Polyhydroxyalkanoic acid (PHA) inclusion bodies were analyzed in situ by $^{13}C$-nuclear magnetic resonance ($^{13}C$-NMR) spectroscopy. The PHA inclusion bodies studied were composed of poly(3-hydroxybutyrate) or poly(3hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate), which was accumulated in Hydrogenophaga pseudoflava, and medium-chain-length PHA (MCL-PHA), which was accumulated in Pseudomonas fluorescens BM07 from octanoic acid or 11-phenoxyundecanoic acid (11-POU). The quantification of the $^{13}C$-NMR signals was conducted against a standard compound, sodium 2,2-dimethyl-2-silapentane-5-sulfonate (DSS). The chemical shift values for the in vivo NMR spectral peaks agreed well with those for the corresponding purified PHA polymers. The intracellular degradation of the PHA inclusions by intracellular PHA depolymerase(s) was monitored by in vivo NMR spectroscopy and analyzed in terms of first-order reaction kinetics. The H. pseudoflava cells were washed for the degradation experiment, transferred to a degradation medium without a carbon source, but containing 1.0 g/l ammonium sulfate, and cultivated at $35^{\circ}C$ for 72 h. The in vivo NMR spectra were obtained at $70^{\circ}C$ for the short-chain-length PHA cells whereas the spectra for the aliphatic and aromatic MCL-PHA cells were obtained at $50^{\circ}C\;and\;80^{\circ}C$, respectively. For the H. pseudoflava cells, the in vivo NMR kinetics analysis of the PHA degradation resulted in a first-order degradation rate constant of 0.075/h ($r^{2}$=0.94) for the initial 24 h of degradation, which was close to the 0.050/h determined when using a gas chromatographic analysis of chloroform extracts of sulfuric acid/methanol reaction mixtures of dried whole cells. Accordingly, it is suggested that in vivo $^{13}C$-NMR spectroscopy is an important tool for studying intracellular PHA degradation in terms of kinetics.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1996.07a
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pp.13-13
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1996
Aggregation of human $\alpha$$_1$-antitrypsin ($\alpha$$_1$-AT) during folding occurs both in vitro and in vivo. In vivo aggregates of mutant $\alpha$$_1$-AT such as $M_{malton}$ (Phe52 deleted) and Z (Glu342 longrightarrowLys) variants have pathological consequences. In order to analyze the process of $\alpha$$_1$-AT aggregation in detail, the folding-unfolding kinetics of $\alpha$$_1$-AT was examined by monitoring intrinsic Trp fluorescence and ANS binding. (omitted)
The steady state and decay characteristics of primary fluorescence of twelve clones of phytoplankton were investigated in vivo. At 380-435nm region, intense fluorescence emission spectra were obtained from the all phytoplankton, examined', The primary fluorescence of phytoplankton in different growth states was examined In order to find out fluorophores for the observed fluorescence, eight different pteridine derivatives in phosphate buffer solution were examined for their fluorescence characteristics and compared with those of phytoplankton. Fluorescence lifetimes $(\tau)$ and decay curves were compared with standard solution of candidate organic compounds. Decay kinetics of observed fluorescence were shown as hi- and tri-exponential decay curves with 430nm cut-off filter for phytoplankton. Comparison between fluorescence characteristics of bacteria and phytoplankton showed distinct differences for their steady state fluorecence spectra and decay kinetics.
In order to elucidate the fraction of sulfoxidation in the over all in vivo metabolism of chlorpromazine (CPZ), the sulfoxidation of CPZ to chlorpromazine sulfoxide (CPZSO) was studied in rats. CPZ (10 mg/kg) and CPZSO (1 mg/kg) were injected into the rat femoral vein, respectively. And the pharmacokinetic parameters were obtained from the plasma concentration-time profiles of CPZ and CPZSO determined by the simultaneous analysis using high-performance liquid chromatography. It was supposed that these drugs were almost metabolized in vivo because the total excreted amounts of CPZ and CPZSO via urinary and biliary route were lower than 1.4% and 10.61% of the administered dose, respectively. And also, it was found that the fraction of systemic clearance of CPZ which formed CPZSO $(F_{mi})$ was 0.115. These results showed that CPZ was sulfoxized by 11.5% in rats and the residue would be metabolized via the other routes.
