This study was carried out to evaluate the safety of Korean human milk. The microorganisms were identified from human milk of 149 healthy mothers by two collection methods, hand and pump expression. The means of total bacterial counts were 2.33x10$^4$ cfu/mL on the samples collected by the pump expression and 7.83xl0$^3$ cfu/mL on those collected by the hand expression. Therefore, the total bacterial counts of pump expression samples was 9.80xl0$^2$∼3.06x10$^4$ cfu/mL more than that of hand expression samples. The coliform counts of pump expression was 9.36xl0$^3$∼8.57xl0$^4$ cfu/mL more than that of hand expression. However, there was any significant differences of the lactic acid bacterial counts between the two samples collected by each methods. 100 strains of 5 patterns of total bacterial counts were isolated based on the morphology of colony in the standard plate count agar. 13 species were identified among the isolated strains. The dominant species in Korean human milk were Staphylococcus which 7 subspecies identified(81% in the rate of total bacteria, 1.07x10$^4$ cfu/mL). Other species identified were Micrococcus, Bacillus, Providencia, Pseudomonas, Yersinia and Acinetobacter. 36 strains of 6 patterns of lactic acid bacterial counts were isolated based on morphology of colony in the BCP agar. 7 species were identified among the isolated strains. The dominant species of lactic acid bacteria in Korean human milk were Lactobacillus brevis(50.9% in the rate of lactic acid bacteria, 4.72xl0$^4$ cfu/mL). Others species identified(49.1% lactic acid bacteria) were Lactobacillus curvatus, Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis, Lactobacillus acidophilus, Leuconostic lactis and Streptococcus salivarius subsp. thermophilus.
Seventeen lactic acid bacterial strains (LAB) were isolated using MRS agar medium from Jeotgal, a Korean fermented food, purchased at the Jukdo market of Pohang. To identify the strains isolated, they were tested by examining their cell morphologies, gram-staining, catalase activity, arginine hydrolase activity, D-L lactate form and carbohydrate fermentation. According to the phenotypic characteristics, three strains were tentatively identified as Lactobacillus spp., ten were Enterococcus spp. (or Streptococcus spp., or Pediococcus spp.) and the rest were Leuconostoc spp. (or Weissella spp.). Five strains among 17 were chosen by preliminary bacteriocin activity test. Four bacterial strains which inhibited both indicator microorganisms were identified by 16S rRNA sequencing. The results are as follows; Leuconostoc mesenteroides (HK 4), Leuconostoc mesenteroides (HK 5), Leuconostoc mesenteroides(HK 11), Streptococcus salivarius(HK 8). In order to check LAB which are showing a high survival rate in gut, we investigated three strains inhibiting both indicator microorganisms in artificial gastric acid and bile juice -all except HK8. The three strains mentioned above grew in extreme low acid conditions.
Phage utilizing medium and BL agar supplemented with antibiotic Tc(tetracycline) were developed as selective media for the isolation and counting of bifidobacteria in dairy products. The former was based on the host specificity of phage. When bifidobacteria and Lactobacillus casei HY 2782 were mixed together in dairy product, L. casei HY 2782 was laysed by J1 phage which has host specificity to L. casei HY 2782 whereas bifidobacteria grew well on the selective medium added wIth J1 phage. The latter was found to inhibit the growth of S. salivarius subsp. thermophilus, L. acidophilus, and L. casei, but commercial bifidobacteria grew well in Tc-containing BL agar.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.46
no.9
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pp.1071-1080
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2017
This study examined the adhesiveness of beneficial intestinal bacteria to whole-grains using confocal scanning laser microscopy (CLSM), to demonstrate the prebiotic effects of whole-grains, and to develop prebiotic puffed snacks with these whole-grains. CLSM has been used to observe the adhesiveness of Lactobacillus acidophilus, which belongs to beneficial intestinal bacteria, to whole-grain powders using optical sectioning techniques. The enhanced effects on the growth of beneficial intestinal bacteria with the hot water grain extract were verified using an indirect count method. Finally, a puffed snack was produced with the prebiotic effect and the quality was evaluated by checking the chromaticity and degree of hardness. As a result, L. acidophilus exhibited adhesive ability to whole-grain powders and growth of selected beneficial intestinal bacteria were improved significantly. The Hunter L value of the developed puffed snack increased when seasoning was added. The hardness of the puffed snack with seasoning was higher than that of the control. The results of a sensory evaluation showed that the puffed snack with seasoning was highly rated in the overall preference compared to the control.
