Infectious Bursal Disease is a severe viral disease of chicken responsible for serious economic losses to poultry farmers. The causative agent, Infectious Bursal Disease virus, is inhibited by nitric oxide. Root extract of the Indian ginseng, Withania somnifera, inhibits Infectious Bursal Disease virus in vitro. Also, Withania somnifera root extract is known to induce nitric oxide production in vitro. Therefore, the present study was undertaken to determine if the inhibitory activity of Withania somnifera against Infectious Bursal Disease virus was based on the production of nitric oxide. We show that besides other mechanisms, the inhibition of Infectious Bursal Disease virus by Withania somnifera involves the production of nitric oxide. Our results also highlight the paradoxical role of nitric oxide in the pathogenesis of Infectious Bursal Disease.
Pathological and virological investigations were conducted on suspected outbreaks of infectious bursal disease (IBD) in a broiler farm and five pullet-raising poultry farms of Mymensingh and Tangail districts of Bangladesh. About 80 to 100 percent chicks were affected at the age of 26 to 45 days and mortality varied from 20 to 30 percent in broilers and 40 to 80 percent in layer chicks. Signs, symptoms, gross and microscopic lesions were typical of acute IBD. Several isolates of virus could be obtained by embryo inoculation and the virus was diagnosed as infectious bursal disease virus (IBDV) by agar gel immunodiffusion test (AGID). The virus isolate belonged to the very virulent pathotype of IBDV causing 100 percent mortality in three weeks old chicks on experimental infection.
This is a case report on the occurrence of inclusion body hepatitis (IBH) and infectious bursal disease (IBD) among the broilers in a local farm located in Wanju, Jeollabukdo. Mostly IBH could be caused by adenovirus if the bird's immune system was first weakened by exposure to immunosupressive agents such as infectious bursal disease virus (IBDV) and chicken anemia virus (CIAV). However IBH primary occurred before IBD in this case. And recent work has demonstrated that virulent adenovirus alone can produce the disease.
Field infectious bursal disease viruses (IBDVs) were isolated from IBDV-suspected commercial chickens. The variable region in VP2 gene of six Korean IBDV isolates (K-IBDVs) and IBD vaccines was examined using the reverse transcriptase / polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (RT/PCR-RFLP) assay. With all K-IBDVs and vaccine IBDVs, a 474-bp fragment of the VP2 gene was amplified and tested with various restriction enzymes. Restriction enzymes BstNI and StyI differentiated K-IBDV isolates and IBD vaccines into four groups. Restriction enzyme profiles of K-IBDV isolates were different from them of IBD vaccines. K-IBDV isolates except for 310 isolate had specific SspI and TaqI recognition sites, which were recognized in highly virulent IBDVs, but IBD vaccines had no those sites. This study showed that RT/PCR-RFLP assay was thought to be valuable tool for differentiation of IBDVs and identification of highly virulent IBDV.
Serum samples collected from 30 breeders and their progeny 30 chicks. The antibodies against infectious bronchitis(IB), infectious bursal disease (IBD) and Newcastle disease(ND) viruses were detected by ELISA using commercial ELISA kit. The breeders were vaccinated against IB, IBD and ND viruses according to general vaccination program. Geometric mean titers(GMT) of ELISA were monitored from 1-day old to 17-day old chicks and compared with breeder chickens. The GMT of ELISA to IB, IBD and ND were declined half level of the breeder antibody titer at 6-, 8- and 7-day old. And, the GMT of ELISA to IB, IBD and ND were declined than that of protective titer at 6-, 1-, and 4-day old. Thereafter, the GMT of ELISA was declined and disappeared according to ages of chicks. Taken together, this study led to conclusion that time-course of maternal antibody titers of chicks from vaccinated breeders, and this is very important data for vaccination to chicks.
Gal-13 is an antimicrobial peptide isolated from chicken intestine. Ninety chickens were randomly divided into two groups (45 chickens for each group) to determine the effect of oral administration of Gal-13 on the acquired immune response. The chickens in the first group were fed a diet without Gal-13 as the control, and the chickens in the second group were fed the same diet, except that Gal-13 ($1{\mu}g/ml$) was suspended in drinking water just after hatching. Samples of blood, thymus, bursa of fabricius and spleen were taken at day 1, 4, 7, 10 and 17. The chickens in both groups received infectious bursal disease virus vaccine at day 20, and then sera samples were collected for analysis at 14, 21, 28 and 35 days after vaccination. The results showed: (1) Gal-13 could enhance the content of immunoglobulin (Ig)G at the age of 4 to10 days (p<0.05) and IgM at the age of 4 and 10 days (p<0.05) in the serum; (2) In vitro experiments showed that Gal-13 (0.625-1.250${\mu}g/ml$) enhanced the proliferation of peripheral blood lymphocytes of the chickens stimulated by lipopolysaccharide (LPS) and concanavlin A (ConA). Compared to the control, Gal-13 (1 ${\mu}g/ml$) enhanced the proliferation of bursa lymphocytes at 17 days of age (p<0.01) and thymus lymphocytes at 7 days of age (p<0.01), but restrained lymphocyte proliferation in chicken spleen and differed significantly at day 10 (p<0.01); (3) Gal-13 enhanced infectious bursal disease virus antibody in sera of chickens 21 days after infectious bursal disease virus vaccine administration (p<0.05). These results suggested that Gal-13 could modulate adaptive immune responses of chickens.
