본 연구는 미생물로부터 유래된 5종(AH, AK, AY, PS와 R)의 lipase들을 Amberlite XAD 7에 흡착법으로 고정화 시킨 후 각 immobilized lipase들의 특성을 알아보았다. 고정화 전과 후의 단백질 함량 및 각 free lipase들과 immobilized lipase들을 이용한 interesterification 반응물의 지방산과 TAG 조성을 분석하였다. 또한, immobilized lipase에 있어 중요한 요인인 reusability를 확인하였다. Free lipase의 단백질 함량은 2.22-11.41%로 AH가 가장 높았던 반면, immobilized lipase에서는 AH, PS와 AK가 mg protein/g support이 높았다. 한편, 반응 특성을 알아보기 위해 카놀라유, PEE와 StEE를 기질로 하여 batch type interesterification을 진행하였을 때, free lipase의 경우 free lipase R을 제외한 다른 free lipase들은 반응시간이 1시간에서 72시간으로 증가함에 따라 총 포화지방산 함량이 증가하였으며 그 중 free lipase AH가 반응성이 가장 높았다. 또한, RP-HPLC를 통해 free lipase AK 반응물을 분석한 결과, 반응시간이 길어질수록 카놀라유(0시간)에서 볼 수 있었던 57.49 area%의 ${\bigcirc}{\bigcirc}{\bigcirc}$가 6.53 area%로 감소하였다. 이는 각 free lipase들이 PEE와 StEE를 효소적 반응에 이용했기 때문이라고 판단된다. 한편, immobilized lipase AY와 R의 경우 반응시간이 1시간에서 48시간으로 증가하여도 카놀라유(0시간)의 총 포화지방산 함량과 큰 차이가 없었으나 immobilized AK의 경우 48시간에서 38.3 area%의 포화지방산 함량으로 가장 높은 활성을 보였다. 또한, 이를 사용하여 continuous type으로 반응하였을 때 유속이 느릴수록 효소와 기질 사이의 접촉 시간이 길어져 반응물의 총 포화지방산 함량이 증가함을 알 수 있었다. Reusability는 immobilized AK, AH와 PS 모두에서 두 번째 반복 반응을 하였을 때, 첫 번째 반응보다 총 포화지방산이 120-196.5% 증가하였다. 그러나 bounding protein 함량이 가장 높았던 immobilized AK는 support에 흡착되었던 free lipase AK의 탈착이 일어나 2번째 반응 후부터 활성이 감소한 반면, immobilized AH와 PS는 활성이 비교적 유지되었다.
In our previous work, a method of pretreating lipase was developed to prevent loss of its activity during covalent immobilization. In this study, Rhizopus oryzae lipase was pretreated before immobilization and then immobilized on a silica gel surface. The effects of the various materials and conditions used in the pretreatment stage on the activity of immobilized lipase were investigated. Immobilized lipase pretreated with 0.1% of soybean oil had better activity than those pretreated with other materials. The optimal temperature, agitation speed, and pretreating time for lipase pretreatment were determined to be $40^{\circ}C$, 200rpm, and 45min, respectively. The activity of immobilized soybean oil pretreated lipase was 630U/g matrix, which is 20 times higher than that of immobilized non-pretreated lipase. In addition, immobilized lipase activity was maintained at levels exceeding 90% of its original activity after 10 reuses.
Two commercially available lipases, Lipase OF (non-specific lipase from Candida rugosa) and Lipolase 100T (1, 3-specific lipase from Aspergillus niger), were immobilized on insoluble hydrophobic support HDPE (high density polyethylene) by the physical adsorption method. Hydrolysis performance was enhanced by mixing a non-specific Lipase OF and a 1, 3-specific Lipolase 100T at a 2 : 1 ratio. The results also showed that the immobilized lipase maintained its activity at broader temperature ($25~55^{\circ}C$) and pH (4-8) ranges than soluble lipases. In the presence of organic solvent (isooctane), the immobilized lipase retained most of its activity in upto 12 runs of hydrolysis experiment. However, without organic solvent in the reaction mixture, the immobilized lipase maintained most of its activity even after 20 runs of hydrolysis experiment.
Biodiesel conversion from soybean oil reached a maximum of 70% at 18 h using immobilized 1,3-specific Rhizopus oryzae lipase alone. Biodiesel conversion failed to reach 20% after 30 h when immobilized nonspecific Candida rugosa lipase alone was used. To increase the biodiesel production yield, a mixture of immobilized 1,3-specific R. oryzae lipase and nonspecific C. rugosa lipase was used. Using this mixture a conversion of greater than 99% at 21 h was attained. When the stability of the immobilized lipases mixture was tested, biodiesel conversion was maintained at over 80% of its original conversion after 10 cycles.
This study was designed to investigate the stability of a lipase fused with a cellulosebinding domain (CBD) to cellulase. The fusion protein was derived from a gene cluster of a CBD fragment of a cellulase gene in Trichoderma hazianum and a lipase gene in Bacillus stearothermophilus L1. Due to the CBD, this lipase can be immobilized to a cellulose material. Factors affecting the lipase stability were divided into the reaction-independent factors (RIF), and the reaction-dependent factors (RDF). RIF includes the reaction conditions such as pH and temperature, whereas substrate limitation and product inhibition are examples of RDF. As pH 10 and $50^{\circ}C$ were found to be optimum reaction conditions for oil hydrolysis by this lipase, the stability of the free and the immobilized lipase was studied under these conditions. Avicel (microcrystalline cellulose) was used as a support for lipase immobilization. The effects of both RIF and RDF on the enzyme activity were less for the immobilized lipase than for the free lipase. Due to the irreversible binding of CBD to Avicel and the high stability of the immobilized lipase, the enzyme activity after five times of use was over $70\%$ of the initial activity.
