Shim, Won-Bo;Dzantiev, Boris B.;Eremin, Sergei A.;Chung, Duck-Hwa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.1
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pp.83-92
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2009
Individual immunochromatographic assays (ICG) for ochratoxin A (OTA) and zearalenone (ZEA) were optimized and used in the development of a one-step simultaneous immunochromatographic assay (OS-ICG) for the rapid multianalysis of two mycotoxins in corn samples. The nitrocellulose membrane of the OS-ICG was treated with OTA-bovine serum albumin (BSA), ZEA-ovalbumin (OVA), and anti-mouse IgG in the OTA test, ZEA test, and control zones, respectively. Monoclonal antibody-gold conjugates (OTA3 MAb-gold and ZEA2C5 MAb-gold) were sprayed onto the conjugate pad. The visual detection limits were 2.5 and 5 ng/ml for OTA and ZEA, respectively, and the results were obtained within 15 min after starting the analysis. An efficient, simple, and rapid extraction method using 30% MeOH/PBS was established and validated by analyzing the corn samples spiked with OTA/ZEA mixtures (0/0, 5/10, 10/20, and $20/30\;{\mu}g/kg$). The cut-off values of the OS-ICG for the spiked corn were 5 and $10\;{\mu}g/kg$ for OTA and ZEA, respectively. Natural corn samples were analyzed by OS-ICG, direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay (DC-ELISA), and HPLC. Results of the OS-ICG were in good agreement with those obtained by DC-ELISA and HPLC. The developed OS-ICG offers a rapid, easy-to-use, and portable analytical system and can be used as a convenient qualitative tool for the on-site simultaneous determination of OTA and ZEA in cereals, food, and agricultural products in one analytical cycle.
A one-step simultaneous immunchromatographic (OS-ICG) assay using colloidal gold-monoclonal antibody (gold-MAb) conjugates was developed for the rapid multianalysis of aflatoxin B1 (AFB1) and ochratoxin A (OTA) in feed samples. Visual detection limits for AFB1 and OTA were 0.5 and 2.5 ng/mL, respectively, and the results were obtained within 15 min. Matrix interference from the feed extracts was efficiently reduced by appropriate dilution with buffer. Cut-off values of the OS-ICG assay for the feed spiked with AFB1/OTA mixtures (5/5, 10/10, 25/25, 50/55, 100/100 ${\mu}g/kg$) were 10 and 50 ${\mu}g/kg$ for AFB1 and OTA. The comparative analyses of 65 feed samples by OS-ICG, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), and high performance liquid chromatography (HPLC) showed good agreement. In this study, we confirmed that simultaneous analysis based on immunoassay is possible and it can be used as an on-site multianalysis of AFB1 and OTA in feed, food, and agricultural products.
Background: Many diagnostic tests have developed to diagnose tuberculosis and other mycobacterial diseases but the diagnosis of tuberculosis relies largely on radiological findings and acid-fast staining of sputum and/or culture. Recently, new serologic diagnostic methods, which are safe and easy to use have been introduced into Korea. In this study, the usefulness of serologic diagnosis for tuberculosis and the disease pattern induced variation of the test were evaluated. Methods: Serological assay was performed upon 108 patients with two test kits, the ICT tuberculosis and the BioSign$^{TM}$TB, which are based upon a rapid immunochromatographic assay technique, capable of being interpreted within 15 minutes. The case groups consisted of 61 patients with active pulmonary tuberculosis(36 patients), extrapulmonary tuberculosis(3 patients), or both(22 patients). Control groups consisted of 47 patients with inactive old pulmonary tuberculosis(17 patients), nontuberculous pulmonary disease(16 patients) and nonpulmonary cardiac disease(14 patients). Results : The diagnostic sensitivity, specificity, positive predictive value(PPV) and negative predictive value(NPV) of the ICT tuberculosis were 64.3%, 91.5%, 90.0% and 68.3% respectively. The diagnostic sensitivity, specificity, PPV and NPV of the BioSign$^{TM}$TB were 76.5%, 95.3%, 94.1 % and 78.8% respectively. Differences in sensitivity were not significant between patients with previous history of tuberculosis or patients without prior history of tuberculosis. The ICT tuberculosis test showed higher sensitivity in pulmonary tuberculosis patients(76.5%) than extrapulmonary tuberculosis patients(33.3%). There was no difference in sensitivity between patients with or without cavitary lesion by chest X-ray. Conclusion: Considering high specificity and PPV, serologic diagnosis using a rapid immunochromatographic assay device is another helpful diagnostic method in the diagnosis of tuberculosis, when combined with previous diagnostic methods such as chest X-ray, microbiologic study but it has limitation in terms of confirming the diagnosis for tuberculosis as the only diagnostic method because of relatively low sensitivity and NPV.
