The present study was performed to investigate the effects of in vitro maturation (IVM) and in vitro fertilization (IVF) duration on the development of Korean Native Cattle embryos. The time of blastocyst formation and the quality of blastocysts based on cell numbers were examined. The cleavage rate increased with the length of IVF duration in the groups of 18-hr IVM, but was constant in the groups of 24-hr IVM. The development rate to the 8-cell stage was significantly higher in the IVM 18: IVF 20 group than in the IVM 24: IVF 24 group. The development rate to the blastocyst stage was highest in the IVM 18: IVF 20 group, significantly different from that of the IVM 18: IVF 16, IVM 24: IVF 20 and IVM 24: IVF 24 group. The time of blastocysts formation tended to be shorter when IVM and IVF duration were decreased. The number of inner cell mass, trophoblast and the total cells were significantly higher in the IVM 18: IVF 16 group than in the IVM 24: IVF 24 group (P<0.05). These results demonstrated that the IVM and IVF duration should be adequate for the efficient production of bovine embryos, and it might particularly be essential to determine the proper combination of IVM and IVF duration.
This study was aimed at testing the gene expression of antioxidant enzymes and apoptosis genes for in vitro culture in porcine embryos produced by in vitro maturation/in vitro fertilization (IVM/IVF). Pocine preimplantation embryos obtainted from IVM/IVF can be successfully culture in vitro, but they are delayed or stop to develop at specific developmental stage. Many factors such as reactive oxygen species and apoptosis in an IVM/IVF system followed by in vitro culture influence the rate of production of viable blastocysts. Porcine embryos derived from IVM/IVF were cultured in the atmosphere of 5% $CO_2$ and 20% $O_2$ at $38.5^{\circ}C$ in NCSU23 medium. The patterns of gene expression for antioxidant enzymes and apoptosis genes during in vitro culture in pocine IVM/IVF embryos were examined by the modified semi-quantitative single cell reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR). Porcine embryos produced by in vitro procedures were expressed mRNAs for CuZn-SOD, GAPDH and GPX, whereas transcripts for Mn-SOD and catalase were not detected at any developmental stages. Expression of caspase-3 mRNA was detected at 2 cell, 8 cell 16 cell and blastocyst, but p53 mRNA was not detected at any stages. The fas transcripts was only detected in blastocyst stage. These results suggest that various antioxidant enzymes and apoptosis genes play crucial roles in vitro culture of porcine IVM/IVF embryos.
Despite the rapid development of assisted reproductive technologies (ART) in recent years, implantation rates after replacement of embryos into the uterine cavity remains low. Several techniques such as culture conditions based on formulations of human tubal fluid and various ART techniques as GIFT, ZIFT, TET have been adopted in recent years to improve embryo viability in vitro and implantation rates. Also, coculture of human IVF-derived embryos have been used in an effort to increase the number of viable embryos following IVF and to improve synchrony between the developing embryo and the uterine environment. The aim of this study was to evaluate whether the use of co culture with autologous cumulus cells has a significant beneficial effect on the development of embryos in vitro and its relation to the pregnancy rates in 120 patients with previous failed IVF-ET from September, 1995 to January 1998. We obtained the results from which significant improvement in the quality of viable embryos were observed using a coculture system with autologous cumulus cells, but pregnancy rates in this group of patients did not differ from the rate in the standard IVF group during the same period. Our study shows that a simplified short-term coculture system with autologous cumulus cells may help rescue moderate quality embryos to cleave regularly.
