Soil samples were screened for actinomycete strains capable of producing phospholipase D, and a strain, Streptomyces sp. YU100, showing a high transphosphatidylation activity was isolated. This strain secreted phospholipase D in a culture broth after 12 h of cultivation, and its productivity continued to increase for 36 h of fermentation. In addition, its transphosphatidylation rate of phosphatidylcholine to phosphatidylserine was almost $68\%$ within 1 h. The morphological and chemotaxonomical characteristics showed that this strain could be classified as a number of the Streptomycetaceae family, particularly due to the spiral form of its spore chain consisting of 60-70 smooth spores $(0.75{\times}1.0{\mu}m$) on an aerial mycelium, FA-2c type of fatty acid profile in the cell wall, and LL-DAP component in the cell wall peptidoglycan. A phylogenetic analysis of the 16S rDNA provided a clue that the strain YU100 was actually a member of the genus Streptomyces, because the determined sequence exhibited a higher homology with Streptomyes sp. ASB27, S. peucetius JCM9920, and S. griseus ATCC10137. A dendrogram based on the 16S rDNA sequences also showed a phylogenetic relationship between the strain YU100 and these strains. However, the strain YU100 has not yet been assigned to a particular species, because of absence of any other classified species with a high matching score.
Using Streptomyces sp. YU100 isolated from Korean soil, the fermentative production of phospholipase D was attempted along with its purification and characterization studies. When different carbon and nitrogen sources were supplemented in the culture medium, glucose and yeast extract were found to be the best. By varying the concentration of nutrients and calcium carbonate, the optimal culture medium was determined as 2.0% glucose, 1.5% yeast extract, 0.5% tryptone 0.3% calcium carbonate. During cultivation, the strain secreted most of the phospholipase D in the early stage of growth within 24 h. The phospholipase D produced in the culture broth exhibited hydrolytic activity as well as transphosphatidylation activity on lecithin (phosphatidylcholine). In particular, the culture broth showed 8.7 units/ml of hydrolytic activity when cultivated at $28^{\circ}C$ for 1.5 days. The phospholipase D was purified using 80% ammonium sulfate precipitation and DEAE-Sepharose CL-6B column chromatography, which produced a major band of 57 kDa on a 10% SDS-polyacrylamide gel with purity higher than 80%. The enzyme showed an optimal pH of 7 in hydrolytic reaction, and at pH 4 in a transphosphatidylation reaction. The enzyme activity increased until the reaction temperature was elevated to $60^{\circ}C$. The enzyme was relatively stable at high temperatures and neutral pH, but significantly unstable in the alkaline range. Among the detergents tested as emulsifiers of phospholipids, the highest enzyme activity was observed when 1.5% Triton X-100 was employed. However, no inhibitory effect by metal ions was detected. Under optimized reaction conditions, the purified enzyme not only completely decomposed PC to phosphatidic acid within 1 h, but also exhibited higher than 80% conversion rate of PC to PS by transphosphatidylation within 4 h.
Ferritin is an iron storage protein found in most living organisms. For expression and industrial use, human light chain ferritin (L-ferritin) was cloned from human liver cDNA library and expressed in Pichia pastoris strain GS115. The recombinant L-ferritin in Pichia pastoris was glycosylated. In a fed-batch culture, the cell mass reached about 57 g/l of dry cell weight, and the L-ferritin in the cell was increased to about 95 mg/l after 150 h. In an atomic absorption spectrometry analysis, the intracellular content of iron in the L-ferritin transformant was measured as $1,694{\pm}85\;\mu\textrm{g}g/g$, which is 5.4-fold more than that of the control strain. This L-ferritin transformant could serve as iron-fortified nutrients in animal feed stock.
Various treatments of naked barley with commercial liquefying enzymes have been emploved to reduce high viscosity of naked barley in cooking as a raw material for alcohol production and to increase alcohol yield. The enzyme BAN used for cooking and liquefaction of naked barley was able to make a reduction of one third of viscosity and to enhance alcohol yield of 4 l/Ton of raw material than the T120L was. Of course, alcohol yield depended in part on the applied saccharifying enzymes. The low temperature cooking of naked barley with BAN was favorable compared with high temperature cooking for both of reducing viscosity (210 vs. 237 cp) and final alcohol yield (Yp/so: 0.397 vs. 0.395 g/g) in industrial scale.
Transaminase represents the most important biocatalysts used for the synthesis of chiral amines due to their stereoselectivity. They allow asymmetric synthesis with high yields and enantioselectivity from their corresponding ketones. Due to their environmentally friendly access for the preparation of chiral amines, they have attracted growing attention in recent times. Thus, the production of chiral compounds by transaminase catalysed reactions is considered as an important application in synthetic organic chemistry. Therefore, transaminase is considered to be an important enzyme in the pharmaceutical and chemical industries. ω-Transaminase holds great potential because of its wide substrate specificity thus making it a suitable enzyme to be used at an industrial scale. This review highlights the reaction mechanism, classification, substrate specificity, and biochemical properties. The review also showcases the application of ω-transaminase in organic chemistry with a focus on the production of active pharmaceutical ingredients (APIs).
