Park, Soo-Yeon;Park, Se-Ah;Kang, Hyun-Mi;Kim, Hae-Kwon
Development and Reproduction
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v.12
no.2
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pp.183-194
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2008
A variety of stem cells has been emerging as therapeutic cells that can replace organ transplantation in human liver diseases. The present study focused on whether human eyelid adipose-derived stem cells (HAD) might differentiate into functional hepatocyte-like cells in vitro. HAD were isolated from human eyelid adipose tissue. Effect of dimethyl sulfoxide (DMSO), fibroblast growth factor (FGF)-2 and FGF-4 on the hepatic differentiation of HAD have been examined in vitro. Immunocytochemical analysis and PAS staining showed that HAD cultured in both DMSO and FGF-4 exhibited the most intense staining than HAD of the other experimental groups. These HAD expressed numerous hepatocyte-related genes. Immunoblotting analyses showed that HAD cultured in the presence of DMSO and FGF-4 secreted higher amount of human albumin than HAD cultured in other conditions. Urea analysis also demonstrated that these HAD produced higher amount of urea than any other groups of HAD. In conclusion, combined treatment of DMSO and FGF-4 could effectively induce the functional differentiation of HAD into hepatocyte-like cells.
Liver regeneration is a well-known systemic homeostatic phenomenon. The N6-methyladenosine (m6A) modification pathway has been associated with liver regeneration and hepatocellular carcinoma. m6A methyltransferases, such as methyltransferase 3 (METTL3) and methyltransferase 14 (METTL14), are involved in the hepatocyte-specific-regenerative pathway. To illustrate the role of METTL14, secreted from non-parenchymal liver cells, in the initiation phase of liver regeneration, we performed 70% partial hepatectomy (PH) in Mettl14 heterozygous (HET) and wild-type (WT) mice. Next, we analyzed the ratio of liver weight to body weight and the expression of mitogenic stimulators derived from non-parenchymal liver cells. Furthermore, we evaluated the expression of cell cycle-related genes and the hepatocyte proliferation rate via MKI67-immunostaining. During regeneration after PH, the weight ratio was lower in Mettl14 HET mice compared to WT mice. The expressions of hepatocyte growth factor (HGF) and tumor necrosis factor (TNF)-α, mitogens derived from non-parenchymal liver cells that stimulate the cell cycle, as well as the expressions of cyclin B1 and D1, which regulate the cell cycle, and the number of MKI67-positive cells, which indicate proliferative hepatocyte in the late G1-M phase, were significantly reduced in Mettl14 HET mice 72 h after PH. Our findings demonstrate that global Mettl14 mutation may interrupt the homeostasis of liver regeneration after an acute injury like PH by restraining certain mitogens, such as HGF and TNF-α, derived from sinusoidal endothelial cells, stellate cells, and Kupffer cells. These results provide new insights into the role of METTL14 in the clinical treatment strategies of liver disease.
Kim, Ji-Young;Lee, Yoon-Jung;Park, Se-Ah;Kang, Hyun-Mi;Kim, Kyung-Sik;Cho, Dong-Jae;Kim, Hae-Kwon
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.35
no.4
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pp.247-265
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2008
Objectives: Many types of liver diseases can damage regenerative potential of mature hepatocytes, hepatic progenitor cells or oval cells. In such cases, a stem cell-based therapy can be an alternative therapeutic option. We examined whether human amnion-derived mesenchymal stem cells (HAM) and human umbilical cord-derived stem cells (HUC) could differentiate into hepatocyte-like cells as therapeutic cells for the liver diseases. Methods: HAM and HUC were isolated from the amnion and umbilical cord of the volunteers after a caesarean section with informed consent. In order to differentiate these cells into hepatocyte-like cells, cells were cultivated in hepatogenic medium using culture plates coated with fibronectin. Effects of hepatocyte growth factor, L-ascorbic acid 2-phosphate, insulin premixture fibroblast growth gactor 4, dimethylsulfoxide, oncostatin M and/or dexamethasone were examined on the hepatic differentiation. After differentiation, the cells were analyzed by RT-PCR, immunocytochemistry, immunoblotting, albumin ELISA, urea assay and periodic acid-schiffs staining. Results: Initial fibroblast-like appearance of HAM and HUC changed to a round shape during culture in the hepatogenic medium. However, in all hepatogenic conditions examined, HUC secreted more amounts of albumin or urea into medium than HAM. Expression of some of hepatocyte-specific genes increased and expression of new genes were observed in HUC following cultivation in hepatogenic medium. Results of immunocytochemistry and immunoblotting analyses demonstrated that HUC secreted albumin into the culture medium. PAS staining further demonstrated that HUC could store glycogen inside of the cells. Conclusions: Both HUC and HAM could differentiate into albumin-secreting, hepatocyte-like cells. Under the same hepatogenic conditions examined, HUC more efficiently differentiated into hepatocyte-like cells compared with the HAM. The results suggest that HUC and HAM could be used as sources of stem cells for the cell-based therapeutics such as in liver diseases.
