Striatum plays a crucial role in the movement control and habitual learning. It receives an information from wide area of cerebral cortex as well as an extensive serotonergic (5-hydroxytryptamine, 5-HT) input from raphe nuclei. In the present study, the effects of 5-HT to modulate synaptic transmission were studied in the rat corticostriatal brain slice using in vitro extracellular recording technique. Synaptic responses were evoked by stimulation of cortical glutamatergic inputs on the corpus callosum and recorded in the dorsal striatum. 5-HT reversibly inhibited coticostriatal glutamatergic synaptic transmission in a dose-dependent fashion (5, 10, 50, and $10{\mu}M$), maximally reducing in the corticostriatal population spike (PS) amplitude to $40.1{\pm}5.0$% at a concentration of $50{\mu}M$ 5-HT. PSs mediated by non-NMDA glutamate receptors, which were isolated by bath application of the NMDA receptor antagonist, d,l-2-amino-5-phospohonovaleric acid (AP-V), were decreased by application of $50{\mu}M$ 5-HT. However, PSs mediated by NMDA receptors, that were activated by application of zero $Mg^{2+}$ aCSF, were not significantly affected by $50{\mu}M$ 5-HT. To test whether the corticostriatal synaptic inhibitions by 5-HT might involve a change in the probability of neurotransmitter release from presynaptic nerve terminals, we measured the paired-pulse ratio (PPR) evoked by 2 identical pulses (50 ms interpulse interval), and found that PPR was increased ($33.4{\pm}5.2$%) by 5-HT, reflecting decreased neurotransmitter releasing probability. These results suggest that 5-HT may decrease neurotransmitter release probability of glutamatergic corticostriatal synapse and may be able to selectively decrease non-NMDA glutamate receptor-mediated synaptic transmission.
Spinal nerve injury causes mechanical allodynia and structural imbalance of neurotransmission, which were typically associated with calcium overload. Storeoperated calcium entry (SOCE) is considered crucial elements-mediating intracellular calcium homeostasis, ion channel activity, and synaptic plasticity. However, the underlying mechanism of SOCE in mediating neuronal transmitter release and synaptic transmission remains ambiguous in neuropathic pain. Neuropathic rats were operated by spinal nerve ligations. Neurotransmissions were assessed by whole-cell recording in substantia gelatinosa. Immunofluorescence staining of STIM1 with neuronal and glial biomarkers in the spinal dorsal horn. The endoplasmic reticulum stress level was estimated from qRT-PCR. Intrathecal injection of SOCE antagonist SKF96365 dose-dependently alleviated mechanical allodynia in ipsilateral hind paws of neuropathic rats with ED50 of 18 ㎍. Immunofluorescence staining demonstrated that STIM1 was specifically and significantly expressed in neurons but not astrocytes and microglia in the spinal dorsal horn. Bath application of SKF96365 inhibited enhanced miniature excitatory postsynaptic currents in a dosage-dependent manner without affecting miniature inhibitory postsynaptic currents. Mal-adaption of SOCE was commonly related to endoplasmic reticulum (ER) stress in the central nervous system. SKF96365 markedly suppressed ER stress levels by alleviating mRNA expression of C/ EBP homologous protein and heat shock protein 70 in neuropathic rats. Our findings suggested that nerve injury might promote SOCE-mediated calcium levels, resulting in long-term imbalance of spinal synaptic transmission and behavioral sensitization, SKF96365 produces antinociception by alleviating glutamatergic transmission and ER stress. This work demonstrated the involvement of SOCE in neuropathic pain, implying that SOCE might be a potential target for pain management.
Rubio, Maria D.;Drummond, Jana B.;Meador-Woodruff, James H.