Purified Helicobacter pylori urease displayed a sigmoid curve in the plot of velocity versus [S] at urea concentrations less than 0.1mM. Under conditions where preservatives, glycerol, or polyethylene glycol (PEG) were added to the enzyme reaction, the substrate hydrolysis was consistent with Michaelis-Menten kinetics, with a $K_m$ of $0.21\;{\pm}\;0.06\;mM$ and a $V_{max}$ of $1,200\;{\pm}\;300\;{\mu}mol\;min^{-1}\;mg^{-1}$. However, at saturating substrate concentrations, the kinetic parameters of H. pylori urease were unaffected by the presence of the preservatives, and enzyme catalysis conformed to Michaelis-Menten kinetics. The Hill coefficients of the enzyme-catalyzed urea hydrolysis in the presence and absence of PEG were 1 and 2, respectively. Based on these findings, we suggest that H. pylori urease may exist in aggregated and dissociated forms, each with intact function but differing kinetics that may be of importance in maximizing urea breakdown at varying urea concentrations in vivo.
Jo, Yeong-Woo;Park, Yong-Man;Lee, Ghun-Il;Yang, Hi-Chang;Kim, Mi-Ryang;Lee, Sung-Hee;Kwon, Jong-Won;Kim, Won-Bae;Choi, Eung-Chil
Proceedings of the PSK Conference
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2002.10a
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pp.424.2-424.2
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2002
The in vivo release characteristics of rhGH-loaded PLGA microsphere prepared using a double emulsion process from hydrophilic 50:50 poly(D.L-lactide-co-glycolide) (PLGA) polymers were analyzed. This formulation showed particle size of ca 53.1$\mu\textrm{m}$ with high drug incorporation efficiency. To investigate in vivo release kinetics without the interference of formation of antibodies to rhGH in the experimental animals, the animals were immunosuppressed by treatment with Cyclosporin. (omitted)
In order to elucidate the effect of N-demethylation on the in vivo metabolite kinetics, especially hepatic first-pass effect of trimebutine(TMB), the N-demethylation of TMB to N-monodesmethyl trimebutine(N-TMB) was studied in rats. TMB(10 mg/kg) and N-TMB(10 mg/kg) were injected into the femoral and the portal vein, respectively. And the pharmacokinetic parameters were obtained from the plasma concentration-time profiles of TMB and N-TMB determined by the simultaneous analysis using high-performance liquid chromatography. It was supposed that these drugs were almost metabolized in vivo because the urinary and biliary excreated amounts of TMB and N-TMB were lower than 0.1% of the administered dose. According to the hepatic biotransformation model and metabolic pathways of TMB proposed, it was found that the fraction of systemic clearance of TMB which formed N-TMB in liver$(G_{mi})$ was 0.826, that of TMB which furnishes the available N-TMB to the systemic circulation$(F_{mi})$ was 0.083, and the absolute hepatic bioavailability of N-TMB formed trom TMB$(F_{mi.p})$ was 0.1. These results showed that TMB was suspected of the sequential hepatic first-pass metabolism and N-demethylated by 82.6%. Therefore, the residue would be hydrolyzed by the esterase in the liver. That is, the ability of N-demethylation of TMB was 4.75-fold larger than that of hydrolysis by the esterase in rats.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.13
no.4
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pp.403-405
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1984
Since chlorella was found to be a source of protein in 1974, wide ranges of investigations on culture methods, its constituents and nutritional factors have been carried out, i. e. most of them were the reports on the nutritional evaluation. However, kinetics such as absorption, distribution, metabolism and elimination of chlorella protein have not been fully elucidated. So, on the assumption that using $N^{15}$ labelled chlorella protein could accomplish good results for kinetics of chlorella in in vivo experiments, $N^{15}$ was added to the culture fluid. From the result of this study, it is suggested that chlorella utilizes N as well as $N^{15}$ in protein synthesis, and this $N^{15}$ labelled chlorella protein can be useful tool for the study of kinetics of chlorella in in vivo experiments.
