Oral squamous cell carcinoma (OSCC) metastasis is characterized by distant metastasis and local recurrence. Combined chemotherapy with cisplatin and 5-fluorouracil is routinely used to treat patients with OSCC, and the combined use of gefitinib with cytotoxic drugs has been reported to enhance the sensitivity of cancer cells in vitro. However, the development of drug resistance because of prolonged chemotherapy is inevitable, leading to a poor prognosis. Therefore, understanding alterations in signaling pathways and gene expression is crucial for overcoming the development of drug resistance. However, the altered characterization of Ca2+ signaling in drug-resistant OSCC cells remains unclear. In this study, we investigated alterations in intracellular Ca2+ ([Ca2+]i) mobilization upon the development of gefitinib resistance in human tongue squamous carcinoma cell line (HSC)-3 and HSC-4 using ratiometric analysis. This study demonstrated the presence of altered epidermal growth factor- and purinergic agonist-mediated [Ca2+]i mobilization in gefitinib-resistant OSCC cells. Moreover, Ca2+ content in the endoplasmic reticulum, store-operated calcium entry, and lysosomal Ca2+ release through the transient receptor potential mucolipin 1, were confirmed to be significantly reduced upon the development of apoptosis resistance. Consistent with [Ca2+]i mobilization, we identified modified expression levels of Ca2+ signaling-related genes in gefitinib-resistant cells. Taken together, we propose that the regulation of [Ca2+]i mobilization and related gene expression can be a new strategy to overcome drug resistance in patients with cancer.
Platelets are activated at sites of vascular injury via several molecules, such as adenosine diphosphate, collagen and thrombin. Full platelet aggregation is absolutely essential for normal hemostasis. Moreover, this physiological event can trigger circulatory disorders, such as thrombosis, atherosclerosis, and cardiovascular disease. Therefore, platelet function inhibition is a promising approach in preventing platelet-mediated circulatory disease. Many studies reported the involvement of mitogen-activated protein kinases (MAPKs) signaling pathways in platelet functions. However, these studies were limited. Thus, we examined MAPK signaling pathways in human platelets using specific MAPK inhibitors, such as PD98059, SB203580, and SP600125. We observed that these inhibitors were involved in calcium mobilization and influx in human platelets. They also suppressed thrombin-induced ${\alpha}$- and ${\delta}$-granule release. These results suggest that PD98059, SB203580, and SP600125 exhibit $Ca^{2+}$ antagonistic effects.
Melanin concentrating hormone is a neuropeptide highly expressed in the brain that regulates several physiological functions mediated by receptors in the G-protein coupled receptor family, especially plays an important role in the complex regulation of energy balance and body weight mediated by the melanin concentrating hormone receptor subtype 1 (MCH1). Compelling pharmacological evidence implicating MCH1 signaling in the regulation of food intake and energy expenditure has generated a great deal of interest by pharmaceutical companies as MCH1 antagonists may have potential therapeutic benefit in the treatment of obesity and metabolic syndrome. Although fluorescence-based calcium mobilization assay platform has been one of the most widely accepted tools for receptor research and drug discovery, fluorescence interference and shallow assay window limit their application in high throughput screening and have led to a growing interest in alternative, luminescence-based technologies. Herein, a luminescence-based functional assay system for the MCH1 receptor was developed and validated with the mitochondrial targeted aequorin. Aequorin based functional assay system for MCH1 presented excellent Z' factor (0.8983) and high signal-to-noise ratio (141.9). The nonpeptide MCH1 receptor antagonist, SNAP 7941 and GSK 803430, exhibited $IC_{50}$ values of 0.62 ${\pm}$ 0.11 and 12.29 ${\pm}$ 2.31 nM with excellent correlation coefficient. These results suggest that the aequorin based assay system for MCH1 is a strong alternative to the traditional GPCR related tools such as radioligand binding experiments and fluorescence functional determinations for the compound screening and receptor research.
The effect of 2-(4-cyanophenyl)amino-1,4-naphthalenedione-3-pyridinium perchlorate (PQ5) on pla-telet aggregation and its action mechanisms were investigated with rat platelet. PQ5 inhibited the platelet aggregation induced by collagen ($6{\;}{\mu\textrm{g}}/ml$), thrombin (0.4 U/ml) and A23187 ($3{\mu}M$) in concentration-dependent manner with $IC_{50}$ values of 5.50, 25.89 and $37.12{\;}{\mu}M$, respectively. PQ5 also significantly reduced the thromboxane $A_2$ (TXA2) formation in a concentration dependent manner. The collagen-induced arachidonic acid (AA) release in [-3H]-AA incorporated platelet, an indication of the phospholipase $A_2$ activity, was decreased by PQ5 pretreatment PQ5 significantly inhibited the activity of thormboxane synthase only at high concentration ($100{\mu}M$), but did not affect the cyclooxygenase activity at all. Collagen-induced ATP release was significantly reduced by PQ5. Calcium-induced platelet aggregation experiment suggests that the elevation of intracellular free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) by collagen stimulation is decreased by the pretreatment of PQ5, which is due to the inhibition of calcium release from intracellular store and influx from outside of the cell. PQ5 did not showed the effect of anticoagulation as prothrombin time (PT) or activated partial thromboplastin time (APTT). Form these results, it is suggested that PQ5 exerts its antiplatelet activity through the inhibition of the intracellular $Ca^{2+}$ mobilization and the decrease of the $TXA_2$ synthesis.
