The diacylhydrazine insecticides, methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide are new-generation insecticides. These insecticides induce premature molting and cause the death of insects by mimicking their hormone. Also, these insecticides have already been widely used for vegetables planting in worldwide. Highperformance liquid chromatography (HPLC) is the most widely used procedure for determination of each compound residues in crops. However, simultaneous analysis method of these diacylhydrazine insecticides was not reported. The purpose of this study is to develop a simultaneous determination procedure of methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide residue in crops using HPLC-UVD/MS method. These insecticide residues were extracted with acetone from representative samples of five raw products which comprised hulled rice, soybean, apple, pepper, and Chinese cabbage. The extract was diluted with saline water, and dichloromethane partition was followed to recover these insecticides from the aqueous phase. Florisil column chromatography was additionally employed for final cleanup of the extracts. The analytes were quantitated by HPLCUVD/MS, using a $C_{18}$ column. The crops were fortified with each insecticide at two levels per crop. Mean recoveries ranged from 89.0 to 104.8% in five representative agricultural commodities. The coefficients of variation were less than 3.9%. Quantitative limits of methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide were 0.04 mg/kg in crop samples. A HPLC-UVD/MS with selected-ion monitoring was also provided to confirm the suspected residues. The proposed simultaneous analysis method was reproducible and sensitive enough to determine the residues of methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide in agricultural commodities.
The structures of molecular species of galactolipids, such as monogalactosyl diacylglycerol (MGDG) and digalactosyl diacylglycerol (DGDG), isolated from wheat flour have been investigated using negative-ion electrospray ionization (ESI) mass spectrometry interfaced with high performance liquid chromatography (HPLC). According to the result of HPLC analysis, MGDG and DGDG were found to consist of mixtures of five and four molecular species, respectively. The galactolipids have been also analyzed to determine their fatty acid compositions, using HPLC/ESI-MS combined with in-source (or cone voltage) fragmentation. HPLC/ ESI-MS is very useful for one-step analysis of mixtures of galactolipids with a small sample quantity. Especially, the carboxylate anions produced in in-source fragmentations of the negative-ion of each component separated by HPLC provide valuable information on the composition of its fatty acyl chains.
For evaluating the quality of ginseng, simple and fast analysis methods are needed to determine the ginsenoside content of the ginseng products. The aim of this study was therefore to optimize conditions for fast analysis of the ginsenosides, the active ingredients in extracts of Korean red ginseng. When tandem HPLC mass spectrometry (HPLC-MS/MS) was used, four forms of ginsenoside, Rb1, Rb2, Rc, and Re, were readily separated in seven minutes using a gradient mobile phase (acetonitrile and water containing acetic acid). This is the shortest separation time reported among the studies of major ginsenoside analysis. When gradient HPLC with UV detection was used, the detection limit was high, but separation of these four ginsenosides required 25 minutes using acetonitrile and water containing formic acid as a mobile phase. HPLC-MS/MS was able to separate ginsenoside Rg1 easily regardless of the mobile phase condition, but the HPLC-UV could not separate Rg1 because acetonitrile concentration in the mobile phase had to be maintained below 20%. Ginsenoside peaks were clearer and had more sensitive detection limits when Korean red ginseng extract was analyzed by the HPLC-MS/MS, but the UV detection was useful for chromatographic fingerprinting of all four major ginsenosides of the extract: Rb1, Rb2, Rc, and Re. Extracts were found to contain 2.17 mg, 1.51 mg, 1.29 mg, and 0.46 mg of ginsenoside Rb1, Rb2, Rc, Re, respectively, per gram weight. The ratios of each ginsenoside in the extracts were 1.0 : 0.7 : 0.6 : 0.2, respectively. Taken together, the results indicate that HPLC-MS/MS spectrometry could be the most useful method for rapid analysis of even small amounts of major ginsenosides, while HPLC with UV detection could also be used for rapid analysis of major ginsenosides and for quality control of ginseng products.
Kim, Jin-Hee;Park, So-Young;Lim, Hyun-Kyun;Park, Ah-Yeon;Kim, Ju-Sun;Kang, Sam-Sik;Youm, Jeong-Rok;Han, Sang-Beom
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.28
no.7
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pp.1187-1194
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2007
The three major active isoflavonoids (calycosin-7-O-β -glucoside, isomucronulatol 7-O-β-glucoside, formononetin) and two main saponins (astragaloside I, astragaloside IV) in an extract of Radix Astragali were determined using rapid, sensitive, reliable HPLC/UV and LC-ESI-MS/MS methods. The separation conditions employed for HPLC/UV were optimized using a phenyl-hexyl column (4.6 × 150 mm, 5 μm) with the gradient elution of acetonitrile and water as the mobile phase at a flow rate of 1.0 mL/min and a detection wavelength of 230 nm. The specificity of the peaks was determined using a triple quadrupole tandem mass spectrometer equipped with an electrospray ionization (ESI) source that was operated in multiple reaction monitoring (MRM) in the positive mode. These methods were fully validated with respect to the linearity, accuracy, precision, recovery and robustness. The HPLC/UV method was applied successfully to the quantification of three major isoflavonoids in the extract of Radix Astragali. The results indicate that the established HPLC/UV and LC-ESI-MS/MS methods are suitable for the quantitative analysis and quality control of multi-components in Radix Astragali.
