To find the monthly variation of kalopanaxsaponin contents in the leaves of Kalopanax pictus with thorns (KPT) and with no thorns (KPN), the leaves monthly collected from May to September were extracted with MeOH and then the kalopanaksaponin fractions were prepared. KPT collected on May showed the lowest saponin content of the KPTs whereas KPT on August exhibited the highest saponin content. From September, the saponin content in the loaves decreased. The highest saponin content was shown to be 7.3% in KPN collected on August. Evaluation of six kalopanaxsaponins A, I, J, B, H and K (KPA, KPI, KPJ, KPB, KPH, and KPK) were performed using TLC densitometer. In this measurement, considerably higher KPB and KPH, both hederagenin bisdesmosides, were found whereas very low contents In monodesrnosides KPI and KPJ were observed. In conclusion, it was shown that the leaves of KPN of August could be a biomaterial source for the kalopanaxsaponin fraction. It was also suggested that measurement of the weight of kalopanaxsaponin fraction and the content of KPB as the representative compound for kalopanaxsaponins will be used for the quantitative evaluation of the kalopanaxsaponins of K. pictus.
In order to develope baculovirus expression vector system, we constructed new transfer vector of nuclear polyhedrosis virus of the silkworm, Bombyx mori. The promoter region containing only adenine of translation start codon of polyhedrin gene was cloned by polymerase chain reaction technique. And the 5' and 3' leader regions of polyhedrin gene was sequentially cloned. The polyhedrin coding gene was deleted from the +2 to the +597 position. As the result, we constructed new transfer vector which has EcoRI, SacI and KpnI sites for the cloning sites of foreign gene. New transfer vector was named as pBmKSKl. Escherichia coli $\beta$-galactosidase gene as foreign gene was inserted into pBmKSKl, under the control of the polyhedrin promoter and expressed in B. mori cells. The result showed that the new transfer vector pBmKSK1 is functional.
Molccular cloning of nod genes from Bradvrhizobium sp. SNU001, a nitrogen-fixing symbiont isolated from thc root nodules of soybean (Clycine trim) . was carried out. nod genes were found to be located on thc genome of the symbiont by gcnomic hybridization with 4.5 kb EcoRI/HndIII fragment (nod DABC) of Rhizohium meliloti as probe. Genomic library of this symbiont was constructed using h phage EMBL3-BanlHI vector. from which five nod positive clones were sclectcd by primary and secondary screening methods. The partial restriction map of inserted genomic DNA of h CNS-l(c1one 2) was constructed. and 3.9 kh Bun7HI fragment. which showed strong hybridization signal to the probe, was subcloned into pBS KS(+) plasmid vector. Partial restriction inap ot' a selected subclone (pBjCNS-I) was constructed and nod DABC was found to be located on the 1.8 kb KpnI/Sacl fragment of this subclone.
A bacterium KL-57 which exhibited biosurfactant activity was isolated. This bacterium was identified as Bacillus subtilis. The biosurfactant-producing gene of B. subtilis KL-57 was cloned into R subtilis MI113 by using plasmid pTB523. The plasmid DNA from the clone was found to carry a 18 kb PstI insert. The biosurfactant-producing gene was cleaved into 4 fragments by SmaI, 3 fragments by PvulI or EcoRl, 4 fragments by PvulI and EcoRI double digestion, 5 fragments by AccI, and 2 fragments by KpnI, HindIII or BamHI. By subcloning the 18 kb Pstl insert, a 2.3 kb EcoRl fragment conferred the biosurfactant producing activity on B. subtilis cells. The 2.3 kb had one HindIII cleave site. But Two fragments, which corresponds HindIII/EcoRl termini, exhibited no biosurfactant activity.
The clinical isolate Staphylococcus aureus SA2 had four kinds of plasmids and was resistant to ampicillin, chloramphenicol, clindamycin, erythromycin, gentamicin, kanamycin, methicillin, streptomycin, tetracycline and tobramycin. Transformation experiment demonstrated that 4.44 kb plasmid(pKH6) encoded resistance to tetracycline. The cleavage map of pKH6 was determined by restriction enzyme mapping techniques. The cleavage map is given for EcoRV, HindIII, HpaI, HpaII, KpnI and Xbal. Restriction endonucleases BamHl, BglI, BGIII, BstEII, EcoRI, HaellI, PstI, PvuII, SalI, Smal, and Xhol have no site on this plasmid. The restriction map revealed extensive structural homology between pKH6 and pT181.