본 연구는 C5a에 의해 자극된 호중구에서 세포내 칼슘유리와 세포외부로부터 칼슘유입에 있어 protein kinase C와 protein tyrosine kinase의 관여 여부를 조사하였다. Protein kinase C 억제제인 staurosporine과 H-7은 C5a에 의해 자극된 호중구에서 세포내 칼슘유리를 억제하였으나, 세포막을 교차한 칼슘유입이나 세포내 칼슘농도 증가에 영향을 나타내지 않았다. C5a에 의한 세포내 칼슘유리와 칼슘유입은 protein tyrosine kinase 억제제인 genistein과 methyl-2,5-dihydroxycinnamate에 의해서 억제 되었다. ADP에 의해 야기된 세포내 칼슘농도의 증가는 genistein과 methyl-2,5-dihydroxycinnamate에 의해서 억제되었으나 staurosporine과 H-7의 영향은 받지 않았다. Genistein과 methyl-2,5-dihydroxy-cinnamate는 thapsigargin을 처리한 호중구에서 칼슘유입을 감소시켰으나 이에 대한 staurosporine 과 H-7의 효과는 나타나지 않았다. 호중구를 phorbol 12-myristate 13-acetate로 전처치하였을때 세포내 칼슘증가에 미치는 C5a의 자극 효과는 감소하였다. 이상의 결과로 부터 protein tyrosine kinase는 C5a에 의해 활성화된 호중구에서 세포내 칼슘유리와 세포막을 교차한 칼슘유입의 조절에 관여할 것으로 추정된다.
Many studies on the mechanism of the inotropic action of cardiac glycosides have shown the possible intimate relationship between the mobilization of intracellular calcium and inotropic effect. Evidence obtained from recent studies suggests that cardiac glycosides may increase the intracellular $Ca^{++}$ concentration through the release of this ion from cellular or intracellular membrane. It seemed imperative to study the effect of ouabain on the interaction between mitochondria and $Ca^{++}$, because mitochondria are known to have a rather powerful $Ca^{++}$ pump mechanism which may have an important role on the regulation of intracellular $Ca^{++}$ concentration. The present investigations was made into the effect of ouabain on $Ca^{++}$ untake of mitochondria in the presence of ATP and its dependence on $K^+$ and $Na^+$ in the medium. The results are summarized as follows: 1. The rate of rise in the turbidity of superprecipitation was solely influenced by ionic strength of the medium, not by the species of ion, i.e. $Na^+$ or $K^+$. The higher ionic strength suppressed and the lower enhanced the rate of superprecipitation respectively. 2. No effect of ouabain was found on the rate of superprecipitation. 3. Mitochondria depressed the rate of superpretipitation, and the depressed rate of superprecipitation by mitochondria was reversed by ouabain, and the degree of this reversal was almost identical in $Na^+$ and $K^+$ medium. 4. $Ca^{++}$ uptake of mitochondria was inhibited by ouabain in the presence of ATP and the degree of inhibition showed the dose-response manner in terms of concentration of ouabain. 5. In the absence of ATP, mitochondria took or the $Ca^{++}$ in initial period but released it later. Such uptake and release of $Ca^{++}$ was not influenced by ouabain. 6. It is suggested that intracellular calcium mobilization by ouabain through the action upon the mitochondria was due to inhibition on ATP-dependent $Ca^{++}$ uptake by this agent, not to the action upon so called binding.
Mitochondria participate in various intracellular metabolic pathways such as generating intracellular ATP, synthesizing several essential molecules, regulating calcium homeostasis, and producing the cell's reactive oxygen species (ROS). Emerging studies have demonstrated newly discovered roles of mitochondria, which participate in the regulation of innate immune responses by modulating NLRP3 inflammasomes. Here, we review the recently proposed pathways to be involved in mitochondria-mediated regulation of inflammasome activation and inflammation: 1) mitochondrial ROS, 2) calcium mobilization, 3) nicotinamide adenine dinucleotide ($NAD^+$) reduction, 4) cardiolipin, 5) mitofusin, 6) mitochondrial DNA, 7) mitochondrial antiviral signaling protein. Furthermore, we highlight the significance of mitophagy as a negative regulator of mitochondrial damage and NLRP3 inflammasome activation, as potentially helpful therapeutic approaches which could potentially address uncontrolled inflammation.