Five triterpenic acids as marker compounds were extracted and isolated from Prunellae Spica by column chromatography and reversed-phase high-performance liquid chromatography (HPLC), and their purity was determinated by HPLC (purity ${\geq}90%$). Molecular weight and elemental compositions of the five marker compounds were determined by fast atom bombardment high-resolution mass spectrometry (FAB-HRMS). The structural determination of the five marker compounds was carried out fast atom bombardment collision-induced dissociation tandem mass spectrometry (FAB-CID-MS/MS). The collision-induced dissociation (CID) of protonated molecules $[M+H]^+$ and deprotonated molecules $[M-H]^-$ produced diverse product ions due mainly to retro Diels-Alder reaction (RDA), dehydration and decarboxylation. Moreover, the CID-MS/MS spectra of the $[M-H]^-$ ions were observed charge-remote fragmentation (CRF) patterns. On the basis of interpretation of CID-MS/MS spectra, structural elucidation of triterpenic acids isolated from Prunellae Spica was clearly performed.
Quercetin is a major flavonoid present in onions, which acts as an antioxidant. Quercetin exists both as a free compound and conjugated with carbohydrates, primarily as glucosides in onion. Aged black onion was made through a 30 day aging process in which the onions were kept in an environment of $60^{\circ}C$ and high humidity (90% RH). Quercetin and quercetin glucosides were assayed in onion bulbs before and after the aging process, using high performance liquid chromatography-electrospray ion trap mass spectrometry (HPLC-ESI/MS/MS). Quercetin mono- and diglucosides were identified in fresh onion bulbs, whereas quercetin aglycone was the only form present in aged black onion bulbs. These findings indicate that the quercetin mono- and di-glucosides present in fresh onions undergo complete deglycosylation during the aging process. Such profiling will provide a rapid method that can be used to assess changes in the two major quercetin glycosides during the aging process of onion bulbs.
We developed analytical methods using high performance chromatography (HPLC) and liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) for the simultaneous determination of 80 unapproved compounds in dietary supplements. The target compounds for analysis were unapproved ingredients (e.g., pharmaceuticals) that have potential adverse effects on consumers owing to accidental misuse, overuse, and interaction with other medication in dietary supplement. Two analytical methods were tested to identify the optimal validation results according to AOAC guideline. As a result, limit of quantification (LOQ) was 0.14-0.5 ㎍ mL-1; linearity (r2) was ≥ 0.99; accuracy (expressed as recovery) was 78.9-114%; precision (relative standard deviation) was ≤ 4.28% in the HPLC method. In the LC-MS/MS method, LOQ was 0.01-2 ng mL-1, linearity (r2) was ≥0.98, accuracy was 71.7-119%; precision was ≤ 12.5%. The developed methods were applied to 51 dietary supplements collected from 2019 to 2021 through MFDS alert system. Based on our previous monitoring study, major compounds were icariin, sibutramine, yohimbine, sildenafil, tadalafil, sennosides (A, B), cascarosides (A, B, C, D), and phenolphthalein. In this study, we re-analyzed samples of detected compounds, and evaluated the statistical difference using Bland-Altman analysis to compare two analytical approaches between HPLC and LC-MS/MS. These results showed a good agreement between two methods that can be used to monitor the unapproved ingredients in dietary supplements. The developed two methods are complementarily suitable for monitoring the adulteration of 80 unapproved compounds in dietary supplements.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.35
no.3
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pp.353-358
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2006
Flavonoid and limonoid compounds were determined by HPLC on the methanol and ethanol extracts from citron seeds. The quantities of the compounds in these categories were higher in the ethanol extract than methanol extract. The types of these compounds were detected in larger numbers in the ethanol extract. The content of limonin was the largest in both methanol and ethanol extract among the detectable compounds ; 140.34 mg/100g and 170.98 mg/100g, respectively, and the contents of other compounds, caffeic acid, naringin, lutin, nomilin, were found in large amount in this order. The molecular weights of forty two compounds in ethanol extract were determined with mass spectrums and extracted ion current chromatograms by HPLC/MS.
Ahn, Kyung-Geun;Kim, Gyeong-Ha;Kim, Gi-Ppeum;Kim, Min-Ji;Hwang, Young-Sun;Hong, Seung-Beom;Lee, Young Deuk;Choung, Myoung-Gun
The Korean Journal of Pesticide Science
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v.18
no.4
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pp.321-329
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2014
This experiment was conducted to establish an analytical method for residues of amisulbrom, as recently developed an oomycete-specific fungicide showing inhibition of fungal respiration, in crops using HPLC-UVD/MS. Amisulbrom residue was extracted with acetonitrile from representative samples of five raw products which comprised apple, green pepper, kimchi cabbage, potato and hulled rice. The extract was diluted with 50 mL of saline water and directly partitioned into dichloromethane to remove polar co-extractives in the aqueous phase. For the hulled rice sample, n-hexane/acetonitrile partition was additionally employed to remove non-polar lipids. The extract was finally purified by optimized Florisil column chromatography. On an octadecylsilyl column in HPLC, amisulbrom was successfully separated from sample co-extractives and sensitively quantitated by ultraviolet absorption at 255 nm with no interference. Accuracy and precision of the proposed method was validated by the recovery test on every crop samples fortified with amisulbrom at 3 concentration levels per crop in each triplication. Mean recoveries ranged from 85.3% to 105.6% in five representative agricultural commodities. The coefficients of variation were all less than 10%, irrespective of sample types and fortification levels. Limit of quantitation (LOQ) of amisulbrom was 0.04 mg/kg as verified by the recovery experiment. A confirmatory method using LC/MS with selected-ion monitoring technique was also provided to clearly identify the suspected residue. The proposed method was sensitive, reproducible and easy-to-operate enough to routinely determine the residue of amisulbrom in agricultural commodities.
Momilactones A and B, the major phytotoxins and phytoalexins in rice plants, were quantified by a HPLC-APCI-MS-MS (APCI-MS-MS) system under multiple reaction monitoring conditions. Since MA and MB were found to be easily extracted with water, these phytotoxic compounds may affect germination and growth of other plant species when the rice straws were left in the fields.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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