Lee, Sang A;Lim, Ji Ye;Kim, Bong-Soo;Cho, Su Jin;Kim, Nak Yon;Kim, Ok Bin;Kim, Yuri
Nutrition Research and Practice
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v.9
no.3
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pp.242-248
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2015
BACKGROUND/OBJECTIVES: Feeding in infancy is the most significant determinant of the intestinal microbiota in early life. The aim of this study was to determine the gut microbiota of Korean infants and compare the microbiota obtained between breast-fed and formula-fed Korean infants. SUBJECTS/METHODS: We analyzed the microbial communities in fecal samples collected from twenty 4-week old Korean (ten samples in each breast-fed or formula-fed) infants using pyrosequencing. RESULTS: The fecal microbiota of the 4-week-old Korean infants consisted of the three phyla Actinobacteria, Firmicutes, and Proteobacteria. In addition, five species, including Bifidocbacterium longum, Streptococcus salivarius, Strepotococcus lactarius, Streptococcus pseudopneumoniae, and Lactobacillus gasseri were common commensal intestinal microbiota in all infants. The predominant intestinal microbiota in the breast-fed infants (BFI) included the phylum Actinobacteria (average 70.55%), family Bifidobacteriacea (70.12%), genus Bifidobacterium (70.03%) and species Bifidobacterium longum (69.96%). In the microbiota from the formula-fed infants (FFI), the proportion of the phylum Actinobacteria (40.68%) was less, whereas the proportions of Firmicutes (45.38%) and Proteobacteria (13.85%) as well as the diversity of each taxonomic level were greater, compared to those of the BFI. The probiotic species found in the 4-week-old Korean infants were Bifidobacterium longum, Streptococcus salivarius, and Lactobacillus gasseri. These probiotic species accounted for 93.81% of the microbiota from the BFI, while only 63.80% of the microbiota from the FFI. In particular, B. longum was more abundant in BFI (69.96%) than in FFI (34.17%). CONCLUSIONS: Breast milk supports the growth of B. longum and inhibits others. To the best of our knowledge, this study was the first attempt to analyze the gut microbiota of healthy Korean infants according to the feeding type using pyrosequencing. Our data can be used as a basis for further studies to investigate the development of intestinal microbiota with aging and disease status.
The principal objective of this study was to screen and select acid-tolerant Lactobacillus strains from chicken feces, feeds, and other sources. Fourty six strains evidencing acid tolerance (pH 3.5) were isolated in this study. Among them, nine strains exhibited marked immunostimulatory effects. Therefore, nine candidate strains were characterized for probiotic use. In order to evaluate macrophage activation, NO production was measured using RAW 264.7 cells. In particular, three strains (FC812, FC222, and FC113) evidenced the highest levels of NO production measured at $38.39{\pm}20.01,\;35.06{\pm}27.73$, and $33.88{\pm}15.99{\mu}M$, respectively, at a concentration of $10^{8}CFU/mL$. The majority of strains, with the exception of strain FC322, evidenced marked resistance to artificial gastric juice (pH 2.5 with 1%(w/v) pepsin). Additionally, strains FC222, FC421, FC511, and FC721 were highly resistant to artificial bile acid (0.1%(w/v) oxgall), whereas strains FC113, FC322, FC422, FC621, and FC812 were the least resistant to bile. All nine strains exerted antimicrobial effects against chickenrelated pathogens. Additionally, all nine strains were found to be resistant to several antibiotics. The isolated strains, except for strain FC322, were tentatively identified as Lactobacillus salivarius, using an API 50 CHL kit. These results demonstrate that some probiotic organisms may potentially probiotic properties, and thus may serve as an effective alternative to antibiotics in animal applications.