The lipase from Mucor racemosus NRRL 3631 was partially purified by fractional precipitation using 60% ammonium sulfate, which resulted in a 8.33-fold purification. The partially purified lipase was then immobilized using different immobilization techniques: physical adsorption, ionic binding, and entrapment. Entrapment in a 4% agar proved to be the most suitable technique (82% yield), as the immobilized lipase was more stable at acidic and alkaline pHs than the free enzyme, plus 100% of the original activity was retained owing to the thermal stability of the immobilized enzyme after heat treatment for 60 min at $45^{\circ}C$. The calculated half-lives (472.5, 433.12, and 268.5 min at 50, 55, and $60^{\circ}C$, respectively) and the activation energy (9.85 kcal/mol) for the immobilized enzyme were higher than those for the free enzyme. Under the selected conditions, the immobilized enzyme had a higher $K_m$ (11.11 mM) and lower $V_{max}$ (105.26 U/mg protein) when compared with the free enzyme (8.33 mM and 125.0 U/mg protein, respectively). The operational stability of the biocatalyst was tested for both the hydrolysis of triglycerides and esterification of fatty acids with glycerol. After 4 cycles, the immobilized lipase retained approximately 50% and 80% of its original activity in the hydrolysis and esterification reactions, respectively.
The hydrolysis of olive oil was attempted with immobilized C. rugosa lipase in the reverse phase solvent system. (i.e. immobilized wet particles is dispersed in continuous phase olive oil or organic solvents containing olive oil). Sephadex LH-20 and LH-60 were used as the supports that can be used in organic solvents. The water content of wet particles of sephadex LH-20 and LH-60 were about 72% (w/w) and 85% (w/w), respectively Both swollen gels with 0.05M buffers adsorbed about 18% of lipase dissolved. They were easily dispersed in liquid olive oil or in organic solvents. The effects of organic solvents on the stability and catalytic activity of the lipase have been examined. The results revealed that isooctane is superior to the other solvents examined for enzymatic fat spliting in reverse phase system. Kinetics of enzymatic hydrolys of olive oil by immobilized lipase has been investigated in a batch reactor. Effects of pH and temperature on the lipase were studied. The substrate concentration was influenced positively on the thermal stability.
Lipase를 유지분해에 이용하기 위한 기초연구로서 Candida cylindracea에서 추출된 lipase를 흡착법에 의해 고정화하고 그의 반응특이성을 본 결과는 다음과 같다. Lipase 흡착에 적합한 흡착제로는 silica gel이 선정되었으며, Silica gel 1.6g에 lipase 47.5 units를 $5^{\circ}C$, PH 7.0에서 100분간 흡착시키는 것이 좋았다. Silica gel에 고정화 시킨 lipase를 유지방과 olive oil의 분해에 적합한 최적온도 및 최적pH는 가용성효소와 비교시 $37^{\circ}C$, pH 7.0으로 변하지는 않았으나 활성의 범위는 넓어졌다. 또한 열안정성 및 pH안정성도 가용성 효소에 비하여 활성의 범위가 넓어졌다. 유지의 분해에 적합한 고정화 효소의 최적효소농도는 유지방의 경우 30g이었으며 올리브유의 경우 80g으로 선정하였다. 이 때 최적기질농도는 유지방 및 올리브유 모두 20%였다. 반응시간에 따른 반응률은 유지방을 이용하여 조사한 결과 가용성 효소는 반응 4시간까지는 급격한 분해를 나타냈으나 고정화 효소는 8시간 까지 급격한 증가를 나타내고 그 이상은 거의 일정하였다. 또한 유리되는 지방산의 profile은 가용성 효소와 비교시 capric acid의 생성은 모두 높았으며, myristic acid의 함량은 높고 butyic acid의 함량은 적었다.
Poly(glycidyl methacrylate)-grafted polyethylene microbeads (POPM) presenting epoxy groups were prepared by radiation-induced graft polymerization of glycidyl methacrylate on the polyethylene microbead. The obtained POPM was characterized by IR spectroscopic, X-ray photoelectrons spectroscopy (XPS), scanning electron microscope (SEM), and thermal analyses. Furthermore, the abundance of epoxy groups on the POPM was determined by titration and elemental analysis after amination. The epoxy group content was calculated to be in the range 0.29-0.34 mmol/g when using the titration method, but in the range 0.53-0.59 mmol./g when using elemental analysis (EA) after amination. The lipase was immobilized to the epoxy groups of the POPM under various experimental conditions, including changes to the pH and the epoxy group content. The activity of the lipase-immobilized POPM was in the range from 160 to 500 unit/mg-min. The activity of the lipase-immobilized POPM increased upon increasing the epoxy group content. The lipase-immobilized POPM was characterized additionally by SEM, electron spectroscopy for chemical analysis (ESCA), and EA.
We immobilized Thermomyces lanuginosus lipase to catalyze transesterification reaction in DMF. This lipase was selected after screening among other commercial lipases. We found that prepared immobilized lipase is particularly useful for preparation of 6-O-acylsucrose with higher conversion rate even in 10 g scale. Several solvents were evaluated for selective transesterification reaction. We noticed that the immobilized lipase retained more than 80 % activity after 5 cycles of 96 h reaction. A general method was also developed to purify the products using simple crystallization and precipitation process. Furthermore, 6-O-vinyladipoylsucrose was subjected to synthesis of the corresponding polymer by radical initiator. The sucrose branched polymer can be used further for evaluation of its biodegradability and other biological applications.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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