Angiotensin II (Ang II) is metabolized from N-terminal by aminopeptidases and from C-terminal by Ang converting enzyme (ACE) to generate several truncated angiotensin peptides (Angs). The truncated Angs have different biological effects but it remains unknown whether Ang-(4-8) is an active peptide. The present study was to investigate the effects of Ang-(4-8) on hemodynamics and atrial natriuretic peptide (ANP) secretion using isolated beating rat atria. Atrial stretch caused increases in atrial contractility by 60% and in ANP secretion by 70%. Ang-(4-8) (0.01, 0.1, and $1{\mu}M$) suppressed high stretch-induced ANP secretion in a dose-dependent manner. Ang-(4-8) ($0.1{\mu}M$)-induced suppression of ANP secretion was attenuated by the pretreatment with an antagonist of Ang type 1 receptor ($AT_1R$) but not by an antagonist of $AT_2R$ or $AT_4R$. Ang-(4-8)-induced suppression of ANP secretion was attenuated by the pretreatment with inhibitor of phospholipase (PLC), inositol triphosphate ($IP_3$) receptor, or nonspecific protein kinase C (PKC). The potency of Ang-(4-8) to inhibit ANP secretion was similar to Ang II. However, Ang-(4-8) $10{\mu}M$ caused an increased mean arterial pressure which was similar to that by 1 nM Ang II. Therefore, we suggest that Ang-(4-8) suppresses high stretch-induced ANP secretion through the $AT_1R$ and $PLC/IP_3/PKC$ pathway. Ang-(4-8) is a biologically active peptide which functions as an inhibition mechanism of ANP secretion and an increment of blood pressure.
Although normal activation of platelets is important in the process of hemostasis, excessive or abnormal activation of platelets can lead to cardiovascular diseases. Therefore, the discovery of novel substances capable of regulating or inhibiting platelet activation may be helpful in the prevention and treatment of cardiovascular diseases. Artemether is a derivative of artemisinin, known as an active ingredient of Artemisia annua, which has been reported to be effective in treating malaria, and is known to function through antioxidant and metabolic enzyme inhibition. However, the role of artemether in platelet activation and aggregation and the mechanism of action of artemether in collagen-induced human platelets are not known until now. This study investigated the effects of artemether on platelet activation and thrombus formation induced by collagen. As a result, cAMP level was significantly increased by artemether, and VASP and IP3R, substrates of cAMP-dependent kinase, were phosphorylated. IP3R phosphorylation by Artemether inhibited Ca2+ recruitment into the cytoplasm, and phosphorylated VASP inhibited fibrinogen binding by inactivating αIIb/β3 located on the platelet membrane. Consequently, artemether inhibited thrombin-induced fibrin clot formation. Therefore, we propose that artemether can act as an effective prophylactic and therapeutic agent for cardiovascular diseases caused by excessive platelet activation and thrombus formation.
Under physiological conditions, calcium (Ca2+) regulates essential functions of polarized secretory cells by the stimulation of specific Ca2+ signaling mechanisms, such as increases in intracellular Ca2+ concentration ([Ca2+]i) via the store-operated Ca2+ entry (SOCE) and the receptor-operated Ca2+ entry (ROCE). Homer proteins are scaffold proteins that interact with G protein-coupled receptors, inositol 1,4,5-triphosphate (IP3) receptors, Orai1-stromal interaction molecule 1, and transient receptor potential canonical (TRPC) channels. However, their role in the Ca2+ signaling in exocrine cells remains unknown. In this study, we investigated the role of Homer2 in the Ca2+ signaling and regulatory channels to mediate SOCE and ROCE in pancreatic acinar cells. Deletion of Homer2 (Homer2-/-) markedly increased the expression of TRPC3, TRPC6, and Orai1 in pancreatic acinar cells, whereas these expressions showed no difference in whole brains of wild-type and Homer2-/- mice. Furthermore, the response of Ca2+ entry by carbachol also showed significant changes to the patterns regulated by specific blockers of SOCE and ROCE in pancreatic acinar cells of Homer2-/- mice. Thus, these results suggest that Homer2 plays a critical role in the regulatory action of the [Ca2+]i via SOCE and ROCE in mouse pancreatic acinar cells.
