• 한국미생물·생명공학회지
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• 제18권6호
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• pp.566-570
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• 1990

Lactobacillus sporogenes에서 Beta-glactosidase의 생합성은 isopropyl-Beta-galactopyransoide(IPTG)나 galactose에 의해 효과적으로 유도되었으며 배양초기에는 lactose에 의해서도 훨씬 낮은 정도로 유도되었다. Glucose는 inducer exclusion이나 transient repression이 아니 catabolite repression에 의해 Beta-galactosidase의 합성을 억제시킴을 알 수 있었다. 또한, glucose에 의한 Beta-galactosidase의 catabolite repression은 cAMP나 cGMP에 의해 전혀 완하되지 않았다.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제7권1호
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• pp.21-24
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• 1997

Chloramphenicol acetyl transferase (CAT) protein and mRNA levels in E. coli were determined following induction of a tac::cat construct by isopropyl-${\beta}$-thiogalactopyranoside (IPTG). High cat mRNA levels did not directly reflect CAT protein levels, in either shakeflask experiments or fermentations. Furthermore, concentrations of IPTG resulting in the highest levels of expression of cat mRNA, were different to those resulting in highest levels of CAT protein. The data suggest that high transcriptional activities lead to limitations at the translational level.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제26권1호
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• pp.15-22
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• 1998

일반적으로 Streptomyces류는 성장이 늦고 유지가 어려운 반면, E. coli는 배양기간이 짧고 유전자 조작도 간편한 장점이 있기 때문에, E. coli를 이용하여 유용단백질을 생산하는 연구가 일반적인 흐름이다. 그러나 E. coli에서 외래유전자를 도입하여 대량으로 생산을 시키는 경우에 비용해성의 inclusion body를 형성하는 경우가 많으므로 용해성의 활성형 단백질을 생산하기 위하여는 여러 가지 조건을 고려하여야 한다. 본 논문에서는 aklavlnone 11-hydroxylase gene(dnrF)을 E. coli BL2l에서 발현시킬 때의 배양조건을 배양온도와 IPTG농도의 두가지 요소를 조합하여 변형시키는 방법으로, 활성형 단백질의 생산을 최대화하고 inclusion body의 형성을 최소화하는 배양조건을 조사하였다. 그 결과, 37$^{\circ}C$에서 배양했을 때에는 0.02mM의 IPTG를 첨가하였을 때 inclusion body를 가장 적게 만들고, 그에 따라 생산되는 효소활성도 가장 높았다. 반면, 28$^{\circ}C$로 배양온도를 낮추었을 때에는 0.06mM의 IPTG를 첨가하였을 때 aklavinone 11-hydroxylase효소가 최대로 생산됨을 SDS-PAGE 및 효소 활성측정으로 확인하였다. IPTG농도를 0.1 mM로 높인 경우에는 28$^{\circ}C$, 37$^{\circ}C$에서 모두 aklavinone 11-hydroxylase효소가 과발현되어 Inclusion body를 가장 많이 생성하였음을 알 수 있었다. 방선균에서 동일 유전자를 대량발현시키는 경우 발현된 단백질의 효소 활성은 있으나 SDS-PAGE상에서의 단백질의 관찰이 불가능하였고, 동시에 단백질의 정제시 효소활성이 소실되어 정제가 불가능하였다. 이러한 효소 활성의 소실의 원인은 세포내의 어떤 저분자물질일 것으로 추정되며 본 연구에서 제작한 antibody를 이용하면, 효소의 정제가 용이하게 수행될 것이다. 특히 대장균계에서의 활성형 효소의 최적발현조건에서 세포를 배양하거나, inclusion body의 refolding을 실시한 후, 항체를 이용한 Western blot assay를 지표로 효소를 정제하면, 미지의 cofactor의 정체도 밝혀지고 aklavinone 11-hydroxylase류의 효소 특성 연구에 큰 도움이 될 것이다. 또한 이 효소를 이용한 다양한 종류의 bioconversion을 실시하여 그동안 background 때문에 생성된 product의 검출이 불가능했었던 소량의 생성산물의 분석도 가능할 것으로 판단되어 금후의 bioconversion연구에 기대하는 바가 크다.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제7권5호
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• pp.323-328
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• 1997