Rapid immunochromatographic assay (ICA) kits were developed using flagella-specific monoclonal antibodies (MAbs) and rabbit polyclonal antibodies for screening Listeria spp. in food. The establishment of different formats, MAb 2B1 as capture antibody and MAb 7A3 or rabbit polyclonal antibodies as detector antibody, was compared. The 2 formats of the ICA kit were shown to have specific reactions with Listeria and no cross-reactivity with any of the non-Listeria including Escherichia coli O157:H7 and Salmonella enteritidis. The detection limits of the ICA kit using the combination of gold-labeled MAb 7A3 and MAb 2B1 showed $1{\times}10^5$ and $1{\times}10^6\;CFU/0.1\;mL$ at 22 and $30^{\circ}C$, respectively. The other format of the ICA kit using the combination of gold-labeled rabbit polyclonal antibodies and MAb 2B1 showed $1{\times}10^6\;CFU/0.1\;mL$ at $22^{\circ}C$ but weak signal at 30 culture. The format utilizing MAb was more sensitive than the one using polyclonal antibodies for capture antibody. Samples contaminated with L. monocytogenes 4b culture (9-10, 5-6, and 1-2 CFU/mL) on pork and pasteurized milk were confirmed as positive results. Current data suggests that this ICA kit is a rapid, simple and effective tool to screen for Listeria spp. in food.
Background: A diagnosis of H. pylori infection can be made by invasive or non-invasive methods. Several noninvasive diagnostic tests based on the detection of H. pylori stool antigen (HpSA) have been developed. The Genx H. pylori stool antigen card test is a new rapid, non-invasive test that is based on monoclonal immunochromatographic assay. The aim of this study was to determine its sensitivity, specificity, and diagnostic accuracy for diagnosing H. pylori infection in adult patients. Materials and Methods: A total of 162 patients were included in the study. A gastric biopsy was collected for histopathology and rapid urease testing. Stool specimens for HpSA testing were also collected. Patients were considered H. pylori positive if two invasive tests (histological and rapid urease tests) were positive. Results: Using the reference test, 50.6% of the samples were positive for H. pylori infection. The Genx H. pylori antigen test was positive in 19.7% of patients. The sensitivity, specificity, positive predictive value, negative predictive value, and diagnostic accuracy of the Genx H. pylori antigen test were 51.6%, 96.0%, 88.8%, 76.1%, and 79.0%, respectively. Conclusions: The Genx H. pylori stool antigen card test is a new non-invasive method that is fast and simple to perform but provides less reliable results.
Low parasitemic condition in malaria remains a diagnostic challenge; as the available diagnostic methods failed to detect. Currently, hemozoin (Hz) pigment is gaining attention in the diagnosis of malaria. The major drawback is ease of detection of Hz in routine practice. A pilot study was conducted to evaluate the role of Hz pigment and to compare the performance of quantitative buffy coat assay (QBC) and PCR in such conditions. Clinically suspected cases of malaria were examined by both Giemsa stain and immunochromatographic test (ICT). Samples positive by ICT and negative by Giemsa stain were further examined by nested PCR targeting 18S rRNA and QBC for the presence of malaria parasites and pigments. Thirty blood samples fulfilled the inclusion criteria out of which 23 were Plasmodium vivax (Pv), 4 Plasmodium falciparum (Pf), and 3 mixed (Pv and Pf) by immunochromatographic test. Twenty-one out of 30 (70%) were positive by nested PCR in comparison to 25/30 (83%) by QBC. Samples containing both malaria parasites and Hz pigment by QBC completely showed concordance with the PCR result. However, 61% of total samples containing only Hz pigment were observed positive by PCR. Hz pigment remains an important tool for malaria diagnosis. Identification of leukocytes containing pigments by QBC not only indicates recent malarial infections but also puts light on severity of the disease. QBC assay is a rapid, highly sensitive, and cost-effective method to detect malaria parasites and Hz pigment especially in low parasitemic conditions.
Objectives : The purpose of this study was to suggest a proper method for the detection of heaptitis B surface antibody(anti-HBs) in a screening program for hepatitis B vaccination. Methods : Sensivitity, specificity and predictive values were compared between Immunochromatographic assay (ICA) and passive hemagglutination(PHA) in 978 subjects(565 males, 413 females, 19-78 years ranging in age, mean 46.5 years old). EIA was used as a standard method for the detection of HBsAb. Results : Sensitivity in the detection of anti-HBs of PHA and ICA was 88.7%, and 94.9%, specificity was 94.3% and 96.6%, negative predictive value was 96.5%, and 98.0%, and positive predictive value was 82.3%, and 91.3%,, respectively. False negative rate(11.3%) of PHA was higher than that(5.1%) of ICA. The higher the titer of anti-HBs in EIA was, the lower the false negative rate was. There was no false negative result in the cases with $101mIU/{\beta}c$ or more in EIA Conclusion : We suggest that ICA should be the choice of screening method in the detection of anti-HBs in Hepatitis B vaccination program.