Variation within the intergenic spacer(IGS) of the ribosomal DNA gene for twenty-two strains of E. oxysporum and its formae speciales was examined by PCR, couped with RELP analysis. The length of the amplified IGS region was about 2.6 kb in all strains except F.oxysporum f. sp. cucumer-inum from Korea and F. oxysporum f. sp. niveum. Those two strains were 2.5 kb long. Restriction digestion of IGS-RELP regions by Eco RI, NruI, HincII, SAlI, SmaI, BalIi, HindIII, XhoI and KpnI gave rise to nine IGS hapoltypes among all strains. Cluster analysis based on the presence of absence of comigrating restriction reagments show the two groups based on 44% genetic similarity. These results demonstrated that analysis of IGS showed some difference within and between F. oxysporum formae speciales.
Wild type nodulin 26(nod 26) cDNA(S262) and phodphorylation aite mutant(S262D) were constructed by a yeast expression system using pYES2 plasmids(pTES2-D262 and pTES2-S262D) were sc-reened by restriction mapping with BamHI of KpnI. S262 nod 26 contained a sreine residue at position 262 and S262D nod 26 contained the substitution mutation of serine to aspartic acid residue at position 262 were verified by automated floursent DNA sequencing.
Facioscapulohumeral muscular dystrophy (FSHD) is an autosomal dominant neuromuscular disorder which has been clinically shown to cause progressive weakness and result in atrophy of the facial muscles, shoulder girdle and upper arm muscles. The responsible gene for the FSHD has been located on chromosome 4q35-qter. The probes p13E-11 and pFR-1 detect DNA rearrangements associated with FSHD as under 28 kb DNA fragment in genomic southern analysis digested with EcoRI and the fragment contains 3.3 kb Kpn I tandem repeats. In this study, 4 fetuses with a family history of FSHD were analysed by genomic southern hybridization analysis with probes to determine whether they carried the deleted region. Of the 4 fetuses, three of them had mothers who were FSHD patients and the other one had a father affected with FSHD. After 10-11 weeks of gestation, we performed chorionic villi sampling and extracted DNA from uncultured and cultured tissue cells for the direct DNA analysis. The result of the southern analysis showed two fetuses having received about 15-18 kb of deleted genes from the father and the mother respectively, and found to be FSHD patients. The other two fetuses were shown to have two normal alleles from the parents and found to be normal. Two pregnancies which were determined to be normal were carried to term delivering two healthy babies.
For screening of autoregulator receptor gene from Saccharopolyspora erythraea, PCR was performed with primers of receptor gene designed on the basis of amino acid sequences of autoregulator receptor proteins with known function. PCR products were subcloned into the BamHI site of pUC19 and transformed into the E. coli DH5$\alpha$. The isolated plasmid from transformant contained the fragment of 120 bp, which was detected on 2% gel after BamHI treatment. The insert, 120 bp PCR product, was confirmed as the expected internal segment of gene encoding autoregulator receptor protein by sequencing. Southern and colony hybridization using Saccha. erythraea chromosomal DNA were performed with the insert as probe. The plasmid (pEsg) having 3.2 kbp SacI DNA fragment from Saccha. erythraea is obtained. The 3.2 kbp SacI DNA fragment was sequenced by the dye terminator sequencing. The nucleotide sequence data was analyzed with GENETYX-WIN (ver 3.2) computer program and DNA database. frame analyses of the nucleotide sequence revealed a gene encoding autoregulator receptor protein which is a region including KpnI and SalI sites on 3.2 kbp SacI DNA fragment. The autoregulator receptor protein consisting of 205 amino acid was named EsgR by author. In comparison with known autoregulator receptor proteins, homology of EsgR showed above 30%.
A new 4.87 kb Escherichia-Pseudomonas shuttle vector has been constructed by inserting a 1.27 kb DNA fragment with a replication origin of a Pseudomonas plasmid pRO1614 into the 3.6 kb E. coli plasmid pBGS18. This vector, designated pJH1, contains an aminogly-coside phosphotransferase gene (aph) from Tn903, a lacZ' gene for $\alpha$-complementation and a versatile multiple cloning site possessing unique restriction sites for EcoRI, SacI, KpnI, SmaI, BamHI, XbaI, SalI, BspMI, PstI, SphI, and HindIII. When pJH1 was transformed into E. coli DHS${\alpha}$ and into P. putida HK-6, it was episomally and stably maintained in both strains. In addition, the enhanced green fluorescent protein (EGFP) gene which was transcriptionally cloned into pJH1 rendered E. coli cells fluorescence when its transformants were illuminated at 488 nm.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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