Moon, Il Soo;Cho, Sun-Jung;Jin, IngNyol;Walikonis, Randall
Molecules and Cells
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v.24
no.1
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pp.76-82
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2007
By combining in situ hybridization (ISH) and immunocytochemistry (IC), microscopic topological localization of mRNAs and proteins can be determined. Although this technique can be applied to a variety of tissues, it is particularly important for use on neuronal cells which are morphologically complex and in which specific mRNAs and proteins are located in distinct subcellular domains such as dendrites and dendritic spines. One common technical problem for combined ISH and IC is that the signal for immunocytochemical localization of proteins often becomes much weaker after conducting ISH. In this manuscript, we report a simplified but robust protocol that allows immunocytochemical localization of proteins after ISH. In this protocol, we fix cultured cortical or hippocampal neurons with 4% paraformaldehyde (PFA), rinse briefly in PBS, and then further fix the cells with $-20^{\circ}C$ methanol. Our method has several major advantages over previously described ones in that (1) it is simple, as it is just consecutive routine fixation procedures, (2) it does not require any special alteration to the fixation procedures such as changes in salt concentration, and (3) it can be used with antibodies that are compatible with either methanol (MeOH-) or PFA-fixed target proteins. To our best knowledge, we are the first to employ this fixation method for fluorescence ISH + IC.
Kim, Soon-bok;Song, Geun-suk;Moon, Oun-kyong;Jeong, Chang-geun
Korean Journal of Veterinary Research
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v.35
no.2
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pp.369-374
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1995
Aujeszky's disease virus(ADV) was inoculated intranasally into the Korean native goats to investigate pathological findings and pathogenesis of ADV infection by using of histological and immunohistochemical methods and in situ hybridization(ISH). Clinical signs of salvation, pyrexia, pruritus and staggering were followed by death with five days after inoculation, Pathoanatomical findings were edema of the lung and the urinary bladder with hemorrhage and congestion, petechial hemorrhages on the endo-and epicardium, renal congestion, moderate splenomegaly and cystic edema. Main microsocpic lesions observed in all infected goats were confined to the CNS and charcterized by perivascular cuffing with lymphocytes and macrophages, focal gliosis, neuronal degeneration and necrosis, and intranuclear inclusion bodies in the neurons and glial cells. Positive reactions to ADV were detected more frequently in the nuclei than in the cytoplasms of infected nerve cells in the CNS by immunohistochemistry and ISH. Frequenctly localized sites of ADV in the CNS were olfactory bulb, prietal cortex, callosal sulcus and corpus callosum. Positive reactions were also detected in the tonsillar epithelium, and alveolar macrophage and sloughed epithelium of the lung.
This study was conducted to elucidate the distribution of Aujeszky's disease viral nucleic acids and antigens in the central nervous system (CNS) of piglets. The first Korean isolate of Aujeszky's disease virus(ADV) that isolated from naturally infected piglets in Yang San, was inoculated into 32 day old piglets with $10^{5.9}TCID_{50}/ml$ through intranasal or intramuscular route. These piglets were sacrificed at every 24hrs for 8 days. The immunohistochemistry (IHC) was conducted to detect the viral antigens in paraffin-embedded tissue sections using avidin-biotin-peroxidase complex (ABC) method. The viral nucleic acids were detected by in situ hybridization (ISH) using ADV specific DNA probe labeled with digoxigenin. The ADV antigens were detected in reticuloendothelial cells of spleen, lymph nodes and tonsil, alveolar walls, leptomeningeal vascular walls, inflammatory foci of each organ, and nerve cells. The viral nucleic acids were detected in the spinal trigeminal nucleus and its tracts of the pons and medulla oblongata by the ISH technique. The pathways of AD viruses in CNS were determined by IHC and ISH. In the intranasally inoculated group, the viruses in nasal mucosa moved to medulla oblongata and pons through the trigeminal nerve. In case of intramuscullarly inoculated group, viruses moved to brain via lymphoid organs or spinal nerves from sciatic nerves.
