Kim, Jin-Woo;Park, Hyo-Jin;Jung, Jae-Min;Yang, Seul-Gi;Kim, Min-Ji;Kim, In-Su;Jegal, Ho-Geun;Koo, Deog-Bon
Journal of Embryo Transfer
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v.33
no.4
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pp.287-296
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2018
Ganglioside GM3 is known as an inhibition factor of cell differentiation and proliferation via inhibition of epidermal growth factor receptor (EGFR) phosphorylation. Our previous study showed that the exogenous ganglioside GM3 reduced the meiotic maturation of porcine oocytes and induced apoptosis at 44 h of in vitro maturation (IVM). However, the role of ganglioside GM3 in the relationship between EGFR signaling and apoptosis during porcine oocyte maturation has not yet been studied. First, porcine cumulus-oocyte complexes (COCs) were cultured in the NCSU-23 medium with exogenous ganglioside GM3 according to maturation periods (non-treated, only IVM I: 0 - 22 h, only IVM II: 22 - 44 h and IVM I & II: 0 - 44 h). We confirmed that the proportion of germinal vesicle breakdown (GVBD) increased significantly in the IVM I treated group than in the control group. We also confirmed that the meiotic maturation until M II stage and polar body formation decreased significantly in the only IVM I treated group. Cumulus cell expansion and mRNA levels of the expansion-related factors (HAS2, TNFAIP6 and PTX3) decreased significantly in the IVM I treated group than in the control group. Protein levels of EGFR, p-EGFR, ERK1/2, and p-ERK1/2 decreased significantly in the GM3-treated groups, during the IVM I period. In addition, cellular apoptosis, determined using TUNEL assay, and protein levels of Cleaved caspase 3, were increased significantly in the GM3-treated COCs during the IVM I period. Based on these results, ganglioside GM3 exposure of porcine COCs during the IVM I period reduced meiotic maturation and cumulus cell expansion via inhibition of EGFR activity in pigs.
This study was carried out to verify the incidence of oocytes when vitrified at various maturation stages. Bovine cumulus-oocyte complexes were recovered from ovaries at a slaughter and then divided into five groups: control group(unvitrified oocytes), 0 hr. group(composed of oocytes vitrified before the onset of maturation) and 10, 14, and 20 hrs groups (vitrified respectively at 10, 14 and 20 hrs after the onset of maturation). (omitted)
Objective: This study aimed to evaluate the differences in cephalometric characteristics and skeletal maturation in girls with central precocious puberty (CPP) via lateral and hand-wrist radiographs. We also aimed to identify the indicators that are most effective for determining skeletal maturity in these patients. Methods: The study included 70 Korean girls (mean age, 8.5 ± 0.5 years) diagnosed with CPP at the Department of Pediatrics, and 48 normal healthy age-matched girls who visited the Department of Orthodontics and had no history of hormone treatment or growth problems. Skeletal maturation was evaluated using lateral cephalometric and hand-wrist radiographs using cervical vertebrae maturation indicators (CVMI) and skeletal maturity indicators (SMI). Results: The mean mandibular plane angle was smaller in the CPP group than in the control group (35.8° ± 4.9° vs. 39.0° ± 6.5°), resulting in greater posterior facial height (p = 0.003). SMI was significantly greater in the CPP group (3.5 ± 1.4 vs. 2.0 ± 1.0) than in the control group (p = 0.001) and was significantly associated with CPP (r = 0.492; p = 0.001), whereas CVMI was not. Conclusions: In comparison with the control group, the CPP group exhibited a smaller mandibular plane angle, greater posterior facial height, and greater skeletal maturation. SMI may be more suitable than CVMI for determining skeletal maturation in CPP. Hand-wrist radiography is recommended in addition to lateral cephalogram for predicting growth in girls with CPP.
