• 한국미생물·생명공학회지
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• 제16권6호
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• pp.494-498
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• 1988

Starch로부터 직접적으로 ethanol을 발효 생산할 수 있는 새로운 효모균주의 개발을 목적으로 S. diastaticus의 glucoamylase gene을 cloning vector를 사용하지 않고 S. cerevisiae에 transformation시켜, soluble starch를 직접 발효 할 수 있는 transformants를 얻는데 성공하였으며 이들 중 glucoamylase 생성능이 가장 우수한 균주인 TSD-14를 전보에서 선별하였다. Transformant TSD-14의 glucoamylase 생성조건과 ethanol productivity를 parent strain과 비교 검토한 결과 이들 성질에 있어서 TSD-14는 donor인 S. diastaticus와 거의 유사하였다. 즉, 탄소원으로는 soluble starch가 균의 생육 및 효소생성에 가장 효과적이었으며 glucose, maltose 등은 균의 생육에는 효과적이었으나 효소생성은 저해하였다. 질소원으로 무기태 질소원에 비하여 유기태 질소원이 좋은 효과를 나타냈으며 특히, peptone과 yeast extract가 효과적이었다. 또한 금속염으로는 FeSO$_4$, MgSO$_4$, MnCl$_2$, NiSO$_4$등이 효과적이었으며 CoCl$_2$, HgCl$_2$, PbCl$_2$등은 오히려 균의 생육뿐만 아니라 효소생성을 크게 저해하였다. 한편, TSD-14의 ethanol productivity를 조사한 결과, 15% sucrose, soluble starch, liquefied potato starch 등에서 8.3% (v/v) , 4.8%(v/v), 7.5%(v/v)의 ethanol을 생성하여 각각 총당에 대해 84%, 45%, 70%의 발효율을 나타냈다.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제4권3호
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• pp.230-232
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• 1994

The enzymes $\alpha$-amylase and glucoamylase used in starch hydrolysis were found active in the supercritical carbon dioxide solvent Higher hydrolysis of starch sluny in supercritical $CO_2$ was achieved by operating the reactor for the first two hours with $\alpha$ -amylase and to subsequent addition of glucoamylase for continued hydrolysis.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제16권4호
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• pp.320-326
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• 1988

Aspergillus sp.로부터 추출한 glucoamylase를 Sephacryl S-200과 DEAE-Sephacel 이온교환 칼럼을 통과시킨 후, 2개의 Isozyme으로 분리하였다. 분리된 glucoamylase isozyme(GI, GII)의 효소학적특성을 각각 조사하였다. GI 및 GII isozyme의 활성최적 pH 및 온도는 pH4.5 및 $65^{\circ}C$였다. 분리된 효소는 pH 3-7 사이에서 안정했으며, 또한 55$^{\circ}C$ 이하에서 안정하였다. Hg$^{++}$는 효소 황성을 완전히 저해하였으나, 글리세롤은 효소의 안정성을 크게 증가시켰다. 효소반응의 활성화에너지는 GI의 경우 10,62 kcal/mole이었으며, GII의 경우에는 10.23kcal/mole이었다. GI isozyme의 기질에 대한 Km값은, 0.62% (soluble starch), 0.32% (dextrin), 1.03%(glycogen)이었으며, GII isozyme의 경우에는, 0.66%(soluble starch) 0.23%(dextrin), 그리고 0.14% (glycogen)이었다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제18권4호
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• pp.352-359
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• 1990

분쇄마찰매체효소반응계에서 glucoamylase와 Alpha-amylase의 보완작용에 의한 옥수수 생전분의 효소당화 mechanism을 규명코자, 분리.정제된 상기 효소의 혼합 비율에 따른 당화양상 및 생성당 조성, 전분입자 구조, 생전분입자의 particle size 분포, X-ray 회절양샹의 변화 등을 관찰하였다. 분쇄마찰매체 효소반응계에서도 효소를 분리하여 사용하였을 때보다 glucoamylase와 $\alpha$-amylase를 혼합사용할 경우 당화율이 크게 향상되었으며, 고순도의 glucose 생산에 적합한 두 효소의 혼합비율은 약 1:1-1:2(unit) 로 판명되었다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제16권6호
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• pp.489-493
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• 1988

Starch로부터 ethanol을 직접적으로 발효 생산할 수 있는 새로운 효모 균주를 개발하고자 glucoamylase 생성균으로 알려진 Saceharomyces diastaticus의 glucoamylase gene을 cloning vector를 사용하지 않고 S, cerevisiae에 transformation시켰다. Li$_2$SO$_4$, 처리로써 competent화 한 S, cerevisiae의 Intact cells을 recipient로 하여 BamHI으로 partial digestion한 S, diastaticus의 chromosomal DNA를 transformation시키고 starch를 유일한 탄소원으로 함유한 최소 배지상에서 starch 자화능을 marker로 하여 transformant를 선별한 결과, 8.5$\times$$10^{-7}$ 빈도로 transformant를 얻었다. Transformant의 특성을 recipient 및 donor와 비교하기 위해 copper resistance와 당 발효능을 조사한 결과, donor인 S, diastaticus와 동일한 성질로서 표현된 maltose와 starch 발효능을 제외하고는 800ppm 농도까지 생육 가능한 copper resistance와 galactose 발효능 등에 있어서는 recipent와 동일하게 나타났다. 또한 transformant가 생성하는 glucoamylase의 그 작용에 있어서의 최적온도와 최적pH를 조사하여 본 바 각각 pH5.0, 50C로서 donor의 glucoamylase와 동일함을 알 수 있었다.