Ha, Young-Eun;Shin, Jin-Sup;Lee, Dong-Yun;Rhim, Tai-Youn
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.33
no.6
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pp.1983-1988
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2012
Stem cell transplantation is emerging as a possible new treatment for liver cirrhosis, and recent animal studies have documented the benefits of stem cell therapy in a hepatic fibrosis model. However, the underlying mechanism of stem cell therapy is still unclear. Among the proposed mechanisms, the cell replacement mechanism is the oldest and most important, in which permanently damaged tissue can be replaced by normal tissue to restore function. In the present study, Cy5.5-labeled superparamagnetic iron oxide (SPIO) was used to label human mesenchymal stem cells. The uptake of fluorescently labeled nanoparticles enabled the detection and monitoring of the transplanted stem cells; therefore, we confirmed the direct incorporation and differentiation of SPIO into the hepatocyte-like transplanted stem cells by detecting human tyrosine aminotransferase (TAT), well-known enzymatic marker for hepatocyte-specific differentiation.
Lee, Jong Hoon;Lee, Kuk Han;Kim, Min Ho;Kim, Jun Pyo;Lee, Seung Jae;Yoon, Jinah
Archives of Plastic Surgery
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v.39
no.6
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pp.593-599
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2012
Background This study aimed to investigate the possibility of isolating mesenchymal stem cells (MSCs) from human thigh adipose tissue and the ability of human thigh adipose stem cells (HTASCs) to differentiate into hepatocytes. Methods The adipose-derived stem cells (ADSCs) were isolated from thigh adipose tissue. Growth factors, cytokines, and hormones were added to the collagen coated dishes to induce the undifferentiated HTASCs to differentiate into hepatocyte-like cells. To confirm the experimental results, the expression of hepatocyte-specific markers on undifferentiated and differentiated HTASCs was analyzed using reverse transcription polymerase chain reaction and immunocytochemical staining. Differentiation efficiency was evaluated using functional tests such as periodic acid schiff (PAS) staining and detection of the albumin secretion level using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Results The majority of the undifferentiated HTASCs were changed into a more polygonal shape showing tight interactions between the cells. The differentiated HTASCs up-regulated mRNA of hepatocyte markers. Immunocytochemical analysis showed that they were intensely stained with anti-albumin antibody compared with undifferentiated HTASCs. PAS staining showed that HTASCs submitted to the hepatocyte differentiation protocol were able to more specifically store glycogen than undifferentiated HTASCs, displaying a purple color in the cytoplasm of the differentiated HTASCs. ELISA analyses showed that differentiated HTASCs could secrete albumin, which is one of the hepatocyte markers. Conclusions MSCs were islolated from human thigh adipose tissue differentiate to heapatocytes. The source of ADSCs is not only abundant abdominal adipose tissue, but also thigh adipose tissue for cell therapy in liver regeneration and tissue regeneration.
Mesenchymal stem cells (MSCs) hold great promise as a source of stem cells for therapy, but several limitations remain. We previously proposed that human embryonic stem cell-derived MSCs (hE-MSCs) expressing higher hepatocyte growth factor (HGF) levels were better alternatives, exhibiting greater expandability in vitro and greater therapeutic capacity in vivo. In this study, we aimed to examine the regulation of OCT4 expression in stem cells and to elucidate its underlying mechanism of transcriptional regulation of OCT4. We detected higher expression of OCT4, a stemness-associated gene in hE-MSCs than in human bone marrow-derived MSCs (hBM-MSCs). To determine the underlying regulatory mechanism of OCT4 expression in human MSCs (hMSCs), ELISA was performed using cell culture supernatants of hMSCs. Unlike fibroblast growth factor 2 or vascular endothelial growth factor, HGF was strongly expressed in hE-MSCs, also HGF treatment significantly increased OCT4 expression in hBM-MSC. Moreover, senescence-associated heterochromatin foci were decreased in HGF-treated hBM-MSCs compared with those in the HGF non-treated group. HGF increased Rb phosphorylation, and we confirmed the increased binding of E2F1 to the OCT4 promoter region at -233 from the transcription start point in the presence of HGF. Taken together, these results suggest that HGF-mediated regulation of OCT4 via E2F1 can help enhance the lifespan of hBM-MSCs during in vitro expansion.
Several studies have investigated the various effects of dexamethasone (Dex) on the proliferation and differentiation of mesenchymal stem cells (MSCs). Previously, we reported that co-treatment with L-ascorbic acid 2-phosphate and fibroblast growth factor (FGF)-2 maintained differentiation potential in MSCs through expression of hepatocyte growth factor (HGF). In this study, we investigated the effects of co-treatment with FGF-2 and Dex on the proliferation and differentiation potential of MSCs during a 2-month culture period. Co-treatment with FGF-2 and Dex increased approximately a 4.7-fold higher accumulation rate of MSC numbers than that by FGF-2 single treatment during a 2-month culture period. Interestingly, co-treatment with FGF-2 and Dex increased expression of HGF and maintained adipogenic differentiation potential during this culture period. These results suggest that co-treatment with FGF-2 and Dex preserves the proliferation and differentiation potential during long-term culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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