This study was to examine expression of the recombinant full-length adiponectin (recombinant adiponectin) in insect ovarian cell culture system and to characterize structural properties of the recombinant adiponectin secreted in medium. Gene construct encoding the recombinant adiponectin contained N-terminal collagen-like domain (110 Amino Acids, AAs), C-terminal globular domain (137 AAs) and C-terminal peptides for detection with V5 antibody (26 AAs included adaptor peptide) and purification using the 6xHis tag (6 AAs). The approximate molecular weight of the product (monomer) was 35 kDa. Molecular mass species of the expressed recombinant adiponectin were monomer (~35 kDa), dimer (~70 kDa), trimer (~105 kDa) and hexamer (~210 kDa). The major secreted species were the LMW forms, such as monomer, dimer, and trimer. There was MMW of hexamer as minor form. HMW multimers (~300 kDa) were shown as a tracer or not detected on the SDS-PAGE in several experiments (data not shown). The multimer forms in this study were not compatible to those in animal or human serum and adipose tissue by other researcher's study in which the major multimer forms were HMW. By protein denaturing experiments with reducing reagent (${\beta}$-MeOH), anionic detergent (SDS) and heat ($95^{\circ}C$) on the SDS-PAGE, not all adiponectin multimers seemed to have disulfide bond linked structure to form multimers. The recombinant adiponectin which expressed in insect ovarian cell culture system seemed to have the limitation as full physiological regulator for the application to animal and human study.
Lee Yoon-Jung;Kim Bong-Gyu;Park Young-Hee;Lim Yoong-Ho;Hur Hor-Gil;Ahn Joong-Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.7
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pp.1090-1096
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2006
O-Methylation is a common modification reaction found in nature, and is mediated by an O-methyltransferase (OMT). OMTs have been mainly studied in plants, whereas only a few OMTs have been studied in microbes. When searching the Bacillus cereus genome, four putative small molecular OMTs were identified, among which BcOMT-1 was cloned and expressed in E. coli as a his-tag fusion protein. The whole cell expressing BcOMT-1 was used to methylate several flavonoids. Eriodictyol, luteolin, quercetin, and taxifolin, all of which contain 3' and 4' hydroxyl groups, served as methyl group acceptors for BcOMT-1, whereas naringenin, apigenin, 3,3'-dihydroxyflavone, and 3,4'-dihydroxyflavone did not function as substrates. Analysis of the reaction products using HPLC showed two different peaks, and NMR revealed that the methylation position was at the hydroxyl group of either carbon 3' or 4'. Therefore, this showed that BcOMT-1 used flavonoids containing ortho hydroxyl groups and transferred a methyl group to either of two hydroxyl groups.
The glyoxylate cycle can conserve carbons and adequately supply tricarboxylic acid (TCA) cycle intermediates for biosynthesis when microorganisms grow on $C_{2}$ carbon sources. It has been reported that isocitrate lyase (ICL1), a key enzyme of the glyoxylate cycle, is highly induced when Magnaporthe grisea, the causal agent of rice blast, infects its host. Therefore, the glyoxylate cycle is considered as a new target for antifungal agents. A 1.6-kb DNA fragment encoding the ICL1 from M. grisea KJ201 was amplified by PCR, cloned into a vector providing His-tag at the N-terminus, expressed in Escherichia coli, and purified using Ni-NTA affinity chromatography. The molecular mass of the purified ICL1 was approximately 60 kDa, as determined by SDS-PAGE. The ICL1 inhibitory effects of TCA cycle intermediates and their analogs were investigated. Among them, 3-nitropropionate was found to be the strongest inhibitor with an $IC_{50}$ value of $11.0{\mu}g/ml$. 3-Nitropropionate inhibited the appressorium development in M. grisea at the ${\mu}M$ level, whereas conidia germination remained unaffected. This compound also inhibited the mycelial growth of the fungus on minimal medium containing acetate as a $C_{2}$ carbon source. These results suggest that ICL1 plays a crucial role in appressorium formation of M. grisea and is a new target for the control of phytopathogenic fungal infection.
This paper describes the development of an enzymatic assay system for the identification of specific inhibitors of sortase, a transpeptidase that cleaves surface proteins of Cram-positive bacteria, from Staphylococcus aureus ATCC 6538p for antibacterial drug discovery. The coding region of the enzyme was amplified with the exception of the N-terminal membrane anchor sequence, cloned into a vector providing His-Patch-thioredoxin-tag at the N-terminus, expressed in Escherichia coli, and purified by metal chelate affinity chromatography. The enzyme activity was determined by quantifying increased fluorescence intensity upon cleavage of synthetic Dabcyl-QALPETGEE-Edans peptide. The results suggest that the developed in vitro assay system call be used in the search for sortase inhibitors In a short period of time.
For the synthesis of various pharmaceuticals, chiral alcohols are useful intermediates. Among them, (R)-ethyl-4-chloro-3-hydroxybutanoate ((R)-ECHB) is an important building block for the synthesis of L-carnitine. (R)-ECHB is produced from ethyl-4-chloro-3-oxobutanoate (ECOB) by a reductase-mediated, enantioselective reduction reaction. The Saccharomyces cerevisiae YOL151W reductase that is expressed in Escherichia coli cells exhibited an enantioselective reduction reaction toward ECOB. By virtue of the C-terminal His-tag, the YOL151W reductase was purified from the cell-free extract using Ni2+-NTA column chromatography and immobilized onto Ni2+-magnetic microparticles. The physical properties of the immobilized reductase (Imm-Red) were measured using electron microscopy, a magnetic property measurement system, and a zeta potential system; the average size of the particles was approximately 1 μm and the saturated magnetic value was 31.76 emu/g. A neodymium magnet was used to recover the immobilized enzyme within 2 min. The Imm-Red showed an optimum temperature at 45℃ and an optimum pH at 6.0. In addition, Bacillus megaterium glucose dehydrogenase (GDH) was produced in the E. coli cells and was used in the coupling reaction to regenerate the NADPH cofactor. The reduction/oxidation coupling reaction composed of the Imm-Red and GDH converted 20 mM ECOB exclusively into (R)-ECHB with an e.e.p value of 98%.