Kim, Yun Tai;Jo, Soo Shin;Park, Young Jun;Lee, Myung Za;Suh, Chang Kook
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.18
no.6
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pp.509-516
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2014
Radiation therapy for variety of human solid tumors utilizes mechanism of cell death after DNA damage caused by radiation. In response to DNA damage, cytochrome c was released from mitochondria by activation of pro-apoptotic Bcl-2 family proteins, and then elicits massive $Ca^{2+}$ release from the ER that lead to cell death. It was also suggested that irradiation may cause the deregulation of $Ca^{2+}$ homeostasis and trigger programmed cell death and regulate death specific enzymes. Thus, in this study, we investigated how cellular $Ca^{2+}$ metabolism in RKO cells, in comparison to radiation-resistant A549 cells, was altered by gamma (${\gamma}$)-irradiation. In irradiated RKO cells, $Ca^{2+}$ influx via activation of NCX reverse mode was enhanced and a decline of $[Ca^{2+}]_i$ via forward mode was accelerated. The amount of $Ca^{2+}$ released from the ER in RKO cells by the activation of $IP_3$ receptor was also enhanced by irradiation. An increase in $[Ca^{2+}]_i$ via SOCI was enhanced in irradiated RKO cells, while that in A549 cells was depressed. These results suggest that ${\gamma}$-irradiation elicits enhancement of cellular $Ca^{2+}$ metabolism in radiation-sensitive RKO cells yielding programmed cell death.
Although arginase primarily participates in the last reaction of the urea cycle, we have previously demonstrated that arginase II is an important cytosolic calcium regulator through spermine production in a p32-dependent manner. Here, we demonstrated that rhaponticin (RPT) is a novel medicinal-plant arginase inhibitor and investigated its mechanism of action on Ca2+-dependent endothelial nitric oxide synthase (eNOS) activation. RPT was uncompetitively inhibited for both arginases I and II prepared from mouse liver and kidney. It also inhibited arginase activity in both aorta and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Using both microscope and FACS analyses, RPT treatments induced increases in cytosolic Ca2+ levels using Fluo-4 AM as a calcium indicator. Increased cytosolic Ca2+ elicited the phosphorylations of both CaMKII and eNOS Ser1177 in a time-dependent manner. RPT incubations also increased intracellular L-arginine (L-Arg) levels and activated the CaMKII/AMPK/Akt/eNOS signaling cascade in HUVECs. Treatment of L-Arg and ABH, arginase inhibitor, increased intracellular Ca2+ concentrations and activated CaMKII-dependent eNOS activation in ECs of WT mice, but, the effects were not observed in ECs of inositol triphosphate receptor type 1 knockout (IP3R1-/-) mice. In the aortic endothelium of WT mice, RPT also augmented nitric oxide (NO) production and attenuated reactive oxygen species (ROS) generation. In a vascular tension assay using RPT-treated aortic tissue, cumulative vasorelaxant responses to acetylcholine (Ach) were enhanced, and phenylephrine (PE)-dependent vasoconstrictive responses were retarded, although sodium nitroprusside and KCl responses were not different. In this study, we present a novel mechanism for RPT, as an arginase inhibitor, to increase cytosolic Ca2+ concentration in a L-Arg-dependent manner and enhance endothelial function through eNOS activation.
DA-6034, a eupatilin derivative of flavonoid, has shown potent effects on the protection of gastric mucosa and induced the increases in fluid and glycoprotein secretion in human and rat corneal and conjunctival cells, suggesting that it might be considered as a drug for the treatment of dry eye. However, whether DA-6034 induces $Ca^{2+}$ signaling and its underlying mechanism in epithelial cells are not known. In the present study, we investigated the mechanism for actions of DA-6034 in $Ca^{2+}$ signaling pathways of the epithelial cells (conjunctival and corneal cells) from human donor eyes and mouse salivary gland epithelial cells. DA-6034 activated $Ca^{2+}$-activated $Cl^-$ channels (CaCCs) and increased intracellular calcium concentrations ($[Ca^{2+}]_i$) in primary cultured human conjunctival cells. DA-6034 also increased $[Ca^{2+}]_i$ in mouse salivary gland cells and human corneal epithelial cells. $[Ca^{2+}]_i$ increase of DA-6034 was dependent on the $Ca^{2+}$ entry from extracellular and $Ca^{2+}$ release from internal $Ca^{2+}$ stores. Interestingly, these effects of DA-6034 were related to ryanodine receptors (RyRs) but not phospholipase C/inositol 1,4,5-triphosphate ($IP_3$) pathway and lysosomal $Ca^{2+}$ stores. These results suggest that DA-6034 induces $Ca^{2+}$ signaling via extracellular $Ca^{2+}$ entry and RyRs-sensitive $Ca^{2+}$ release from internal $Ca^{2+}$ stores in epithelial cells.
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