Antimicrobial cationic peptides have attracted increasing research and clinical interest as a natural antibiotics due to their broad spectrum of antimicrobial activites and the rapid development of multidrug-resistant pathogenic microorganisms. In this study, first, we synthesized artificial fusion partner and cationic peptide genes (lactoferricin, magainin, protegrin-1, and indolicidin). Second, we constructed recombinant expression vectors and then transformed Pichia pastoris. Finally, expressed cationic peptides were purified and tested for their antimicrobial activites. Antimicrobial activity has been tested upon the appearance of clearing zone on the plate with the lawn of gram negative E.coli XL- I blue and garm positive Staphylococcus aureus. Protegrin-1 and Indolicidin have apparant activity of cationic peotides. This fusion technique may lead to a general and suitable tool for production of pure antimicrobial cationic peptides in Pichia pastoris.
Silver nanoparticles have been synthesized by liquid-phase and alcohol reduction methods. Silver-doped silica-complex nanoparticles were prepared using a sol-gel process. The formation, structure, morphology, and particle size of the nanoparticles have been studied using several techniques. Silver nanoparticles of size of 30-40 nm were formed successfully by alcohol reduction. TEM images show that both the concentration and the molecular weight of polyvinyl pyrrolidone (PVP) considerably affect the size of the emerging silver nanoparticles. The number of silver-doped silica-complex particles increased by a mercapto-group treatment that showed a narrower size distribution than that of silica treated with amino groups. The silver/polyester and silver-doped silica/polyester masterbatch chips showed excellent antibacterial activity against Staphylococcus aureus and Escherichia coli.
Improved amylases were developed from protoplast fusants of two amylase-producing Aspergillus species. Twenty regenerated fusants were screened for amylase production using Remazol Brilliant Blue agar. Crude enzyme extracts produced by solid state fermentation of rice bran were assayed for activity. Three variable factors (temperature, pH and enzyme type) were optimized to increase the amylase activity of the parents and selected fusants using rice bran medium and solid state fermentation. Analysis of this optimization was completed using the Central Composite Design (CCD) of the Response Surface Methodology (RSM). Amylase activity assays conducted at room temperature and 80℃ demonstrated that Aspergillus designates, T5 (920.21 U/ml, 966.67 U/ml), T13 (430 U/ml, 1011.11 U/ml) and T14 (500.63 U/ml, 1012.00 U/ml) all exhibited improved function making them the preferred fusants. Amylases produced from these fusants were observed to be active over the entire pH range evaluated in this study. Fusants T5 and T14 demonstrated optimal activity under acidic and alkaline conditions, respectively. Fusants T13 and T14 produced the most amylase at 72 h while parents TA, TC and fusant T5 produced the most amylase after 96 h of incubation. Response surface methodology examinations revealed that the enzyme from fusant T5 was the optimal enzyme demonstrating the highest activity (1055.17 U/ml) at pH 4 and a temperature of 40℃. This enzyme lost activity with further increases in temperature. Starch hydrolysis using fusant T5 gave the highest yield of glucose (1.6158 g/100 ml). The significant activities of the selected fusants at 28 ± 2℃ and 80℃ and the higher sugar yields from cassava starch hydrolysis over their parental strains indicate that it is possible to improve amylase activity using the protoplast fusion technique.
Green synthesis of gold nanoparticles(GNPs) considered more ecofriendly and cost effective than other chemical methods use of dangerous reagents and solvents, improved material and energy efficiency and enhanced design of non-toxic products. In this study, we developed a green synthesis method for using Caulis in Taeniam (BCT). BCT were characterized by UV-vis, Zetasizer, TEM, XRD, and FTIR. The antioxidant activity of BCT was determined by DPPH and ABTS radical-scavenging assays, and heme oxygenase-1 induction in RAW 264.7 macrophages. The resulting BCT appeared spherical with an average diameter of 67.171.39 nm The aAntioxidant activity was increased in a dependent manner. To conclude, the green synthesis of BCT-GNPs was successful, and it appers to be useful in the for future applications.