Han, Bong-Deok;Lee, Sang-Lyul;Park, Moon-Hwan;Chae, Quae
BMB Reports
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제28권6호
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pp.499-503
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1995
In our previous studies (Chae et al., 1990; Chae et a1., 1993), we found that a phytochrome signal was clearly connected with the change in cytosolic free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in oat cells. It was determined that the $[Ca^{2+}]_i$ change occured both by mobilization out of the intracellular $Ca^{2+}$ store and by influx from the medium. The specific aim of this work is to elucidate the processes connecting $Ca^{2+}$ mobilization and influx. The cells treated with thapsigargin (increasing $[Ca^{2+}]_i$ by inhibition of the $Ca^{2+}$-ATPase in the calcium pool) in the presence of external $Ca^{2+}$ showed the same increasing pattern (sustained increasing shape) of $[Ca^{2+}]_i$ as that measured in animal cells. Red light irradiation after thapsigargin treatment did not increase $[Ca^{2+}]_i$ These results suggest that thapsigargin also acts specifically in the processes of mobilization and influx of $Ca^{2+}$ in oat cells. When the cells were treated with TEA ($K^+$ channel blocker), changes in $[Ca^{2+}]_i$ were drastically reduced in comparison with that measured in the absence of TEA. The results suggest that the change in $[Ca^{2+}]_i$ due to red light irradiation is somehow related with $K^+$ channel opening to change membrane potential. The membrane potential change due to $K^+$ influx might be the critical factor in opening a voltage-dependent calcium channel for $Ca^{2+}$ influx.
Kim, Hyoung-Ki;Choi, Soo-Ran;Choi, Sang-Jin;Chio, Myung-Sup;Shin, Yong-Kyoo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제8권6호
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pp.319-327
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2004
This study was aimed at evaluating the effect of defibrotide on the development of the surgically induced reflux esophagitis, on gastric secretion, lipid peroxidation, polymorphonuclear leukocytes (PMNs) accumulation, polymorphonuclear leukocytes adherence, superoxide anion and hydrogen peroxide production in PMNs, scavenge of hydroxyl radical and hydrogen peroxide, cytokine (interleukin-1 ${\beta}$, tumor necrosis $factor-{\alpha}$) production in blood, and intracelluar calcium mobilization in PMNs. Defibrotide did not inhibit the gastric secretion and not change the gastric pH. Treatment of esophagitis rats with defibrotide inhibited lipid peroxidation, and myeloperoxidase (MPO) in the esophagus in comparison with untreated rats. Defibrotide significantly decreased the PMN adherence to superior mesenteric artery endothelium in a dose-dependent manner, Superoxide anion and hydrogen peroxide production in $1{\mu}M$ formylmethionylleucylphenylalanine (fMLP)- or $0.1{\mu}g/ml$ N-phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA)-activated PMNs was inhibited by defibrotide in a dose-dependent fashion. Defibrotide effectively scavenged the hydrogen peroxide but did not scavenge the hydroxyl radical. Treatment of esophagitis rats with defibrotide inhibited interleukin-1 ${\beta}$ production in the blood in comparison with untreated rats, but tumor necrosis $factor-{\alpha}$ production was not affected by defibrotide. The fMLP-induced elevation of intracellular calcium in PMNs was inhibited by defibrotide. The results of this study suggest that defibrotide may have partly beneficial protective effects against reflux esophagitis by the inhibition lipid peroxidation, PMNs accumulation, PMNs adherence to endothelium, reactive oxygen species production in PMNs, inflammatory cytokine production(i.e. interleukin-1 ${\beta}$), and intracellular calcium mobilization in PMNs in rats.
The secretion of insulin from pancreatic ${\beta}$-cells is triggered by the influx of $Ca^{2+}$ through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels. The resulting elevation of intracellular calcium ($[Ca^{2+}]_i$) triggers additional $Ca^{2+}$ release from internal stores. Less well understood are the mechanisms involved in $Ca^{2+}$ mobilization from internal stores after activation of $Ca^{2+}$ influx. The mobilization process is known as calcium-induced calcium release (CICR). In this study, our goal was to investigate the existence of and the role of caffeine-sensitive ryanodine receptors (RyRs) in a rat pancreatic ${\beta}$-cell line, INS-1 cells. To measure cytosolic and stored $Ca^{2+}$, respectively, cultured INS-1 cells were loaded with fura-2/AM or furaptra/AM. $[Ca^{2+}]_i$ was repetitively increased by caffeine stimulation in normal $Ca^{2+}$ buffer. However, peak $[Ca^{2+}]_i$ was only observed after the first caffeine stimulation in $Ca^{2+}$ free buffer and this increase was markedly blocked by ruthenium red, a RyR blocker. KCl-induced elevations in $[Ca^{2+}]_i$ were reduced by pretreatment with ruthenium red, as well as by depletion of internal $Ca^{2+}$ stores using cyclopiazonic acid (CPA) or caffeine. Caffeine-induced $Ca^{2+}$ mobilization ceased after the internal stores were depleted by carbamylcholine (CCh) or CPA. In permeabilized INS-1 cells,$Ca^{2+}$ release from internal stores was activated by caffeine, $Ca^{2+}$, or ryanodine. Furthermore, ruthenium red completely blocked the CICR response in perrneabilized cells. RyRs were widely distributed throughout the intracellular compartment of INS-1 cells. These results suggest that caffeine-sensitive RyRs exist and modulate the CICR response from internal stores in INS-1 pancreatic ${\beta}$-cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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