The recombinant Escherichia coli BL21(DE3)pLysE : pTCGT1 was grown to overproduce Bacillus macerans cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) able to synthesize ${\alpha}$-cyclodextrin (CD) with a selectivity of 67%. A number of batch fermentations were performed to test the possibility of using lactose as an inducer of the E. coli T7 promoter system. A mixture of isopropyl ${\beta}$-D-thiogalactoside (IPTG) and lactose (1 : 1) gave a maximum CGTase activity of 2.4 U/ml, which was higher than the value obtained with induction by IPTG alone. Fed-batch fermentations involving a glucose-controlled growth period followed by a gene-expression phase with mixtures of IPTG and lactose were employed to achieve high cell density and thereby increase total CGTase activity. Optimized fed-batch fermentation using the modified inducer (IPTG : lactose=1 : 3) and 100 g/l yeast extract solution in the gene-expression phase resulted in a maximum CGTase activity of 62.9 U/ml and a final cell mass of 53.5 g/l, corresponding to a 31-fold increase in CGTase activity and a 29-fold increase in cell mass compared with the control batch fermentation.

• KSBB Journal
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• 제13권1호
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• pp.96-100
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• 1998

두 개의 프로모터 (trc와 Pp)를 Alcaligenes eutrophus에서 유래된 PHA 오페론에 삽입하여 재조합 대장균에서 분자량이 큰 polyhydroxybutyrate (PHB)를 얻고자 하였다. 두 개의 프로모터는 hydroxybutyric CoA와 PHA 중합반응의 유전자 발현을 각각 독립적으로 제어하기 위해 설계된 것이다 새로운 합성오페론을 포함한 플라즈미드는 E. coli DH5 $\alpha$ 에 transformation 되어 PHB 생산에 이용되었다. 본 실험의 가설로서 PHA 합성오페론의 IPTG에 의한 유도가 없을 경우 낮은 pHA synthase의 활성이 고분자 중합반응의 개시제 농도를 줄여주어 결과적으로 높은 연결수의 고분자를 생성할 것이라는 모델을 세웠다. 실제로 IPTG의 공급이 없는 발효실험을 통해 평균분자량이 $2.5{\times}10^7$ 인 거대 고분자를 얻을 수 있었다. PHA 생합성에 관여는 효소의 활성 분석으로 3-hydroxybutyric CoA의 중합을 촉매하는 효소인 PHA synthase의 활성을 가지고 In vivo에서 분자량이 제어됨을 확인하였다.

• KSBB Journal
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• 제23권6호
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• pp.474-478
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• 2008

효율적인 UDP-glucose regeneration system을 구축하기 위해서 재순환 시스템에 관여하는 4가지 효소 (UDP-glucose pyrophosphorylase, UDP-Kinase gene, UDP-galactose 4-epimerase, and $\beta$-1, 4-galactasyltrasnsferase)들을 E. coli AD202에서 발현 시켜 Disaccharide 합성 정도를 보았다. Disaccharide는 0.5 mM IPTG 농도에서 가장 높은 농도를 나타내었다. 대조구와 비교한 결과 LacNAc 농도는 1.34 mM로 10배 정도 정가하였고, lactose 농도는 0.39 mM로 대조구보다 2.6배 증가하였다. 총 disaccharide 농도는 1.73 mM 이며, 대조구 보다 6.5배 높은 생산성을 보였다. 본 논문은 결과는 metabolic flux regeneration으로 disaccharides 합성을 증가시킬 수 있다는 것을 보여주었다.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제16권7호
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• pp.1026-1031
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• 2006

The optimization of the production of a fusion protein containing the antigenic domain 1 (AD-1) is of a great importance, considering its use in diagnostic tests. The fusion protein is produced by the fermentation of a recombinant strain of Escherichia coli containing the plasmid Mbg58, which expresses the AD-1 (aa 484-650) of human cytomegalovirus glycoprotein B as a fusion protein together with aa 1-375 of ${\beta}-galactosidase$. An important characteristic of promoters (lac and derivatives) used in recombinant protein production in E. coli is their inducibility. Induction by IPTG is widely used for basic research; however, its use in large-scale production is undesirable because of its high cost and toxicity. In this work, studies using different inducers and carbon sources for the production of a fusion protein containing the AD-l were performed. The results showed that lactose could be used as an inducer in the fermentation process for the production of this protein, and that expression levels could exceed those achieved with IPTG. The use of lactose for protein expression in E. coli should be extremely useful for the inexpensive, large-scale production of heterologous proteins in E. coli. Addition of sucrose to the fermentation medium improved the yield of recombinant protein, whereas addition of fructose or trehalose decreased the yield.