We tried to develop detection system of porcine reproductive and respiratory syndrome virus(PRRSV) by in situ hybridization(ISH) in the piglets experimentally infected with KPRRS-2, the Korean isolate(12 piglets) or Mn-1b, the American isolate(4 piglets), and in the natural infection suspected 6 piglets. Twelve 30-days-old piglets(two pigs per each inoculated group) were inoculated by nasal instillation of KPRRS-2 virus(total dose $10^{4.5}TCID_{50}$), Six piglets(one pig per each group) were induced contact infection with inoculated piglets, during the experiment, and two piglets were used as control. Inoculated or contacted piglets were euthanized at 1, 3, 5, 7, 14 and 21 days postinoculation(DPI). The respiratory signs such as coughing and nasal discharge were observed on day 3 DPI, and ear cyanosis were on day 5 DPI, including contacted piglets. Through the necropsy, purple discolorization of dorsal part of lung, and hypertrophy of local lymph nodes were observed. The histopathological lesions of lung were interstitial pneumonia characterized by type 2 pneumocyte hyperplasia. We prepared the probe for ISH by RNA isolation from KPRRS-2, RT-PCR, and biotin labeling. We performed the ISH within only 1~2 hours using $Microprobe^{TM}$ capillary action system. As the results, the strong red specific positive signals, means PRRSV distribution, was mainly observed in the cytoplasm of alveolar macrophages. And also signals were detected in some type 2 pneumocytes and bronchiolar epithelium of lung, myocardium, liver, kidney, tonsil, spleen, gastrointestinal mucosa, testis and lymph nodes.
Ki, Su-Young;Cho, Young-Kyung;Chung, Ki-Myung;Kim, Kyung-Nyun
International Journal of Oral Biology
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v.41
no.2
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pp.97-103
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2016
Mammals have 3 pairs of major salivary glands i.e., the parotid, submandibular, and sublingual glands. Saliva secretion of these glands is modulated by taste perception. Salivary glands are composed mainly of acinar and ductal cells. Primary saliva is secreted by acinar cells and modified during ductal flow. Recently, of the murine 35 bitter taste receptors, Tas2r108 was expressed at highest levels in the submandibular gland by qPCR. Further, Tas2r108-transfected cells respond to a range of bitter compounds, such as denatonium, quinine, colchicine, diphenidol, caffeine and dapson. The objective of the present study was to characterize the expression of Tas2r108 mRNA in acinar and/or ductal cells of the submandibular gland using in situ hybridization (ISH). Male 42-60 days old DBA2 mice were used in the study. Messenger RNAs were extracted from the submandibular gland for generating digoxigenin (DIG) labeled-cRNA probes. These probes were transcribed in anti-sense and sense orientation using T7 RNA polymerase. Dot blot hybridization was performed using DIG labeled-cRNA probes, in order to estimate integrity and optimal diluting concentration of these probes. Subsequently, ISH was performed on murine submandibular gland to detect Tas2r108 mRNA. Dot blot hybridization data demonstrated that Tas2r108 DIG labeled-cRNA anti-sense probes specifically detected Tas2r108 cDNA. ISH results showed that the anti-sense probes labeled acinar and ductal cells in the submandibular gland, whereas no staining was visible in sense controls. Interestingly, the Tas2r108 expression levels were higher in acinar than ductal cells. These results suggested that Tas2r108 might be more associated with primary saliva secretion than with ductal modification of saliva composition.
Park, Nam-yong;Cho, Ho-seong;Kim, Tae-ju;Park, Young-seok
Korean Journal of Veterinary Research
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v.43
no.3
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pp.477-483
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2003
Molecular diagnostic techniques have been used to identify porcine epidemic diarrhea virus (PEDV), a causative agent of acute enteritis in swine, but they were difficult to be petformed and time-consuming. To detect PEDV in a rapid and easy way, we developed biotinylated cDNA probe for N gene encoding the nucleoproteins of PEDV. Formalin-fixed and paraffin-embedded tissues from 24 naturally infected pigs were used for the experiment. The ISH produced a positive reaction in all cases. When intestinal tissues were hybridized with PEDV probe, strong signals were seen in the villus enterocytes of the jejunum and ileum. Hybridization signals were also found in the duodenum from one pig and in colon from dnother. In conclusion, ISH with a biotinylated cDNA probe was provided to be a useful diagnostic method for detecting PEDV effectively in routinely processed tissue sections.
Caprine arthritis encephalitis (CAE) virus is a causative agent of caprine arthritis-encephalitis. In our previous study we reported a prevalence of CAE. In this study, we described the further detailed pathological features of CAE and examined the detection of virus by in situ hybridization (ISH). Histopathologically, interstitial pneumonia and bronchopneumonia in lung, focal inflammation in mammary glands, perivascular cuffing in brain, arthritis, and focal necrosis, mild steatosis, inflammatory cell infiltration of liver were noted. CAEV proviral-DNA was identified by nested polymerase chain reaction (PCR) in blood cells, brain, synovial fluid, and lymph node. Confirmation by nested PCR involved amplification of a 296 bp ($1^{st}$ PCR) and 185 bp ($2^{nd}$ PCR) fragments corresponding to a conserved region on the gag gene of CAEV. Positive ISH signals were detected in the brain and liver. In conclusion, significant histopathological findings included parenchymal infection in various organs, including the lung, liver, brain, joint, and mammary gland were noted in the CAEV infected dairy goat. ISH can help confirm the diagnosis of CAE in formalin-fixed samples.