In vivo clearance of BMS-182874 was primarily due to metabolism via stepwise N-demethylation. Despite in vivo clearance approached ca 50% of the total liver plasma flow, BMS-182874 was completely bioavailable after oral administration in rats. Saturable first-pass metabolism and the role of extrahepatic tissue were evaluated as possible reasons for complete oral bioavailability despite extensive metabolic clearance. Pharmacokinetic parameters were obtained after an intravenous and a range of oral doses of BMS-182874 in rats. Bile and urine were collected from bile-duct cannulated (BDC) rats and the in vivo metabolic pathways of BMS-182874 were evaluated. Pharmacokinetics of BMS-182874 were also compared in nephrectomized (renally impaired) vs. sham-operated control rats. Oral bioavailability of BMS-182874 averaged 100%, indicating that BMS-182874 was completely absorbed and the first-pass metabolism (liver or intestine) was negligible. The AUC and C/sub max/ values increased dose-proportionally, indicating kinetics were linear within the oral dose range of 13 to 290 mmole/kg. After intravenous administration of BMS-182874 to BDC rats, about 2% of intact BMS-182874 was recovered in excreta, indicating that BMS-182874 was cleared primarily via metabolism in vivo. The major metabolite circulating in plasma was the mono-N-desmethyl metabolite and the major metabolite recovered in excreta was the di-N-desmethyl metabolite. In vivo clearance of BMS-182874 was significantly reduced in nephrectomized rats. These observations suggest saturable first-pass metabolism is unlikely to be a mechanism for complete oral bioavailability of BMS-182874. Reduced clearance observed in the nephrectomized rats suggests that extrahepatic tissues (e.g., kidneys) may play an important role in the in vivo clearance of xenobiotics that are metabolized via N-demethylation.
Objectives: Lung cancer remains a deadly disease with unsatisfactory overall survival. Cisplatin, a standard platinum (Pt)-based chemotherapeutic agent, has the potential to inhibit the growth of lung cancer. Its use, however, is occasionally limited by severe organ toxicity. However, until now, no systematic study has been conducted to verify its efficacy with proper experimental support in vivo. Therefore, we examined whether biosynthesized Pt nanoparticles (NPs) inhibited human lung cancer in vitro and in vivo to validate their use in alternative and complementary medicine. Methods: We evaluated the in vitro and the in vivo anticancer efficiencies of biosynthesized Pt NPs in a subcutaneous xenograft model with A549 cells. Severe combined immune deficient mice (SCID) were divided into four groups: group 1 being the vehicle control group and groups 2, 3 and 4 being the experimental groups. Once the tumor volume had reached $70-75mm^3$, the progression profile of the tumor growth kinetics and the body weights of the mice were measured every week for 6 weeks after oral administration of Pt NPs. Doses of Pt NPs of 500, 1,000 and 2,000 mg/kg of body weight were administered to the experimental groups and a dose of honey was administered to the vehicle control group. The efficacy was quantified by using the delay in tumor growth following the administration of Pt NPs of A549 human-lung-cancer xenografts growing in SCID mice. Results: The in vitro cytotoxicity evaluation indicated that Pt NPs, in a dose-dependent manner, inhibited the growth of A549 cells, and the in vivo evaluation showed that Pt NPs at the mid and high doses effectively inhibited and delayed the growth of lung cancer in SCID mice. Conclusion: These findings confirm the antitumor properties of biosynthesized Pt NPs and suggest that they may be a cost-effective alternative for the treatment of patients with lung cancer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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