• Journal of Life Science
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• 제9권2호
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• pp.62-66
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• 1999

To overexpress E. coli ADA in host strain E. coli M15, the expression plasmid pQEADD was constructed. To analyze the expression characteristics of ADA, a time course of the expression was first examined. The protein was not detected in no inducted in no induction samples. After the addition of IPTG, a band corresponding to the expected size of ADA was appeared. Its molecular weight was about 36,000 dalton. Maximum expression level was revealed when the cell cultured for 3∼4hrs after induction. This result indicated that the efficient expression of add can be achieved by induction at early logarithmic phase. The effect of different IPTG concentration on the degree of ADA expression was investigated. The expression levels of add were not largely affected by IPTG concentration. Location of overexpression ADA was checked out. A protein band corresponding to the ADA was seen in only crude extract B(insoluble protein). This result suggests that ADA is in E. coli M15. The molecular weight of ADA estimated by SDS-PAGE was approximately 36,000 Da.

• 한국통신학회논문지
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• 제34권6B호
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• pp.575-584
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• 2009

본 논문에서는 IP 기반 콜 센터에서 통화 처리 모의 실험을 위한 VoIP 트래픽 발생기를 설계하고 구현한다. 구현된 트래픽 발생기(VoIPTG)는 H.323과 SIP 기반의 VoIP 콜 생성과 G.711 코덱을 사용하는 RTP 트래픽을 발생시킴으로써 다수의 대화자들이 음성 통화하는 상황을 모의 실험을 할 수 있도록 해준다. VoIPTG를 이용하면 0.323 또는 SIP 세션 제어 프로토콜 선택, 사용자(call)수 변화, 시간 변화, 음성코덱의 선택 등 여러 가지 조합을 통해 다양한 모의실험 환경을 연출 할 수 있다. 이러한 트래픽 발생기는 IP 기반 컨택 센터의 전반적인 기능 검사 및 성능평가를 위해 유용하게 사용될 수 있으며, 특히 IP 기반 녹취 시스템의 성능 평가를 위해서 필수적이다.

• 생명과학회지
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• 제12권6호
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• pp.688-693
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• 2002

Chaperone 분자는 세포 내에서 새로 합성된 polypeptides의 misfolding을 보호하는 역할을 가진다. 이런 chaperone 분자와의 공발현은 활성형 재조합 단백질의 생산을 증가를 기대할 수 있다. 본 연구에서는 E. cozi에서 B. macerans 유래 cyclodextrin glucanotransferase (CGTase)의 활성형 생산에 GroEL/ES chaperone과의 공발현의 효과에 대해 조사하였다. cgt와 groEL/ES 유전자출 발현하는 pTCGT1과 pGro7은 각각 T7 promoter와 araB promoter에 의해 조절되고 이들을 E. coli cell에 co-transformation시켰다. 재조합 E. coli에서 IPTG와 L-arabinose의 최적 농도를 결정하기 위해 행한 결과 1 mM IPTG, 0.3 mg L-arabinose/$m\ell$에서 가장 높은 CGTase 활성을 나타내었다. 그리고 tube에서는 L-arabinose와 IPTG를 각각 0.4~0.5 $OD_{600}$과 0.8~l.0 $OD_{600}$에서 첨가하였을 때 활성형 CGTase의 생산이 증가되었다. GroEL/ES 공발현 조건에서는 가용성 CGTase 활성이 0.7~0.73 unit/$m\ell$로 단독 발현의 0.36~0.56 unit/$m\ell$에 비해 약 1.5 배 정도 증가함을 알 수 있었다. SDS-PAGE 분석에서는 GroEL/ES 공발현 조건에서 총 CGTase의 33.6%정도가 가용성 형태로 생산됨을 알 수 있었다.