Most of the wheat germ in cereal grains is removed during the milling process. Various physiological effects have been reported for bioactive substances in wheat germ such as phenolic acids and flavonoids. In this study, the antioxidant and anti-adipogenic effects of ethanol extracts from wheat germ (WGE) and wheat germ fermented with Aspergillus oryzae (F-WGE) were investigated in HepG2 and 3T3-L1 cells. The anti-oxidant activity of F-WGE was demonstrated by a dose-dependent increase in the enhanced scavenging capacity of hydroxyl radicals and $Cu^{2+}$-chelating activity compared to WGE. WGE and F-WGE treatment at doses between 10 and $400{\mu}g/mL$ did not affect the viability of HepG2 and 3T3-L1 cells. Intracellular ROS levels from $Cu^{2+}$-induced oxidative stress were significantly decreased by F-WGE treatment in HepG2 cells compared to WGE. Lipid accumulation was increased in 3T3-L1 adipocytes by $100{\mu}M$$Fe^{2+}$ treatment, but the accumulation was strongly inhibited by $100{\mu}g/mL$ of WGE and F-WGE treatment. These results suggest that changes in bioactive substances during the fermentation of wheat germ can potentiate scavenging activities against transition metal-induced oxidative stress and lipid accumulation in 3T3-L1 adipocytes. Therefore, we propose that F-WGE is a novel food materials and provided scientific evidences for its efficacy in the development of functional foods.
Stem cells are progenitor cells that are capable of self-renewal and differentiation into various cells. Especially, pluripotent stem cells (PSCs) have in vivo and in vitro differentiation capacity into three germ layers and can proliferate infinitely. The differentiation ability of PSCs can be applied for regenerative medicine and tissue engineering. In domestic animals, their PSCs have a potential for preclinical therapy as well as the production of transgenic animals and agricultural usage such as cultured meat. Among several domestic animals, a pig is considered as an ideal model for biomedical and agricultural purposes mentioned above. In this reason, studies for pig PSCs including embryonic stem cells (ESCs), embryonic germ cells (EGCs) and induced pluripotent stem cells (iPSCs) have been conducted for decades. Therefore, this review will discuss the history of PSCs derived from various origins and recent progress in pig PSC research field.
Embryonic germ (EG) cells are undifferentiated stern cells isolated from cultured primordial germ cells (PGC). These cells share many characteristics with embryonic stem cells including morphology and pluripotency. Undifferentiated porcine EG cell lines demonstrating capacities of differentiation both in vitro and in vivo have been established. Since EG cells can be cultured indefinitely in an undifferentiated state, whereas somatic cells in primary culture are often unstable and have limited lifespan, EG cells may provide inexhaustible source of karyoplasts in nuclear transfer (NT). In this study the efficiencies of NT using porcine EG and fetal fibroblast cells were compared. Two different techniques were used to perform NT. With conventional NT procedure (Roslin method) involving fusion of donor cells with enucleated oocytes, the rates of development to the blastocyst stage in EG and somatic cell NT were 16.8% (59/351) and 14.5% (98/677), respectively. In piezo-driven microinjection (Honolulu method) of donor nuclei into enucleated oocytes, the rates of blastocyst formation in EG and somatic cell NT were 11.9% (15/126) and 9.4% (9/96), respectively. Regardless of NT methods used in this study, EG cell NT gave rise to comparable rate of blastocyst development to somatic cell NT. Overall, EG cells can be used as karyoplast donor in NT procedure, and embryos can be produced by EG cell NT that may be used as an alternative to conventional somatic cell NT.
D-type G1 cyclins are known to be crucial for the progression of mitotic cell cycle in mammals. Although many studies have been performed to elucidate the roles of D-type cyclins, it is largely unknown whether D-type cyclins are directly involved in the regulation of meiotic germ cell development. In the present study, we examined the expression patterns of D-type cyclins (cyclin D1 and D3) during male germ cell development by northern blot and in situ Hybridization analyses. In the adult testes, we detected a 4.2 kb cyclin D1 mRNA and two different sizes (2.3 kb and 1.8 kb) of cyclinD3 mRNAs. The short form of the cyclin D3 transcript was testis-specific. Along with the testicular development, expression of cyclin D3 mRNA was increased whereas cyclin D1 mRNA was gradually decreased. in situ hybridization study also revealed that the expression of cyclin D3 was restricted to the postmeiotic germ cells. Furthermore, the 2.3 kb transcript was highly expressed in the round spermatids and decreased in the elongated spermatids/residual bodies, while the 1.8 kb transcript was expressed in elongated spermatids/residual bodies more abundantly. Sucrose-gradient separation of polysomal RNA fractions demonstrated that some portions of the 2.3 kb transcript are translationally active, while the 1.8 kb transcript is likely to be inactive. Taken together, the present data suggest a functional importance of cyclin D3 expression in the differentiated postmeiotic male germ cells.