The present study was carried out to investigate the pathogenicity and pathogenesis of wild rats(Rattus norvegicus), trapped in nature, intranasally infected with Aujeszky's disease virus(ADV/NYJ-1-87) by histopathology, immunohistochemistry and in situ hybridization(ISH). Fifteen rats inoculated intranasally were roughened haircoat, anorexia, listlessness, and depression second day after inoculation, and three rats died in 66-72 hours. Eight rats showed severe pruritus at the face that was accompanied by frequent face-washing movements of the forelegs, and then became violent and spasmodic for an hour or until they died. Four rats slowly recovered after showing mild clinical signs of the disease. Microscopic lesions in infected rats were characterized by meningitis, perivascular round cell infiltration, focal gliosis, and neuronal degeneration and necrosis. And intranuclear inclusion bodies were frequently detected in the cerebral cortex and medulla. Positive reaction to ADV by immunohistochemistry and ISH were detected in the following areas : trigermimal ganglion, brain, tonsil, nasal mucosa, spleen, lung and liver. The result has suggested that ADV intranasally infected in wild rats is followed by replication in epithelial calls of nasal mucosa and tonsil, then invade local lymph nodes by way of the lymphatics. It is also believed that the virus invades bipolar olfactory cells and trigerminal ganglion; and then spread into central nervous system.
The purpose of this study was to establish a rapid, reliable diagnostic method detecting Encephalomyocarditis virus(EMCV) RNA in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues of EMCV naturally infected pigs by cDNA probe of EMC $K_3$, the EMCV strain isolated from Korea. Using a biotin-labelled nick translated probe for the cDNA marker. We made up for some defects of radiolabeled method. In sits hybridization(ISH) technique, differently from the other nucleic acid hybridization methods, is able to detect the virus genome specifically in the state of the intact shapes of cells and/or tissues. We succeeded in performing the experiment to detect the EMCV within 1~2 hours using the $MicroProbe^{TM}$ capaillary action system. In this study, we observed highly specific positive signals of red color by staining the paraffin-embedded tissue sections of naturally EMCV-infected pig organs or tissues, including brain, heart, kidney and lacrimal gland with the Fast Red TR salt/Naphtol phosphate chromogen. The results suggested that this ISH method is considered as a highly sensitive and reliable tool for molecular biologic diagnosis of the EMC viral disease.
NUCB2/nesfatin-1 is first known to be expressed in the hypothalamus while controlling appetite and energy metabolism. However, recent studies have shown that NUCB2/nesfatin-1 was expressed in the various organs as well as the hypothalamus. Our previous reports also demonstrated that NUCB2/nesfatin-1 was expressed in the ovary, testis, pituitary gland, lung, kidney, and stomach of fetal and adult mice. However, the role of NUCB2/nesfatin-1 in mouse fetus remains unknown. Thus, the aim of this study was to investigate whether NUCB2/nestatin-1 is expressed in mouse fetus at the developmental stage in which organogenesis begins. To do this, we performed in situ hybridization (ISH) and immunohistochemistry (IHC) staining to examine the distribution of NUCB2 mRNA and nesfatin-1 protein in the mouse fetal organs during early developmental stages, especially at embryonic day (E) 10.5. As a result of ISH, NUCB2 mRNA positive signals were more frequent in the liver, but there were relatively few positive signals in heart. On the other hand, no positive signals were detected in other organs. These ISH results were validated by IHC staining and qRT-PCR analysis. Expression of nesfatin-1 protein detected by IHC staining was similar to that of NUCB2 mRNA detected by ISH in the liver and heart. In addition, the levels of NUCB2 mRNA expression analyzed by qRT-PCR were significantly increased in the liver and heart compared to other organs of the mouse fetus at E13.5, whereas its level was extensively decreased in the liver, but increased in the lung, stomach, and kidney of the mouse fetus at E17.5. These results suggest that NUCB2/nesfatin-1 may play an important role in liver and heart development and physiological functions in the developmental process of mouse fetus. Further studies are needed on the function of NUCB2/nesfatin-1, which is highly expressed in the various organs, including liver and heart during mouse development.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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