Seo, Ju-Seok;An, Ju-Hee;Cheong, Jong-Joo;Choi, Yang-Do;Kim, Chung-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.9
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pp.1544-1549
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2008
MhMTS and MhMTH are trehalose ($\alpha$-D-glucopyranosyl-[1,1]-$\alpha$-D-glucopyranose) biosynthesis genes of the thermophilic microorganism Metallosphaera hakonensis, and encode a maltooligosyltrehalose synthase (MhMTS) and a maltooligosyltrehalose trehalohydrolase (MhMTH), respectively. In this study, the two genes were fused in-frame in a recombinant DNA, and expressed in Escherichia coli to produce a bifunctional fusion enzyme, MhMTSH. Similar to the two-step reactions with MhMTS and MhMTH, the fusion enzyme catalyzed the sequential reactions on maltopentaose, maltotriosyltrehalose formation, and following hydrolysis, producing trehalose and maltotriose. Optimum conditions for the fusion enzyme-catalyzed trehalose synthesis were around $70^{\circ}C$ and pH 5.0-6.0. The MhMTSH fusion enzyme exhibited a high degree of thermostability, retaining 80% of the activity when pre-incubated at $70^{\circ}C$ for 48 h. The stability was gradually abolished by incubating the fusion enzyme at above $80^{\circ}C$. The MhMTSH fusion enzyme was active on various sizes of maltooligosaccharides, extending its substrate specificity to soluble starch, the most abundant natural source of trehalose production.
To construct useful yeast strain for bioethanol production, we improved yeast harboring various phenotypes by using yeast protoplast fusion method. In this study, S. cerevisiae BYK-F11 strain which have ethanol tolerance, thermotolerance and ${\beta}-glucanase$ activity and P. $stipitis{\Delta}ura$ strain which has xylose metabolism pathway were fused by genome shuffling. P. $stipitis{\Delta}ura$ strain was constructed for protoplast fusion by URA3 gene disruption, resulting in uracil auxotroph. By protoplast fusion, several fused cells were selected and BYKPS-F8 strain (fused cell) showing both karyotypes from two parent strains (S. cerevisiae BYK-F11 and P. $stipitis{\Delta}ura$ strain) among 22 fused cells was finally selected. Sequentially, various phenotypes such as ${\beta}-glucanase$ activity, xylose utility, ethanol tolerance, thermotolerance and ethanol productivity were analyzed. The BYKPS-F8 strain obtained ${\beta}-glucanase$ activity from BYK-F11 strain and 1.2 fold increased xylose utility from P. $stipitis{\Delta}ura$ strain. Also, the BYKPS-F8 strain showed thermotolerance at $40^{\circ}C$ and increased ethanol tolerance in medium containing 8% ethanol. In this fused cell, 7.5 g/l ethanol from 20 g/l xylose was produced and the multiple phenotypes were stably remained during long term cultivation (260 hr). It was proved that novel biological system (yeast strains) is easily and efficiently bred by protoplast fusion among yeasts having different genus.
.betha.-galactosidase activity of Escherichia coli cells containing operon fusion nhaA'-'lacZ was monitored to study the regulation of expression of nhaA gene under various conditions. The expression of the fusion was enhanced only by chemicals containing Na$^{+}$ or Li$^{+}$. This Na$^{+}$ or Li$^{+}$. This Na$^{+}$(Li$^{+}$)-specific enhancement of .betha.-galactosidase activity represented the increase in the rate of synthesis of .betha.-galactosidase rather than the decrease in the breakdown rate. The induction pattern was influenced by copy numbers of the gene. Induction by Na$^{+}$ or Li$^{+}$ was concentration and time dependent, reaching maximum 5-6 fold induction after 2 hours at 0.4-0.5 M for Na$^{+}$ or at 0.25-0.35 M for Li$^{+}$, Although the expression was induced at much lower concentration of Na$^{+}$ at alkaline pH values than at neutral pH in the presence of Na$^{+}$, alkaline pH itself did ot induced the expression of the fusion in the absence of Na$^{+}$. Temperature shift and growth phase of culture did not affect the level of induction.he level of induction.