In vitro fertilization(IVF) derived morula and blastocyst embryos were bisected by a simple method and cultured in vitro without zona pellucida And also bisected embryos were frozen-thawed and cultured in vitro) to evaluate the survival rate. The results obtained were as follows : The average number of grade I or II immature follicular oocytes recovered by slicing method per ovary was 11.9 from 142 ovaries. Following in vitro fertilization, the rates of cleavage and in vitro development to morula and blatocyst were 61.7 and 32.2% respectively. The successful bisection rate of IVE embryos was 67.51%, and the embryos of blastocyst stage were bisected successfully at significantly(P
This study was conducted to investigate the survival and hatching rates after refrozen-thawed bovine IVF blastocysts. The survival rates after refrozen-thawed bovine IVF blastocysts produced on day 7, day 8 and day 9, were 66.6%(16/24), 62.5%(15/24) and 65.3%(17/26), respectively. The survival and hatching rates after the first frozen-thawed bovine JVF blastocysts were 90.0%(27 /30) and 70.0%(21 /30), but in refrozen-thawed bovine IVF blastocysts were 66.2%(49 /74) and 45.9%(34 /74), respectively. The results of this study were suggest that refrozen-thawed bovine IVF embryos had survival ability.
In this study, we aimed to determine whether the evaluated markers of cell death could be found at particular developmental stages of normal porcine in vitro fertilization (IVF) embryos. We investigated the characteristics of spontaneous and induced apoptosis during preimplantation development stages of porcine IVF embryos. In experiment 1, to induce apoptosis of porcine IVF embryos, porcine IVF embryos at 22h post insemination were treated at different concentration of actinomycin D (0, 5, 50 and 500 ng/ml in NCSU medium). Treated embryos were incubated at $39^{\circ}C$ in 5% $CO_2$, 5% $O_2$ for 8h, and then washed to NCSU medium and incubated until blastocyst (BL) stage. We examined cleavage rate at 2days and BL development rate at 7days after in vitro culture. A significantly lower rate of cleavage was found in the 500 ng/ml group compared to others (500 ng/ml vs. 0, 5, 50 ng/ml; 27.8 % vs. 50.0%, 41.2%, 35.9%), and BL formation rate in 500 ng/ml was lower than that of others (500 ng/ml vs. 0, 5, 50 ng/ml; 8.0% vs. 12.6%, 11.2%, 12.6%). In experiment 2, to evaluate apoptotic cells, we conducted TUNEL assay based on morphological assessment of nuclei and on detection of specific DNA degradation under fluorescence microscope. This result showed that apoptosis is a normal event during preimplantation development in control group (0 ng/ml actinomycin D). A high number of BL derived control group contained at least one apoptotic cell. Actinomycin D treated BLs responded to the presence of apoptotic inductor by significant decrease in the average number of blastomeres and increase in the incidence of apoptotic cell death. In 500 ng/ml group, the incidence of apoptosis increased at 4-cell stage and later. This result suggested that apoptosis is a process of normal embryonic development and actinomycin D is useful tool for the apoptosis study of porcine preimplantation embryos.
Bovine embryos at 2-to 8-cell produced by in vitro matured/in vitro fertilized(IVM/IVF) were cultured in TCM 199 or Synthetic oviduct fluid(SOF) with 10% fetal bovine serum(FBS) or cocultured with cumulus or bovine oviduct epithelial cell(BOEC) in TCM-199 or SOF medium. In experiment 1, the proportions of embryos developed to morula and blastocysts stages in TCM 199 medium were higher when they were co-cultured with cumulus cell(29%) or BOEC(33%) than that of TCM 199 with 10% FBS(12%, P<0.01). In experiment 2, embryos deived from IVM/IVF were cultured in SOF with 10% FBS or cocultured with cumulus cell or BOEC in same medium. The higher development rates of IVM/IVF embryos developed beyond morula stages were obtained in cumulus cell co-culture group(39%) than those of BOEC group(26%) and SOF with 10% FBS group(17%, P<0.01). The present results indicated that the early development of IVM/IVF embryos can be maintained efficienty in SOF with cumulus cell co-culture.
This study was conducted to examine the condition of in vitro culture system and the viability after embryo transfer of in vitro matured-in vitro fertilized (IVM-IVF) bovine embryos. The in vitro development to the blastocyst stage was enhanced by supplying bovine serum albumin(BSA) to co-culture medium with bovine oviduct epithelial tissue(BOET) compared with that in medium supplemented with fetal bovine serum(FBS) (41.2% vs. 26. 3%, P<0.05). After transfer of IVM-IVF blastocysts into the uterine horn of recipient females (Aberdeen Angus), one was pregnant to term and produced a head of male Korean native calf. These results confirm that the in vitro development of IVM-IVF bovine embryos is affected with different protein source in co-culture with BOET, and IVM-IVF embryos can develop to term after in vitro culture and embryo transfer.
