), aryl alcohol oxidase(AAO) 및 glyoxal oxidase(GLO) 등인데, 이들 효소들은 목질을 직접적으로 공격하지 않고 제1그룹의 효소들과 협동하여 작용하는 것으로 알려지고 있다. 제3그룹의 효소들은 glucose oxidase(GOD) 및 cellobiose : quinone oxidoreductase(CBQ)로서 feedback type의 효소들로서 목재고분자의 분해시 대사의 고리를 결합시켜 주는 매우 중요한 기능을 하는 효소군들이다. 그러나 이 이외에도 다른 분해기구가 밝혀지고 있으며 기타 효소들에 의한 리그노셀룰로오스의 분해반응기구의 해명에는 상당한 시간이 걸릴 것으로 사료된다.
Peroxidase has been isolated to apparent homogeneity from earthworm, Lumbricus rubellus, using ammonium sulfate fractionation, Sephacryl S-2000 gel filtration, CM-cellulose cation exchange chromatography and native-PAGE elution. Some of its enzymatic characteristics were examined. The optimum pH for gruaiacol oxidation of earthworm peroxidase was determined to be 6.0, and the $K_{m}$ values against guaiacol and $H_2O_2$ were 1.25 mM and 3.4mM, respectively. When various compounds were tested as the possible substrates of the enzyme, o-dianisidine was used as the substrate. However, earthworm peroxidase could not oxidize esculetin and ferulic acid as substrates, suggesting the different characteristics of the enzyme from plant peroxidases. The optimum pH for veratryl alcohol and $H_2O_2$ oxidation was determined to be 2.5 when lignin peroxidation activity was examined. The $K_{m}$ values for veratryl alcohol and $H_2O_2$ were 0.02 mM and 0.13 mM, respectively. Furthermore, the earthworm peroxidase could oxidize phenoxyherbicides such as 2,4-D, 2,4-DP and MCPA as substrates. The optimum pHs for 2,4-D, 2,4-DP and MCPA were determined to be 4.0, 2.0 and 2.0, respectively. The most available substrate was 2,4-DP, followed by MCPA and 2,4-D when their peroxidation activities were compared.
Trametes versicolor has a lignin degrading enzyme system, which is also involved in the degradation of diverse recalcitrant compounds. Manganese-dependent peroxidase (MnP) is one of the lignin degrading enzymes in T. versicolor. In this study, a cDNA clone of a putative MnP-coding gene was cloned and transferred into an expression vector (pBARGPE1) carrying a phosphinothricin resistance gene (bar) as a selectable marker to yield the expression vector, pBARTvMnP2. Transformants were generated through genetic transformation using pBARTvMnP2. The genomic integration of the MnP clone was confirmed by PCR with bar-specific primers. One transformant showed higher enzyme activity than the recipient strain did, and was genetically stable even after 10 consecutive transfers on non-selective medium.
Most fungi possess several hydrogen peroxide-generating enzymes, glucose oxidase and pyranose oxidase. Pyranose oxidase can use glucose as its substrate to generate hydrogen peroxide. White rot fungi, which degrade diverse recalcitrant compounds, contain lignin-degrading enzymes, and lignin peroxidase and manganese peroxidase require hydrogen peroxide for their enzymatic reactions. In this study, we isolated a cDNA fragment of pyranose oxidase from Phlebia tremellosa using PCR and examined its expression under the degradation conditions of diethylphthalate (DEP). Pyranose oxidase expression was enhanced up to 30% by the addition of DEP, and this result supports the possible involvement of pyranose oxidase in the degradation of recalcitrant compounds.
Lignin degrading enzymes from Lentinula edodes have broad substrate specificities, and therefore can degrade a variety of recalcitrant compounds. In this study, the lignolytic biodegradation was investigated in five different L. edodes fungi (Chunbaegko, Sanjo 303ho, Poongnyunko, Baekhwahyang, and Soohyangko). The fungi were evaluated for their ability to decolorize Remazol Brilliant Blue R (RBBR) in malt extract broth medium. Sanjo 303ho, Poongnyunko, Baekhwahyang, and Soohyangko rapidly decolorized RBBR within 7 days. The activities of manganese peroxidase (MnP) and laccase were determined in the absence and presence of lignin. Poongnyunko displayed the highest ligninolytic activity on day 7 of incubation (2,809 U/mg and 2,230 U/mg for MnP and laccase, respectively).
The present research was undertaken to investigate the activity of ligninolytic enzymes and the decolorization capability of some dyes with Irpex zonatus BN2, isolated from nature and identified. For the assay of enzyme activities, the isolate did not produce lignin peroxidase (LiP) and veratryl alcohol oxidase (VAO), but laccase and manganese dependent peroxidase (MnP). While the activity for MnP was low $(61.6\;nmol/mg{\cdot}protein)$, its laccase activity was very high $(1185.9\;nmol/mg{\cdot}protein)$. Moreover, laccase had appeared earlier than MnP. When the isolate was incubated with each dye for 10 days, the decolorization rates of azo dyes, such as orange II, orange G, tropaeolin O and congo red were 98.0%, 97.4%, 99.0% and 95.3%, respectively. In case of heterocyclic dyes, eosin Y, toludine blue, methyl blue and azur B were 97.4 %, 98.7%, 99.9% and 94.0% respectively. Finally the results of triphenylmethane dye such as basic fuchsin, malachite green and crystal violet were 98.5%, 95.7% and 99.4%, respectively. The results suggest that laccase of Irpex zonatus BN2 should be played an important role in the decolorization of the dyes.