Supplementation of maturation medium with additional granulosa cells has beneficial effect on in vitro maturation of bovine follicular oocytes and their subsequent cleavage and development in vitro. However, maturation system using granulosa cells have some disadvantages that collection of granulosa cells is cumbersome and metabolic activity of the cells is variable according to ovarian cycle or follicular size. We hypothesized that bovine immsture oocytes matured without granulosa cell coculture can fertilize and develop normally if the medium volume per oocyte is reduced during in vitro maturation. Immature oocytes were matured for 24 hours in a TCM199 containing 10% fetal calf serum, anterior pitultary hormone (0.02 AU /ml Antrinⓡ) and estradiol with or without granulosa cells in vitro. In Group 1, 35 to 40 oocytes were matured in a well of 4-well plastic dish containing 500 $\mu$l of maturation medium and granulosa cells, and 9 to 10 oocytes were matured in a 50-$\mu$l drop of maturation medium without granulosa cells in Group 2. After maturation, oocytes were coincubated with sperm for 30 hours in a modified Tyrode's medium (IVF). Inseminated oocytes were cultured in a microdrop (30 $\mu$l) of a synthetic oviduct fluld medium (SOFM) containing BSA, Minimum Essential Medium essential and non-essential amino acids for 9 days. As a preliminary experiment, we investigated the beneficial effect of granulosa cells during maturation on subsequent cleavage and development using the same type of culturedishes (4-well dish). Granulosa cells could not increase embryo cleavage after fertilization but significantly improved (p<0.05) embryo development to expanding blastocyst (Table1 and 2). In Group 1, 68 and 80% of inseminated oocytes have cleaved at 30 hours and 2 days after IVF, respectively, which is similar (p>0.05) to the result of Group 2 (69% at 30 hours and 78% at 2 days after IVF). The oocytes in Group 2 showed 21 and 11% of developmental rates to expanding and hatching blastocysts, respectively, which was not significantly different (p>0.05) from those (20 and 10%, respectively) of oocytes in Group 1. In conclusion, it has been clarified that a microdrop culture system without granulosa cells for in vitro maturation can support bovine embryonic development to blastocyst in vitro as readily as a granulosa cell coculture system.
Objective: In order to increase the number of mature oocytes usable for intracytoplasmic sperm injection (ICSI), we aimed to investigate the effect of co-culturing granulosa cells (GCs) on human oocyte maturation in vitro, the fertilization rate, and embryo development. Methods: A total of 133 immature oocytes were retrieved and were randomly divided into two groups; oocytes that were cultured with GCs (group A) and oocytes that were cultured without GCs (group B). After in vitro maturation, only oocytes that displayed metaphase II (MII) underwent the ICSI procedure. The maturation and fertilization rates were analyzed, as well as the frequency of embryo development. Results: The mean age of the patients, their basal levels of follicle-stimulating hormone, and the number of oocytes recovered from the patients were all comparable between the two study groups. The number of oocytes that reached MII (mature oocytes) was 59 out of 70 (84.28%) in group A, compared to 41 out of 63 (65.07%) in group B (p=0.011). No significant difference between fertilization rates was found between the two study groups (p=0.702). The embryo development rate was higher in group A (33/59, 75%) than in group B (12/41, 42.85%; p=0.006). The proportion of highest-quality embryos and the blastocyst formation rate were significantly lower in group B than in group A (p=0.003 and p<0.001, respectively). Conclusion: The findings of the current study demonstrate that culturing immature human oocytes with GCs prior to ICSI improves the maturation rate and the likelihood of embryo development.
Objective: The aims of this study were to investigate whether fertilization could induce the resumption of meiosis in mouse oocytes arrested at metaphase I (MI) after in vitro maturation (IVM), and to investigate the effect of $Ca^{2+}$ chelator treatment at the time of fertilization on the transition from MI to metaphase II (MII). Methods: MII-stage and arrested MI-stage mouse oocytes after IVM were fertilized, and then embryonic development was monitored. Blastocysts from each group were transferred into 2.5 days post-coitum pseudo-pregnant ICR mice. MI oocytes after IVM were treated with a $Ca^{2+}$ chelator to investigate the effect of $Ca^{2+}$ oscillations on their maturation. Results: As insemination time increased, the number of oocytes in the MI group that reached the MII stage also increased. The blastocyst rates and total cell numbers in the MII group were significantly higher than in the MI group. No pregnancy occurred in the MI group, but 10 pregnancies were achieved (10 of 12) in the MII group. The proportion of MI oocytes that matured to MII oocytes after fertilization was significantly higher in the non-treated group than in the $Ca^{2+}$ chelator-treated group. Conclusion: The findings that a higher proportion of MI-arrested oocytes progressed to MII after fertilization and that the MI-to-MII transition was blocked by $Ca^{2+}$ chelator treatments before fertilization indicate that the maturation of MI oocytes to MII oocytes is associated with intracellular $Ca^{2+}$ oscillations driven by fertilization.