As a preclinical study, many researchers have been attempted to convert the porcine PSCs into several differentiated cells with transplantation of the differentiated cells into the pigs. Here, we attempted to derive neuronal progenitor cells from pig embryonic germ cells (EGCs). As a result, neuronal progenitor cells could be derived directly from pig embryonic germ cells through the serum-free floating culture of EB-like aggregates (SFEB) method. Treating retinoic acid was more efficient for inducing neuronal lineages from EGCs rather than inhibiting SMAD signaling. The differentiated cells expressed neuronal markers such as PAX6, NESTIN, and SOX1 as determined by qRT-PCR and immunostaining. These data indicated that pig EGCs could provide valid models for human therapy. Finally, it is suggested that developing transgenic pig for disease models as well as differentiation methods will provide basic preclinical data for human regenerative medicine and lead to the success of stem cell therapy.
Primordial germ cells (PGCs) were manipulated as part of the system to produce transgenic chickens. PGCs were isolated from the germinal crescent of developmental stage 6 to 8 donor emhryos of the Korean Native Ogol Chickens (KNOC). These PGCs were transfected with plasmid DNA containing the lac Z gene by liposome mediated transfection methods. The lac Z gene was transfected and expressed in the PGCs. These transfected PGCs were injected into the germinal crescent of White Leghorn embryos (stage 6 to 8). The injected transfected PGCs migrated via the circulatory system into the future gonad and expression observed in the gonads of 3 day old chick. Of the 47 embryos and 3 day old chickens, one positive PGCs gonad from sacrificed young chickens was detected by appearance of blue cells. Plasmid DNA with the foreign gene was incorporated into the population of germ cells in the gonad. These results demonstrate that PGCs can he transfected and then transferred for colonization into the gonad, and show the potential to ultimately manipulate the genetic material of the chicken gernline.
Although primordial germ cells(PGCs) have been used in the production of germline chimera, efficiency has not been satisfactory. The Present study was conducted to improve efficiency of germline chimera production using the cultured gonadal PGCs(gPGCs). Germline chimeric chickens were produced by transfer of cultured gonadal primordial germ cells from Korean Ogol Chicken (KOC) to White Leghorn (5.5-day-old) and cultured in vitro for 10 days. Approximately 200 gPGCs (2-day-old) recipient embryos from which blood had been withdrawn via the dorsal aorta prior to the injection. Recipient embryos were incubated until hatching. Germline chimerism of the chickens reaching maturity was examined by mating them with Korean Ogol Chicken. Donor-derived offspring were identified as germline chimeric chickens based on their feather color. The frequency of germline transmission of donor PGCs ranged 1.9∼60.7%. There was no difference between both sexes. Therefore, it can be concluded that efficiency of germline chimerism can be improved via using cultured gPGCs.
Ischemia/reperfusion(I/R) injury of the rat testis causes germ cell death and infiltration of inflammatory cells. To investigate the mechanism of germ cell death in torsion of the rat testis, apoptosis and macrophage activation were studied using the terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nick end-labeling(TUNEL) method and immunohistochemistry in the testes of Sprague-Dawley rats subjected to 1.5 h of ischemia, followed by 0, 1, 3, 6, 12, 24, 48 and 96 h of reperfusion. Apoptotic, TUNEL-positive cells were found at the base of the seminiferous epithelia after I/R. TUNEL-positive cells were significantly increased 6 h after repair of the torsion, and there was a significant peak in apoptosis 24 h after reperfusion, as compared with normal or sham-operated controls. In contrast, histological evidence of germ cell necrosis in the seminiferous tubules was first visible 24 h after reperfusion. In the testis of sham-operated rats, ED2-positive resident macrophages were found diffusely in the interstitial space, while ED1-positive monocyte-like macrophages were rarely found. After I/R, ED1-positive cells were significantly increased beginning 12 h after reperfusion, while ED2-positive immunoreactivity did not change during the experimental period. Together, the results of this study confirmed that increased numbers of ED1-positive macrophages, but not resident ED2-positive macrophages, infiltrated the interstitial space surrounding damaged tubules and induced germcell death.
As described here, most recently developed methods for improving reproduction performance of domesticated animals such as cattle, swine and chicken have been considered to be also usable for restoring some sorts of endangered and/or extinct wild animals in the very near future. Especially, the techniques for in vitro storage of gametes obtained from dead animals shortly after the death, probably 24 h following the sacrifice are also available for obtaining some of experimental specimens. In case of the endangered animals, nobody will be allowed to use any tissues from the living animals, therefore, e.g., the use of skin tissues from these bodies is another possibility of restoring the living animals. Regarding the use of skin tissues, the most highly usable tools must be the cloning techniques for reviving rare cells from the living body. Most possible techniques for cloning cells is nuclear transfer from rare species to highly relative species, and this is the case of germ cells, e.g., primordial germ cells (PGCs) of avian species. One of the possibilities is the nuclear transfer of Crested Ibis (Nipponia nippon) to the PGCs of chicken, resulting in the PGCs with transferred nucleus from the ibis. In mammalian species, the same procedure as in the case of birds would be successful, e.g., the removed nucleus from Giant Pandas will be transferred to the cell, such as somatic cells or germ cells from black bears or lesser pandas, leading to the production of transnucleared cells in the body of female black bears. These two cases are most promising techniques for reviving endangered animals in the world, particularly in Asian countries, mainly in China. As a conclusion, possible production of cloned animals carrying transnucleared cells from endangered animals, such as Giant Pandas and Crested Ibis, may be reproduced gradually in the near future. Scientists are, therefore, required to convert the paradigm from domestic animals to wild animals, including endangered and/or extinct animals on the earth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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