Biomolecules & Therapeutics
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제20권1호
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pp.1-18
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2012
Schizophrenia is a devastating psychiatric illness that afflicts 1% of the population worldwide, resulting in substantial impact to patients, their families, and health care delivery systems. For many years, schizophrenia has been felt to be associated with dysregulated dopaminergic neurotransmission as a key feature of the pathophysiology of the illness. Although numerous studies point to dopaminergic abnormalities in schizophrenia, dopamine dysfunction cannot completely account for all of the symptoms seen in schizophrenia, and dopamine-based treatments are often inadequate and can be associated with serious side effects. More recently, converging lines of evidence have suggested that there are abnormalities of glutamate transmission in schizophrenia. Glutamatergic neurotransmission involves numerous molecules that facilitate glutamate release, receptor activation, glutamate reuptake, and other synaptic activities. Evidence for glutamatergic abnormalities in schizophrenia primarily has implicated the NMDA and AMPA subtypes of the glutamate receptor. The expression of these receptors and other molecules associated with glutamate neurotransmission has been systematically studied in the brain in schizophrenia. These studies have generally revealed region- and molecule-specifi c changes in glutamate receptor transcript and protein expression in this illness. Given that glutamatergic neurotransmission has been implicated in the pathophysiology of schizophrenia, recent drug development efforts have targeted the glutamate system. Much effort to date has focused on modulation of the NMDA receptor, although more recently other glutamate receptors and transporters have been the targets of drug development. These efforts have been promising thus far, and ongoing efforts to develop additional drugs that modulate glutamatergic neurotransmission are underway that may hold the potential for novel classes of more effective treatments for this serious psychiatric illness.
Striatum is involved in the control of movement and habitual memory. It receives glutamatergic input from wide area of the cerebral cortex as well as an extensive serotonergic (5-hydroxytryptamine, 5-HT) input from the raphe nuclei. In our study, the effects of 5-HT on synaptic transmission were studied in the rat corticostriatal brain slice using in vitro whole-cell recording technique. 5-HT inhibited the amplitude as well as frequency of spontaneous excitatory postsynaptic currents (sEPSC) significantly, and neither ${\gamma}-aminobutyric$ acid (GABA)A receptor antagonist bicuculline (BIC), nor $N-methyl-_{D}-aspartate$ (NMDA) receptor antagonist, $_{DL}-2-amino-5-phosphonovaleric$ acid (AP-V) could block the effect of 5-HT. In the presence non-NMDA receptor antagonist, 2,3-dioxo-6-nitro-1,2,3,4-tetrahydrobenxo[f] quinoxaline-7-sulfonamide (NBQX), the inhibitory effect of 5-HT was blocked. We also figured out that 5-HT change the channel kinetics of the sEPSC. There was a significant increase in the rise time during the 5-HT application. Our results suggest that 5-HT has an effect on both pre- and postsynaptic site with decreasing neurotransmitter release probability of glutamate and decreasing the sensitivity to glutamate by increasing the rise time of non-NMDA receptor mediated synaptic transmission in the corticostriatal synapses.
Striatum has important roles in motor control, habitual learning and memory. It receives glutamatergic inputs from neocortex and thalamus, and dopaminergic inputs from substantia nigra. We examined effects of dopamine (DA) on the corticostriatal synaptic transmission using in vitro extracellular recording technique in rat brain corticostriatal slices. Synaptic responses were elicited by stimulation of cortical glutamatergic inputs on the corpus callosum and recorded in the dorsal striatum. Corticostriatal population spike (PS) amplitudes were decreased ($39.4{\pm}7.9$%) by the application of $100{\mu}M$ DA. We applied receptor subtype specific agonists and antagonists and characterized the modulation of corticostriatal synaptic transmission by different DA receptor subtypes. $D_2$ receptor agonist (quinpirole), antagonist (sulpiride), and $D_1$ receptor antagonist (SKF 83566), but not $D_1$ receptor agonist (SKF 38393), induced significantly the reduction of striatal PS. Pretreatment neither with SKF 83566 nor sulpiride significantly affected corticostriatal synaptic inhibition by DA. However, the inhibition of DA was completely blocked by pretreatment with mixed solution of both SKF 83566 and sulpiride. These results suggest that DA inhibits corticostriatal synaptic transmission through both $D_1$ and $D_2$ receptors in concert with each other.