• 한국식품영양과학회지
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• 제14권2호
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• pp.188-191
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• 1985

퇴비 숙성초기에 고온성 cellulose 분해이용균으로 분리된 Herpetosiphon geysericola CUM 317균주는 전분분해 효소인 ${\alpha}-amylase,\;{\beta}-amylase$ 및 glucoamylase를 모두 생성한다. 이 균을 사용하여 그 배양조건을 달리하여 각 amylase의 생성관계를 서로 비교한바 50℃의 밀기울 고체배지나 $40^{\circ}C$의 액체배지상에서 ${\beta}-amylase$는 배양초기 10시간만에 최대의 생성력가를 보였는 반면, ${\alpha}-amylase$와 glucoamylase는 30 내지 40시간 정도의 배양말기에 최대를 이루었다. Polypeptone을 함유한 액체배지에 탄소원의 첨가나 무기질소원의 첨가는 전반적으로 amylase들의 생성이 크게 저하되었으나 cellulose에 의해서 glucoamylase의 경우 150% 정도 증가되었다. 액체배지에 $CuSO_4$를 첨가해 줌으로서 ${\alpha}-amylase$만의 생성증가 효과를 얻었고 $CdSO_4$에 의하여 ${\beta}-amylase$만의 생성증가가 있었으며, 그리고 $CaCl_2$에 의하여 glucoamylase만의 증가효과가 있은 반면, 상대적으로 ${\beta}-amylase$의 급격한 감소가 일어났다. 이들 amylase들의 최적 효소생성 pH는 7.5였으며, 최적온도는 ${\alpha}-amylase$와 glucoamylase의 경우 $40^{\circ}C$였고 ${\beta}-amylase$는 $30^{\circ}C$였다.

• 미생물학회지
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• 제18권4호
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• pp.161-171
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• 1980

A mutant strain having increased productivity of both enzymes, protease and amylase, was obtained from A. flavus KU 153, isolatd from South Korea for its high protease production by successive ultra-violet light irradiation, Two glucoamylases from the mutant strain selected were purified from wheat branculture by successive salting out, followed by dialysis and column chromatography, and their characteristics were compared with those of the wild strain. Glucoamylase production of the mutant selected was increased about 3.3 times compared with the wild strain, and 2.1 times compared with the parental strain, ${\alpha}-amylase$ activity of the mutant selected was about 2 times hugher than that of the wild strain or the parental strain. Protease and cellulase productivities of the muant selected were all alike compared with those of the highly proteolytic mutant, the parental strain. Therefore, it was considered that the back mutation on the protease production did not occurred in the formation process of the glucoamylase producing mutant. Total activities of glucoamylase I and II from the mutant selected were 2.86 and 3.65 times higher compared with those from the wild strain, respectively. Considering the optimal pH-thermal stability and Km-Vmax value of glucoamylase I and II from both strains, wild and mutant, it was deduced that the characteristics of glucoamylase I and II from the wild strain did not altered during the mutation process. Therefore, it was concluded that the selected mutant did not induce the formation of another glucoamylase isozyme, or the changes in the characteristics of the glucoamylase, but induce the productivity of the same glucoamylase I and II by the action of regulatory gene.

• 환경위생공학
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• 제5권1호
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• pp.49-64
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• 1990

Glucoamylase from the culture filtrate of Aspergillus nicer was purified by ammonium sulfate precipitation, aceton precipitation, DEAE-cellulose ion exchange chromatography and Sephadex G-50 gel fillration. Glucoamylase was secreted into the medium upon growth on glucose, sucrose or a variety of other hexose sugars or hexose sugar polymers and little or no glucoamylase activity was found when glycerol or xylose was used as the carbon source. The optimum pH and temperature (or the maximum enzyme activity were found to be 5.0 and $50^{\circ}C$, respectively. The enzyme was considerably thermostable, for no loss of activity was observed when the enzyme was preincubated at $60^{\circ}C$ for 30 min. The enzyme activity was inhibited by 20 mM of $Hg^{2+}$, $Fe^{2+}$. The km value for starch was 0.045%.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제17권5호
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• pp.519-523
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• 1989

Aspergillus sp.로부터 glucoamylase를 생성키 위한 조건을 검토하였다. 곰팡이는 탄소원으로 soluble starch, 질소원으로 yeast extract를 사용했을 때 최대 효소생성을 얻을 수 있었다. 그리고, 탄소원 및 질소원의 농도에 따른 효소생성은 soluble starch를 5%, yeast extract를 1% 수준으로 사용했을 때 효소생성은 극대화하였다. 또한 배지의 초기 pH를 6.0, 그리고 배양온도를 28$^{\circ}C$로 유지했을 때 효소생성이 높았다. 고체배지를 사용했을 때에는, 밀기울 배지가 glucoamylase 생성을 위해서 가장 효과가 좋았다.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제24권12호
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• pp.1690-1698
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• 2014

Partial purification of glucoamylase from solid-state fermentation culture was, firstly, investigated by reverse micellar extraction (RME). To avoid back extraction problems, the glucoamylase was kept in the original aqueous phase, while the other undesired proteins/enzymes were moved to the reverse micellar organic phase. The individual and interaction effects of main factors (i.e., pH and NaCl concentration in the aqueous phase, and concentration of sodium bis-2-ethyl-hexyl-sulfosuccinate (AOT) in the organic phase) were studied using response surface methodology. The optimum conditions for the maximum recovery of the enzyme were pH 2.75, 100 mM NaCl, and 200 mM AOT. Furthermore, the optimum organic to aqueous volume ratio ($V_{org}/V_{aq}$) and appropriate number of sequential extraction stages were 2 and 3, respectively. Finally, 60% of the undesired enzymes including proteases and xylanases were removed from the aqueous phase, while 140% of glucoamylase activity was recovered in the aqueous phase and the purification factor of glucoamylase was found to be 3.0-fold.