Aram Kang;Minjoo Yeom;Hyekwon Kim;Sun-Woo Yoon;Dae-Gwin Jeong;Hyong-Joon Moon;Kwang-Soo Lyoo;Woonsung Na;Daesub Song
IMMUNE NETWORK
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v.21
no.1
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pp.11.1-11.10
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2021
Coronavirus causes an infectious disease in various species and crosses the species barriers leading to the outbreak of zoonotic diseases. Due to the respiratory diseases are mainly caused in humans and viruses are replicated and excreted through the respiratory tract, the nasal fluid and sputum are mainly used for diagnosis. Early diagnosis of coronavirus plays an important role in preventing its spread and is essential for quarantine policies. For rapid decision and prompt triage of infected host, the immunochromatographic assay (ICA) has been widely used for point of care testing. However, when the ICA is applied to an expectorated sputum in which antigens are present, the viscosity of sputum interferes with the migration of the antigens on the test strip. To overcome this limitation, it is necessary to use a mucolytic agent without affecting the antigens. In this study, we combined known mucolytic agents to lower the viscosity of sputum and applied that to alpha and beta coronavirus, porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) and Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV), respectively, spiked in sputum to find optimal pretreatment conditions. The pretreatment method using tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) and BSA was suitable for ICA diagnosis of sputum samples spiked with PEDV and MERS-CoV. This sensitive assay for the detection of coronavirus in sputum provides an useful information for the diagnosis of pathogen in low respiratory tract.
Among semi-quantitative or fully quantitative lateral flow assay readers, an image sensor-based instrument has been widely used because of its simple setup, cheap sensor price, and compact equipment size. For all previous approaches, monochrome CCD or CMOS cameras were used for lateral flow assay imaging in which the overall intensities of all colors were taken into consideration to estimate the analyte content, although the analyte related color information is only limited to a narrow wavelength range. In the present work, we introduced a color CCD camera as a sensor and a color decomposition method to improve the sensitivity of the quantitative biosensor system which utilizes the lateral flow assay successfully. The proposed setup and image processing method were applied to achieve the quantification of imitatively dispensed particles on the surface of a porous membrane first, and the measurement result was then compared with that using a monochrome CCD. The compensation method was proposed in different illumination conditions. Eventually, the color decomposition method was introduced to the commercially available lateral flow immunochromatographic assay for the diagnosis of myocardial infarction. The measurement sensitivity utilizing the color image sensor is significantly improved since the slopes of the linear curve fit are enhanced from 0.0026 to 0.0040 and from 0.0802 to 0.1141 for myoglobin and creatine kinase (CK)-MB detection, respectively.
Kim, Jae-Seok;Lee, Su-Kyung;Ko, Dae-Hyun;Hyun, Jungwon;Kim, Hyun Soo
Annals of Laboratory Medicine
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v.39
no.1
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pp.50-57
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2019
Background: The Automated Fluorescent Immunoassay System (AFIAS) rotavirus assay (Boditech Med Inc., Chuncheon, Korea) is a new rapid antigen test for rotavirus detection. We evaluated the performance of this assay for detecting rotaviruses and their specific genotypes in clinical stool samples. Methods: AFIAS rotavirus assay was performed in 103 rotavirus-positive and 103 rotavirus-negative stool samples (confirmed by both PCR and ELISA), and its results were compared with those of PCR, ELISA, and immunochromatographic assay (ICA). We evaluated diagnostic sensitivity/specificity, the detectability of rotavirus subtypes, lower limit of detection (LLOD), reproducibility, cross-reactivity, and interference of AFIAS rotavirus assay. Results: Based on PCR and ELISA results, diagnostic sensitivity and specificity of the AFIAS rotavirus assay were both 99.0%. LLOD results showed that the AFIAS assay had sensitivity similar to or greater than ICA and ELISA. High reproducibility was confirmed, and no cross-reactivity or interference was detected. This assay could detect genotypes G1P[8], G2P[4], G3P[8], G4P[6], G4P[8], G8P[4], G8P[8], G9P[4], and G9P[8]. Conclusions: The AFIAS rotavirus assay showed high reproducibility, sensitivity, and specificity as well as excellent agreement with ELISA, PCR, and ICA. It detected the most common as well as unusual genotypes of rotavirus prevalent in Korea. It could be a useful onsite assay for rapid, convenient, and cost-effective detection of rotavirus infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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