Crosstalk between G-protein signaling and glutamatergic transmission within the brain reward circuits is critical for long-term emotional effects (depression and anxiety), cravings, and negative withdrawal symptoms associated with opioid addiction. A previous study showed that Regulator of G-protein signaling 4 (RGS4) may be implicated in opiate action in the nucleus accumbens (NAc). However, the mechanism of the NAc-specific RGS4 actions that induce the behavioral responses to opiates remains largely unknown. The present study used a short hairpin RNA (shRNA)-mediated knock-down of RGS4 in the NAc of the mouse brain to investigate the relationship between the activation of ionotropic glutamate receptors and RGS4 in the NAc during morphine reward. Additionally, the shRNA-mediated RGS4 knock-down was implemented in NAc/striatal primary-cultured neurons to investigate the role that striatal neurons have in the morphine-induced activation of ionotropic glutamate receptors. The results of this study show that the NAc-specific knock-down of RGS4 significantly increased the behaviors associated with morphine and did so by phosphorylation of the GluR1 (Ser831) and NR2A (Tyr1325) glutamate receptors in the NAc. Furthermore, the knock-down of RGS4 enhanced the phosphorylation of the GluR1 and NR2A glutamate receptors in the primary NAc/striatal neurons during spontaneous morphine withdrawal. These findings show a novel molecular mechanism of RGS4 in glutamatergic transmission that underlies the negative symptoms associated with morphine administration.
Mammalian brian contains substantial amounts of chelatable zinc in presynaptic vesicles of certain glutamatergic terminals. The synaptic zinc is released with intense neuronal activity, suggesting its role in synaptic transmission. However, in pathological conditions, zinc may get released too excessively, which may contribute to neuronal death as shown in cortical cultures.(omitted)
A-type $K^+$ ($I_A$) channels are transiently activated in the suprathreshold membrane potential and then rapidly inactivated. These channels play roles to control the neuronal excitability in pyramidal neurons in hippocampi. We here electrophysiologically tested if regulatory functions of $I_A$ channels might be targeted by acute activation of glutamatergic synaptic transmission in cultured hippocampal neurons(DIV 6~8). The application of high KCl in recording solutions(10 mM, 2 min) to increase presynaptic glutamate release, significantly reduced the peak of somatic $I_A$ without changes of gating kinetics. This indicates that neuronal excitation induced by the enhancement of synaptic transmission may process with distinctive signaling cascades to affect voltage-dependent ion channels in hippocampal neurons. Therefore, it is possible that short-lasting enhancement of synaptic transmission is functionally restricted in local synapses without effects on intracellular signaling cascades affecting a whole neuron, efficiently and rapidly enhancing synaptic functions in hippocampal network.
The effects of ethanol on corticostriatal synaptic transmission were examined, using extracellular recording and analysis of population spike amplitudes in rat brain slices, to study how acute ethanol intoxication impairs striatal function. Ethanol caused a decrease in population spike amplitudes in a dose dependent manner ($50{\sim}200mM$). Pretreatment with picrotoxin, a ${\gamma}-amino$ butyric acid $(GABA)_{A}$ receptor antagonist, increased the population spikes but ethanol (100 mM) was still effective in decreasing the population spikes under this condition. In the presence of $_{(DL)}-2-amino-5-phosphonovaleric$ acid (APV), N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor antagonist, the inhibitory action of ethanol on population spikes was not shown. These results suggest that ethanol inhibits the glutamatergic corticostriatal synaptic transmission through blockade of NMDA receptors.
Changes in the release and uptake of glutamate in cerebellar granule and glial cells of offspring of lead-exposed mothers were determined. In cultured cerebellar granule cells exposed to lead for 5 days, glutamate release was less influenced upon N-methyl-D-aspartate (NMDA) stimulation than that in the control. Although the NMDA-stimulated release of glutamate in cerebellar granule cells prepared from lead-exposed first generation pups was not different from that of the control group, the S-nitroso-N-acetylpenicillamine (SNAP)-stimulated release of glutamate in cerebellar granule cells obtained from lead-treated pups was less elevated than that in the control. Furthermore, in cerebellar granule cells obtained from lead-exposed second generations pups, glutamate release did not respond to both NMDA and SNAP stimulation. In cerebellar glial cells exposed to lead, the basal glutamate uptake was not changed. However, the L-trans-pyrollidine-2,4-dicarboxylic acid (PDC)-blocking effects was significantly reduced. In glial cells obtained from lead-exposed pups, the glutamate uptake was also less blocked by PDC than that in the control. Further decreases in PDC-blocking effects were observed in cerebellar glial cells obtained from lead-treated second generation pups compared to those from the control group. These results indicate that lead exposure induces the changes in the sensitivities of the glutamate release and uptake transporter. In addition, these results suggest that lead exposure might affect the intracellular signalling pathway and transmission in glutamatergic nervous system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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