The role of polyamines in skeletal myoblast differentiation was investigated using the polyamine metabolic inhibitor methylglyoxal bis(guanylhydrazone)(MGBG). Concentrations of intracellular free spermidine and spermine increased 2 to 2.5-fold at the onset of myoblast fusion. The systhesis of actin, and creatine kinase activity both dramatically increased during myotube formation. However, MGBG at a concentration of 0.5 mM not only abolished the increase of intracellular free polyamines, but also reduced cell fusion to almost half the level of untreated cells, without noticeable morphological alteration. The production of actin, and creatine kinase activity were almost completely abolished by MGBG. The inhibition of myoblast fusion by MGBG was partially recovered with 0.1 mM of spermidine or spermine added externally. Results indicate that polyamines are necessary for normal myoblast differentiation. Since the first indication of myoblast differentiation is alignment of muscle cells and membrane fusion of adjacent cells, and since polyamine depletion completely inhibited the synthesis of actin, which might be associted with membranes, polyamine might be involved in myoblast differentiation through membrane reorganization events.
Park, Dae-Wook;Kim, Sang-Soo;Nam, Min-Kyung;Kim, Goo-Young;Kim, Jung-Ho;Rhim, Hyang-Shuk
BMB Reports
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v.44
no.4
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pp.279-284
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2011
The glutathione S-transferase (GST) system is useful for increasing protein solubility and purifying soluble GST fusion proteins. However, purifying half of the GST fusion proteins is still difficult, because they are virtually insoluble under non-denaturing conditions. To optimize a simple and rapid purification condition for GST-pyruvate kinase muscle 2 (GST-PKM2) protein, we used 1% sarkosyl for lysis and a 1 : 200 ratio of sarkosyl to Triton X-100 (S-T) for purification. We purified the GST-PKM2 protein with a high yield, approximately 5 mg/L culture, which was 33 times higher than that prepared using a conventional method. Notably, the GST-high-temperature requirement A2 (GST-HtrA2) protein, used as a model protein for functional activity, fully maintained its proteolytic activity, even when purified under our S-T condition. This method may be useful to apply to other biologically important proteins that become highly insoluble in the prokaryotic expression system.
Streptomyces actuosus DMCJ-49 and Streptomyces minoensis DMCJ-144 produce the .alpha.-amylase inhibitor. Inerspecific protoplast fusion technique was used to increase the productivity of .alpha.-amylase inhibitor. Four auxotrophic mutants were obtained respectively from two strains by N-methyl-N'-nitor-N-nitrosoguanidine(3mg/ml) treatment. The optimum conditions for the protoplast formation of Streptomyces actuosus DMCJ-49 ade was as follows; 1.2% w/v of glycine, 3mg/ml of lysozyme, and 30 min of lysozyme treatment followed by 36 hr. incubation in the protop-last formation medium. In case of DMCJ-144-his those were 1.2%w/v, 3 mg/ml, 30 minutes and 60 hours, respectively. Regeneration was accomplished with hypertonic soft agar medium that contained 0.4M sucrose, 20mM CaCl$_2$, 50 mM MgCl$_2$ and low levels of phosphate. Fusion of protoplasts carrying different auxotrophic markers was achieved by treatment with polyethylene glycol. The optimum concentration of polyethylene glycol 1450 for the production of recombinants was 40%w/v. When the protoplasts was treated with 40% polyethylene glycol for 30 minutes, the frequency of recombinants was 6.5$\times$$10^{-3}$ and the $\alpha$-amylase inhibition activity of $ade^-his^-$ No. 4, which is the fusant with the most improved activity increased from 33 to 125 I.U./ml.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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