Sphingosine-1-phosphate(S1P) is one of the sphingolipid metabolites which affect a variety of cellular processes including the proliferation, differentiation, growth, survival, migration and gene expression. The present study was undertaken to investigate the effect of SIP on nuclear maturation of porcine oocytes. In vitro maturation frequency of porcine oocytes were compared in three different media; group Ⅰ: NCSU23+0.1% PVA, group Ⅱ: NCSU23+10% PFF(porcine follicular fluid), and group Ⅲ: NCSU23+10% PFF+10 ng/㎖ EGF+2.5 mM β-mercaptoethanol. Each group containing 0.1 ㎎/㎖ cysteine was divided into 4 sub-groups of SIP concentration(0, 50, 500 and 5000nM). Porcine oocytes were incubated in each maturation medium supplemented with hormones(10 IU/㎖ PMSG and 10 IU/㎖ hCG) for 22h and then further cultured in the same medium without the hormones for 22h. After completion of in vitro maturation, the oocytes were fixed and stained to examine nuclear maturation by using a rapid stain method. In the group Ⅰ, the proportions of metaphase Ⅱ stage among oocytes cultured in 0nM(control), 50 nM, 500nM and 5000nM S1P were 45.5%, 66.7%, 56.6% and 48.7%, respectively. (omitted)
This study was carried out to examine the influence of minimum essential medium (MEM) vitamins supplementation to in vitro maturation medium and in vitro culture medium on the development of porcine embryos. Porcine embryo development was investigated following cultivation in both in vitro maturation and culture medium with the supplementation of MEM vitamins (0, 0.1, 0.2 and 0.4%) using immature oocytes collected from the ovary of prepubertal gilts. Embryo development was observed and the total cell number in each blastocyst generated under the culture conditions was quantified following supplementation of the medium. The embryonic development rate of the blastocyst and hatched blastocyst was higher, but not significantly so, when 0.4% MEM vitamins were supplemented to the in vitro maturation medium of the porcine oocyte. Interestingly, the total number of cells in the blastocyst was significantly higher in the in vitro maturation MEM vitamins supplemented group compared to either the untreated group or the group which had MEM vitamins supplemented to both in vitro maturation and in vitro culture medium simultaneously (p<0.05). Therefore, the supplementation of 0.4% MEM vitamins to the in vitro mature medium has a beneficial effect on the embryonic development of in vitro produced blastocysts derived from the immature porcine oocytes.
Kim, Yun-Jung;Lee, Sang-Hee;Jung, Soo-Jung;Park, Choon-Keun
Journal of Magnetics
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v.19
no.3
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pp.241-247
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2014
The objective of this study was to study the effect of magnetized water on porcine cumulus cell-oocyte complexes (COCs). Oocytes obtained from female pig were cultured in a medium magnetized at 0, 2000, 4000, and 6000 Gauss (G) for 5 minutes using the neodymium magnet. Subsequently, intracellular hydrogen peroxide ($H_2O_2$) concentration, glutathione (GSH) activity, oocyte membrane integrity, anti-apoptosis factor Bcl-xL expression, and nuclear maturation were analyzed. The intracellular $H_2O_2$ levels in COCs cultured for 44 hours were not significantly different among the variously magnetized samples. However, GSH activity were significantly higher in the magnetized samples compared to the 0 G sample. The Bcl-xL mRNA expression in COCs cultured for 44 hours was higher in the 4000 G sample than other treatment groups. Membrane damage in COCs cultured for 22 and 44 hours was significantly lower in 4000 G group than control group. On the other hand, nuclear stages as maturation indicator significantly increased in 2000, 4000, and 6000 G groups compared to 0 G group. These results indicate that incubation of porcine oocytes and cumulus cells in magnetized medium improves intracellular GSH levels, membrane integrity and nuclear maturation, and inhibits apoptosis in vitro.
The associations between dietary, body composition and sexual maturation were investigated among Korean girls of pubertal age in this study. Dietary intakes were collected by 3 day food records, body compositions were measured by bio-impedence analyzer and sexual maturation stages were determined with a self-administrated questionnaire using Tanner stages in 1,114 girls 9-13 years of age. Girls were divided into early maturation (EM) and late maturation (LM), based on the comparative maturation stages of breast and pubic hair among the same age groups by months. Subjects were excluded if their stage of maturation could not be divided into early and late groups. EM and LM groups consisted of 42.8% and 38.9% of subjects by breast stage and 67.4% and 22.8% by pubic hair stage. Girls in LM group had significantly lower in height, weight and bone mineral contents (p < 0.05). When nutrient densities of average daily intake of the two groups were compared, folate density was significantly higher among the LM group of breast stages (p < 0.01), and Ca, P, K, Vit. $B_1$, Vit. $B_2$ and folate densities were significantly higher among the LM group of pubic hair stages (p < 0.05). These results show that intakes of some micronutrients differ between children with faster and slower sexual maturation velocities at early pubertal stages. More longitudinal studies are needed to confirm whether such differences are consistent throughout the pubertal period.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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