Saccharomyces cerevisiae KNU5377 was examined to assay the recovering capacity against heat and other stressors. Along with a particular fermentation ability that is able to produce ethanol even at high temperature such as $40^{\circ}C$ with a comparable rate to the fermentation at $33^{\circ}C$, this strain also exhibited higher viability than a reference strain owing to its own thermotolerance that conferred the survival after the severe heat shock at $60^{\circ}C$ for 30 minutes. Furthermore, this strain showed outstanding tolerances against $H_2O_2$, ethanol and some chemical compounds. But, especially due to the thermotolerance, this strain has been suspected of other species of yeast. However, ITS (internally transcribed spacer) 1 and 2 sequencing data confirmed this strain was a typical strain of S. cerevisiae. The outstanding tolerances to various environmental stressors Indicate this S. cerevisiae KNU5377 is enough to use both as an on-site potential strain for world-wide alcohol fermentation industry and as a model strain for researches into the routes to acquire the tolerance to various stressors.
Kim, Nam Kyu;Park, Jae Young;Park, Myung Soo;Lee, Hyun;Cho, Hae Jin;Eimes, John A.;Kim, Changmu;Lim, Young Woon
Mycobiology
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제44권3호
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pp.146-154
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2016
The wood decay fungi are a diverse taxonomic group that plays a pivotal role in forest carbon cycling. Wood decay fungi use various enzymatic pathways to digest dead or living wood in order to obtain carbon and other nutrients and these enzymatic systems have been exploited for both industrial and medical applications. Over 600 wood decay fungi species have been described in Korea; however, the recent application of molecular markers has dramatically altered the taxonomy of many of these wood decay fungi at both the genus and species levels. By combining molecular methods, specifically sequences of the internal transcribed spacer region, with traditional morphological characters, this study identified five new species records for Korea in five genera: Aurantiporus, Favolus, Neofavolus, Loweomyces, and Hymenochaetopsis. Three of these genera (Aurantiporus, Favolus, and Loweomyces) were previously unknown in Korea. The relatively simple morphology of the wood decay fungi often leads to ambiguous taxonomic assignment. Therefore, molecular markers are a necessary component of any taxonomic or evolutionary study of wood decay fungi. Our study highlights the need for a more robust and multifaceted approach in investigating new wood decay fungi in Korea.
The $11{\alpha}$-hydroxylation of $16{\alpha}$, 17-epoxyprogesterone (EP) catalyzed by Rhizopus nigricans is crucial for the steroid industry. However, lower conversion rate of the biohydroxylation restricts its potential industrial application. The $11{\alpha}$-steroid hydroxylase CYP509C12 from R. oryzae were reported to play a crucial role in the $11{\alpha}$-hydroxylation in recombinant fission yeast. In the present study, the CYP509C12 of R. oryzae (RoCYP) was introduced into R. nigricans using the liposome-mediated mycelial transformation. Heterologous expression of RoCYP resulted in increased fungal growth and improved intracellular reactive oxygen species content in R. nigricans. The $H_2O_2$ levels in RoCYP transformants were approximately 2-folder that of the R. nigricans wild type (RnWT) strain, with the superoxide dismutase activities increased approximately 45% and catalase activities decreased approximately 68%. Furthermore, the $11{\alpha}$-hydroxylation rates of EP in RoCYP transformants (C4, C6 and C9) were 39.7%, 38.3% and 38.7%, which were 12.1%, 8.2% and 9.4% higher than the rate of the RnWT strain, respectively. This paper investigated the effect of heterologous expression of RoCYP in R. nigricans, providing an effective genetic method to construct the engineered strains for steroid industry.
The application of recombinant DNA technology has been remarkable and nearly replaced commonly used traditional methods. Traditional industrial microbiology long depended on the discovery of valuable strains and mutagenesis of such strains to improve its secretion capacity of enzymes and secondary metabolites on the industrial scale. Commodities included industrial enzymes and biopharmaceuticals. The purpose of genome manipulation by the crossing of different strains or genetic recombination of naked DNA to the genome is of increased production of valuable metabolites. We optimized a transformation method to either for removal of innate genes, introduction of heterologous genes, or combination of both. We have been used selected whole or partial genes to manipulate target fungi toward the development of strains overproducing invaluable proteins. We have also used the whole genome sequence information of fungal genomes in public databases and functional genomics approach to select genes to manipulate and eventually contributing greatly to the development of overproducing industrial strains overproducing proteins or secondary metabolites. I will briefly review 1) filamentous fungi as a host for production of recombinant proteins and secondary metabolites, 2) markets of industrial metabolites, 3) a new approach to manipulate up to five genes at the same time in the system that ProxEnrem uses.
Various conditions for onion-juice production, and for alcohol and acetic acid fermemtations were investigated to produce a vinegar from onion. In the production of the onion juice, treatments with enzymes such as 0.6% Celluclast 1.5L and 0.2% Viscozyme L increased the yields significantly from 45.0% to 54.5% and 72.5%, respectively. Alcohol and acetic acid fermentations from the onion juice were effectively improved by using the onion juice heated at 80$^{\circ}C$ for 10 minutes, and by adding 0.3% yeast extract, 0.3% $MgSO_4$ and 0.3% $K_3PO_4$ as nutrients to the onion juice. At the optimum condition, 5.8% alcohol was produced after five days of fermentation at $30^{\circ}C$ from the 14 Brix onion juice, which was adjusted by adding sugar. A vinegar with 6.7% acetic acid content was produced after 20 days of fermentation of $30^{\circ}C$ from 4% alcohol that was adjusted by adding onion juice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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