Objective: The present investigation was aimed to explore the potential of lactobacilli for conjugated linoleic acid (CLA) production, isolated from rumen fluid samples of lactating goats. Methods: A total of 64 isolates of lactobacilli were obtained using deMan-Rogosa-Sharpe (MRS) agar from rumen fluid of goats and further subjected to morphological and biochemical characterizations. Isolates found as gram-positive, catalase negative rods were presumptively identified as Lactobacillus species and further confirmed by genus specific polymerase chain reaction (PCR). The phylogenetic tree was constructed from the nucleotide sequences using MEGA6. Results: Out of the 64 isolates, 23 isolates were observed positive for CLA production by linoleate isomerase gene-based amplification and quantitatively by UV-spectrophotometric assay for the conversion of linoleic acid to CLA as well as gas chromatography-based assay. In all Lactobacillus species cis9, trans11 isomer was observed as the most predominant CLA isomer. These positive isolates were identified by 16S rRNA gene-based PCR sequencing and identified to be different species of L. ingluviei (2), L.salivarius (2), L. curvatus (15), and L. sakei (4). Conclusion: The findings of the present study concluded that lactic acid bacteria isolated from ruminal fluid samples of goat have the potential to produce bioactive CLA and may be applied as a direct fed microbial to enhance the nutraceutical value of animal food products.
Fermentation is an effective process for providing various beneficial effects in functional beverages. Lactic acid bacteria and yeast fermentation-based biotransformation contribute to enhancement of nutritional value and digestibility, including lactose intolerance reduction and control of infections. In this study, the probiotic fermented fruit juice (PFJ) was produced by Lactobacillus plantarum TISTR 1465, Lactobacillus salivarius TISTR 1112, and Saccharomyces boulardii CNCM I-745 while mixed fruit juice (MFJ) was used as the basic medium for microorganism growth. The potential function, the anti-salmonella activity of PFJ, was found to be effective at 250 mg/ml of MIC and 500 mg/ml of MBC. Biofilm inhibition was performed using the PFJ samples and showed at least 70% reduction in cell attachment at the MIC concentration of Salmonella Typhi DMST 22842. The antioxidant activities of PFJ were determined and the results revealed that FSB.25 exhibited 78.40 ± 0.51 mM TE/ml by FRAP assay, while FPSB.25 exhibited 3.44 ± 0.10 mM TE/ml by DPPH assay. The volatile compounds of PFJ were characterized by GC-MS, which identified alcohol, aldehyde, acid, ester, ketone, phenol, and terpene. The most abundant organic acid and alcohol detected in PFJ were acetic acid and 2-phenylethanol, and the most represented terpene was β-damascenone. The sensory attributes showed scores higher than 7 on a 9-point hedonic scale for the FPB.25, illustrating that it was well accepted by panelists. Taken together, our results showed that PFJ could meet current consumer demand regarding natural and functional, fruit-based fermented beverages.
Akcakatik cheese (yogurt cheese) is produced by drying strained yogurt with or without adding cloves or black cumin. The main objective of this study was to detect the properties of both fresh and ripened Akcakatik cheeses and to compare them. For this purpose the biogenic amine content, volatile flavor compounds, protein degradation level, chemical properties and some microbiological properties of 15 Akcakatik cheese samples were investigated. Titratable acidity, total dry matter, NaCl, total nitrogen, water soluble nitrogen, ripened index, histamine, diacetyl and acetaldehyde levels were found to be higher in ripened cheese samples than in fresh cheese samples. On the other hand, the clove and black cumin ratios were found to be higher in the fresh cheese samples. Sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electropherograms of cheese samples showed that protein degradation was higher in ripened cheese samples than in fresh samples, as expected. The dominant Lactic acid bacteria (LAB) flora of Akcakatik cheese samples were found to be Streptococcus salivarius subsp. thermophilus and Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus.
Samples were collected from a commercial ethanol production plant to enumerate the bacterial contamination in each step of a starch based ethanol production process. Though the slurry of raw material used in the process carried bacteria with various colony morphology in the order of $10^4$ per ml, only the colonies of white and circular form survived and propagated through the processes to the order of $10^8$ per ml at the end of fermentation. Almost all of the bacterial isolates from the fermentation broth were lactic acid bacteria. Heterofermentative Lactobacillus fermentum and L. salivarius, and a facultatively heterofermentative L. casei were major bacteria of an ethanol fermentation. In a batch fermentation L. fermentum was more detrimental than L. casei to ethanol fermentation. In a cell-recycled fermentation, ethanol productivity of 5.72 g $I^{-1} h^{-1}$ was obtained when the culture was contaminated by L. fermentum, whilst that of the pure culture was 9.00 g $1^{-1} h^{-1}$. Similar effects were observed in a cell-recycled ethanol fermentation inoculated by fermentation broth collected from an industrial plant, which showed a bacterial contamination at the level of 10$^8$ cells per ml.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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