This study tested the relative and combined efficacy of ShPx2 and ShPAL transgenes by comparing Nicotiana tabacum hybrids with enhanced levels of $_L$-phenylalanine ammonia lyase (PAL) activity and cationic peroxidase (Prx) activity with transgenic parental lines that overexpress either transgene. The PAL/Prx hybrids expressed both transgenes driven by the 35S CaMV promoter, and leaf PAL and Prx enzyme activities were similar to those of the relevant transgenic parent and seven- to tenfold higher than nontransgenic controls. Lignin levels in the PAL/Prx hybrids were higher than the PAL parent and nontransgenic controls, but not significantly higher than the Prx parent. All transgenic plants showed increased resistance to the necrotrophs Phytophthora parasitica pv. nicotianae and Cercospora nicotianae compared to nontransgenic controls, with a preponderance of smaller lesion categories produced in Prx-expressing lines. However, the PAL/Prx hybrids showed no significant increase in resistance to either pathogen relative to the Prx parental line. These data indicate that, in tobacco, the PAL and Prx transgenes do not act additively in disease resistance. Stacking with Prx did not prevent a visible growth inhibition from PAL overexpression. Practical use of ShPAL will likely require more sophisticated developmental control, and we conclude that ShPx2 is a preferred candidate for development as a resistance transgene.
To obtain white rot fungi which have selective delignification capacity and can be used in biopulping processes, 94 different wood rotting fungi were screened and the capabilities of selected species were evaluated on deciduous and coniferous wood blocks. White rot fungi, first of all, were selected by simple enzyme tests, i.e., cellulase activity test; phenol oxidase activity test; laccase and peroxidase activity test. Most organisms that gave a positive Bavendamm gave a strongly positive laccase test with syringaldazine whereas most of those that gave a negative Bavendamm test also negative test for laccase and peroxidase, even if some exceptions were noted. Wood decay experiement were carried out to select fungal species with selective lignin-degrading ability by inoculating selected fungi to both wood blocks of Populus tomentiglandulosa and Larix leptolepis. After 12 weeks of incubation, weight losses, lignin losses, and morphological characteristics of the decayed wood were investigated. Almost all fungi tested caused 2 or more times of weight losses in P. tomentiglandulosa than in L. leptolepis, while no weight losses were detected from the un-inoculated wood blocks. Ceriporiopsis subvermispora and Phanerochaete chrysosporium were the best delignifiers for both hardwood and softwood. P. chrysosporium, however, was less effective than C. subvermispora. Bjerkandera adusta and two unidentified spp. caused delignification for only P. tomentiglandulosa. B. adusta caused simultaneous rot of all cell wall components, resulted in thinning of the secondary cell wall layers. Other fungi caused selective delignification resulting in the removal of lignin from middle lamella and separation of cells from each other.
Sixty strains of Pleurotus ostreatus, white-rot fungi, were screened for production ability of their lignocellulolytic enzymes to selectively wood degradation. That results were shown that all of screened strains were produced lignocellulolytic enzymes on 2nd screening liquid culture medium. However, cellulase activity of selected six strains of P. ostreatus was low in avicel-yeast-peptone liquid culture medium. In the case of xylan degrading enzyme, No. 6 and No. 38 strains produced a xylanase(above 1.0U/ml) and a 1,4-${\beta}$-xylosidase (above 0.15 U/ml). Examination of the ligninolytic enzyme profiles of selected thirteen strains of the P. ostreatus, in the presence of Remazol Brilliant Blue R(RBBR), were observed that laccase(Lac) activity were earlier reached maximum level(0.8-2.0 U/ml) and then Mn-dependent peroxidase (MnP) were reached maximum level(0.5-1.5 U/ml) in glucose-yeast-peptone(GYP) medium. On the other hand, activity of lignin peroxidase(LiP) was not detected in this medium. I selected the No. 42 strain of P. ostreatus produced high levels of Mn-dependent peroxidase and laccase based on the screening method.
Streptomyces sp. AD001 is a Gram-positive soil actinomycetes secreting an uncharacterized 2,4-dichlorophenol (DCP) oxidizing enzyme, whose activity is similar to the previously known Actinomycetes lignin-peroxidase (ALiP). This extracellular peroxidase was purified from Streptomyces sp. AD001 as a single protein band on an SDS-PACE by ammonium sulfate fractionation, Q-sepharose, concanavalin A, and Bio-Gel HTP column chromatographies. The molecular mass of the purified peroxidase was determined by SDS-PAGE to be 45.2 kDa, and 49.7 kDa with MALDI-TOF-MS, respectively. The highest level of peroxidase activity was observed at pH 7.5 and $30^{\circ}C$. The amino terminal sequence of the purified peroxidase (G-E-P-E-E-G-N-V-D-G-T-L) showed no significant homologies to my known proteins, suggesting that Streptomyces sp. AD001 may secrete a novel kind of bacterial peroxidase Initial rate kinetic data of the 2,4-DCP oxidation were best modeled with a random-binding bireactant system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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