Insulin-like growth factor II (IGF2) and H19 genes are mutually imprinted genes which may be responsible for abnormalities in the cloned fetuses and offspring. This study was performed to identify putative differentially methylated regions (DMRs) of porcine H19 locus and to explore its genomic imprinting in in vitro fertilized (IVF) and somatic cell nuclear transferred (SCNT) embryos. Based on mice genomic data, we identified DMRs on H19 and found porcine H19 DMRs that included three CTCF binding sites. Methylation patterns in IVF and SCNT embryos at the 2-, 4-, $8{\sim}16$-cells and blastocyst stages were analyzed by BS (Bisulfite Sequencing)-PCR. The CpGs in CTCF1 was significantly unmethylated in the 2-cell stage IVF embryos. However, the 4- (29.1%) and $8{\sim}16$-cell (68.2%) and blastocyst (48.2%) stages showed higher methylation levels (p<0.01). On the other hand, SCNT embryos were unmethylayted ($0{\sim}2%$) at all stages of development. The CpGs in CTCF2 showed almost unmethylation levels at the 2-,4- and $8{\sim}16$-cell and blastocyst stages of development in both IVF ($0{\sim}14.1%$) and SCNT ($0{\sim}6.4%$) embryos. At all stages of development, CTCF3 was unmethylated in IVF ($0{\sim}17.3%$) and SCNT ($0{\sim}1.2%$) embryos except at the blastocyst stage (54.5%) of IVF embryos. In conclusion, porcine SCNT embryos showed an aberrant methylation pattern comprised to IVF embryos. Therefore, we suggest that the aberrant methylation pattern of H19 loci may be a reason for increased abnormal fetus after embryo transfer of porcine SCNT embryos.
Blastocyst formation, consisting of the inner cell mass (ICM) and trophectoderm (TE), is the first differentiation process during embryonic development in mammals. It has been hypothesized that the proportion of ICM to TE in the blastocyst may be crucial for subsequent developmental competence of early embryos, which it may be expressed as a sensitive indicator for evaluating in vitro systems. In this study ICM/total cell ratio of nuclear transfer (NT) embryos was compared with IVF-derived and in vivo embryos. Somatic cell nuclei obtained from a fetus at Day 40 of gestation were transferred into the enucleated oocyte and then cultured in NCSU 23 medium for 6 days as previously described (Koo et al., Biol. Reprod. 2000; 63:986-992). ICM and TE cells of blastocysts were determined by using a differential staining method (Han et al., Biol. Reprod. 1999; 60:1110-1113). Development rate (9.8$\pm$2.5%, 23/225) to the blastocyst stage of NT embryos was lower than IVF embryos (23.8$\pm$2.7%, 53/223). Thus, a difference was detected in the in vitro developmental rate to blastocyst stage between NT and IVF-derived embryos (P<0.05). In the next experiment, we investigated ICM and TE nuclei to assess the quality of blastocysts that produced by NT, IVF and in vivo, respectively. NT blastocysts (27.6$\pm$8.3) showed a smaller total cell number than IVF-derived (42.6$\pm$17.4) and in vivo embryos (283.9$\pm$103.5) (P<0.05). Ratios of ICM/total cells in NT, IVF and in vivo blastocysts were 15.1$\pm$ 18.6% (n=56), 12.3$\pm$9.2% (n=57) and 30.4$\pm$6.8% (n=40), respectively. Individual blastocysts for the ratio of ICM/total cells were assigned to 3 groups (I; <20%, II; 20 to 40% and III;>40%). As the results, most in vivo blastocysts (97.5%, 39/40) were distributed into group II while most NT (78.6%, 44/56) and IVF-derived blastocysts (82.5%, 47/57) were allocated to group I. Thus, our data show that NT or IVF-derived embryos have aberrant morphology during early development in vitro systems, suggesting that these anomalies may result in developmental failures of the NT embryos to term.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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