Proceedings of the Korea Contents Association Conference
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2006.05a
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pp.479-482
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2006
Mobile Telemedicine uses common technologies that provide a conduit for information exchange between physicians nurses and patients. In addition to patient records, medical professionals will obtain vital signs and other reference data through Ubiquitous Sensor networks(USN). In this paper about a design and implementation of RFID reader platform that received RFID tag information from patients tags, transmit the data to SBC(Single board computer) based on Intel PXA255 ARM CPU and SBC transmit the data to MySQL server in hospital using by Wireless Internet. his system that based on Embedded Linux is composed of RFID module, ARM processor, RS-232 interface, and Wireless LAN. This paper also provides a brief overview and concept of RFID reader, and proposes the design and implementations of the RFID reader platform used QT and MySQL based on Embedded Linux.
The nucleocapsid(NP) protein of Newcastle disease virus (NDV) and its derivative (NP$\sub$cfus)containing the myc region and six histidine residues fused to its C-terminus were pcpressed aboundantly in Escherichia coli. The proteins were purified by sucrose gradient centrifugation. Both the NP and NP$\sub$cfus/ proteins self-assem- bled into ring-like particles stacked together to from nucleocapsid-like structure which are heterogeneous in length with a diameter of 20${\pm}$2 nm and central holow of 5${\pm}$1 nm. Only a very small amount of the monomers in the particles was linked by inter-molecular disulfide bonds. Fusion of the C-terminal end to 29 amino acids inclusive of the myc epitope and His tag did not impair ring assembly buy inhibited the formation of the long herringbone structures. Immunogold lableing of the particles with the anti-myc antibody showed that the C-terminus of the NP$\sub$cfus/ protein is exposed on the surface of these ring-like particles.
AHN SUN HEE;JEONG SEUNG HA;KIM JIN MAN;KIM YOUNG OK;LEE SANG JUN;KONG IN SOO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.2
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pp.354-361
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2005
Vibrio fluvialis, an enteropathogenic bacterium, produces a phospholipase which is thought to be an important factor in the pathogenesis of disease. In this study, the phospholipase gene (vfp) was identified from V fluvialis (KCTC 2473) and its sequence was determined. The entire open reading frame was composed of 1,689 nuc1eotides and 563 amino acids. The phospholipase gene (vfp) was overexpressed in Escherichia coli as a his-tag fused protein. This recombinant protein (rVFP58) was solubilized with 6 M urea and purified by Ni-NTA affinity chromatography. The action mode of rVFP58 was determined by TLC and GC-MS, and it showed phospholipase B activity, which had both phospholipase A and lysophospholipase activities. The rVFP58 showed a maximum activity at pH around 9- 10 and temperature of about 40OC, and it was stable under alkaline condition over pH 9. The cytotoxicity of rVFP58 was evaluated, using a fish cell line, CHSE-2l4, and was found to cause significant cell death after 14 h of exposure to 250 $\mu$g of the protein.
Park, Eun-Mi;Han, Yun-Hee;Park, In-Suk;Nam, Bo-Hye;Kong, Hee Jeong;Kim, Woo-Jin;Lee, Sang-Jun;Kim, Young-Ok
Journal of Marine Bioscience and Biotechnology
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v.2
no.2
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pp.108-112
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2007
A cellulase (endo-${\beta}$-1,4-D-glucanase(E.C.3.2.1.4)) was isolated from the hepatopancreas of abalone Haliotis discus hannai by EST analysis. The abalone cellulase named HdEG compassed 1977 bp, including 195 bp in the 5'untranslated region, 1680 bp in the open reading frame which encodes 560 amino acid residues, and 92 bp in the 3'-untranslated region. The C-terminal region of the HdEG showed 44-52% identity to the catalytic domains of glycoside hydrolase family 9 (GHF9)-cellulases from arthropods and bacteria. The recombinant cellulase, pEHdEG was produced in E. coli with being fused with C-terminal His-tag. The expressed protein showed a single band (~62 kDa) on Western blotting which was consistent with the value (61,878 Da) calculated from the DNA sequence.
Lycopene cyclase converts lycopene to ${\beta}$-carotene by catalyzing the formation of two beta-rings at each end of the linear carotene structure. This reaction takes place as a two-step reaction in which both sides of of the lycopene molecule are cyclized into ${\beta}$-carotene rings via the monocyclic ${\gamma}$-carotene as an intermediate. The crtY gene coding for lycopene cyclase from Paracoccus haeundaensis consists of 1,158 base pairs encoding 386 amino acids residues. An expression plasmid containing the crtY gene (pET44a-CrtY) was constructed and expressed in Escherichia coli, and produced a recombinant protein of approximately 43 kDa, corresponding to the molecular mass of lycopene cyclase. The expressed protein was purified to homogeneity by His-tag affinity chromatography and showed enzymatic activity corresponding to lycopene cyclase. We also determined the lycopene substrate specificity and NADPH cofactor requirements of the purified protein. The $K_m$ values for lycopene and NADPH were 3.5 ${\mu}M$ and 2 mM, respectively. The results obtained from this study will provide a wider base of knowledge on the enzyme characterization of lycopene cyclase at the molecular level.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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