The VP2 full gene of Korean infectious bursal disease virus(IBDV) strain, SH/92, three attenuated vaccine strains, Bur706, Bursine-2 and CEV/AC strains, were amplified by reverse transcriptase-polymerase chain reaction and sequenced and compared with published VP2 gene sequences of IBDVs. The VP2 nucleotide sequence similarity between SH/92 and three vaccine stains was 95.6~96.5% whereas the nucleic acid similarity among three vaccine strains was 97.5~98.5%. The amino acid sequence similarity of VP2 of SH/92 compared with three vaccine strains was between 94.4 and 97.6% while the amino acid similarity among three vaccine strains was between 97.4 and 98.4%. The amino acid similarity between SH/92 and classical virulent strain, 52/70 and STC strain was 96.4 and 96.5%, respectively. The serine-rich heptapeptide was conserved in CEVAC and Bursine-2 as well as SH/92 but not in Bur706. The phylogenetic tree developed from amino acid sequences showed that SH/92 was categorized with vv IBDVs(HK46, OKYM, KKI, UPM94/273, SH95) in one branch while three vaccine strains were catagorized with STC strain in the other branch.
Incidence of avian infectious diseases in breeder chickens was followed serologically. Serum samples were collected during the period of 1978~1979 from breeders throughout country and tested for the presence of antibodies against Salmonella pullorum(SP), Mycoplasma gallisepticum(MG), Avian Infectious Bronchitis virus(AIBV), Infectious Bursal Disease virus(IBDV) and Egg Drop Syndrome Virus(EDS). The tests used serum plate agglutination for SP and MG, immuno-diffusion for AIBV and IBDV and hemagglutination-inhibition test for EDS virus. The results are summarized as follows: 1. Individuals and Hocks incidence rate of Avian Infectious Bronchitis virus were 16.9% and 55.3%. 2. Individuals and Hocks incidence rate of Infectious Bursal Disease virus were 50.1% and 66.4%. 3. Individuals and Hocks incidence rate of sal. pullorum were 17.2% and 65.9%. 4. Individuals and flocks incidence rate of M. gallisepticum were 36.2% and 63.2%. 5. Individuals and flocks incidence rate of Egg Drop Syndrome (BC 14) virus were 14.1% and 46.3%.
The objective of the present study was to isolate and identify infectious bursal disease viruses (IBDVs) from broiler and layer chickens of outbreaks of infectious bursal disease (IBD) in three districts of Bangladesh. A total of 70 bursal samples were collected from dead broiler (n=40) and layer (n=30) chickens showing specific lesions of IBD from seven commercial poultry farms of three different districts (Mymensingh, Chittagong and Tangail) of Bangladesh during the year 2007. Five representative bursal samples from each farm were used for the isolation of IBDVs using 9-day-old embryonated eggs of seronegative flock of layer birds and for identification the samples were subjected to agar gel immunodiffusion test (AGIDT), immunohistochemistry (IHC) and reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). Out of 35 bursal samples, IBDVs were successfully isolated from 28 (80%) samples. By AGIDT, 32 (91.4%) samples were found positive for IBDV antigen. Results of AGIDT clearly indicated that IBDVs detected in 29 bursal samples of six affected farms were identical to each other but not to IBDVs present in the remaining three samples of another farm. Indirect immunoperoxidase staining of the bursal sections revealed the presence of IBDV antigen in 32 (91.4%) samples and the IBDV antigen was detected mainly in the cortex of the lymphoid follicles of the bursal tissues. In histopathology, cell depletion, atrophy and necrosis were observed in many bursal follicles with severe edema of interfollicular septa. Of the 35 bursal samples, 34 (97.1%) samples generated 254 bp product by RT-PCR. In conclusion, the results of virus isolation and identification by AGIDT, IHC and the analysis of viral genome by RT-PCR confirmed the outbreaks of acute IBD in commercial poultry of Bangladesh. Moreover, histopathological findings and results of AGIDT gave a clear indication that the isolates from six outbreaks were different from classical strain and it seems to be of very virulent strain. On the other hand, the isolates from the other outbreak were similar to the classical strain.
Infectious bursal disease (IBD) caused by infectious bursal disease virus (IBDV) is a highly contagious viral disease in chicken. It causes heavy economic loss by immune suppression and high mortality. The IBDV, designated Avibirnavirus in the Family Birnaviridae, has a double-stranded RNA genome formed by two segments, segment A and segment B. Segment A encodes a 108 KDa polypeptide that is self-cleaved to produce pVP2, VP3 and VP4, and later pVP2 is cleaved to VP2. The VP2 contains the antigenic regions responsible for elicitation of neutralizing antibodies and VP3 is a major immunogenic protein of IBDV. In this study, monoclonal antibodies (MAbs) specific for IBDV were produced and characterized. All 15 MAbs were specific for IBDV and did not react with other viruses used in this study. The protein specificity of MAbs was determined by comparing the reactivity patterns of each MAb with IBDV VP2 and VP234 recombinant baculoviruses and Western blot analysis. As a result, 7 MAbs (1F5, 2C8, 2F4, 3C7, 4C3, 6F11, 6G5) and 5 MAbs (2A4, 2G2, 3F5, 3G2, 4F10) were specific for VP2 and VP3, respectively. The protein specificity of 3 MAbs (2B8, 3F7, 3F8) were not determined. Five (2C8, 2F4, 4C3, 6F11, 6G5) of the VP2-specific MAbs had a neutralizing activity against IBDV. Some MAbs reacted with IBDV-infected bursa of Fabricius by indirect fluorescence antibody (IFA) and immunohistochemistry (IHC) assay. The MAbs produced in this study would be used for diagnostic reagents for the detection of IBDV infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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