Connexin (Cx) is a complex which allows direct communication between neighboring cells via exchange of signaling molecules and eventually leads to functional harmony of cells in a tissue. The initial segment (IS) is an excurrent duct of male reproductive tract and expression of numerous genes in the IS are controlled by androgens and estrogens. The effects of these steroid hormones on gene expression in the IS during postnatal development have not extensively examined. The present research investigated expressional modulation of Cx isoforms in the IS by exogenous exposure to estrogen agonist, estradiol benzoate (EB), or androgen antagonist, flutamide (Flu), at weaning age. Two different doses of EB or Flu were subcutaneously administrated in 21-day old of male rats, and expressional changes of Cx isoforms in the adult IS were analyzed by quantitative real-time PCR. Treatment of a low-dose EB ($0.015{\mu}g/kg$ body weight) resulted in an increased expression of Cx31 gene and a decreased expression of Cx37 gene. A high-dose EB ($1.5{\mu}g/kg$ body weight) treatment caused an increase of Cx31 gene expression. Increased levels of Cx30.3 and Cx40 transcripts were observed with a low-dose Flu ($500{\mu}g/kg$ body weight) treatment. Treatment of high-dose Flu (50 mg/kg body weight) led to expressional increases of Cx30.3, 40, and 43 genes. Our previous and present findings suggest differential responsiveness on gene expression of Cx isoforms in the IS by androgens and estrogens at different postnatal ages.
Direct communication between neighboring cells through connexin (Cx)-based gap junction is a crucial biological manner to regulate functions of a tissue consisting of multi-cell types. The present research evaluated expressional changes of Cx isoforms in the caput epididymis of adult rat exposed to estradiol benzoate (EB) or flutamide (Flu) at the early postnatal age. A single subcutaneous administration of EB at a low-dose [$0.015{\mu}g/kg$ body weight (BW)] or a high-dose ($1.5{\mu}g/kg\;BW$) or Flu at a low-dose ($500{\mu}g/kg\;BW$) or a high-dose (5 mg/kg BW) was performed to an animal at 1 week of age. Quantitative real-time PCR analysis was employed to determine expressional changes of Cx isoforms. The transcript levels of Cxs30.3 and 37 were decreased by a low-dose EB treatment, while decreases of Cxs31, 31.1, 32, 40, and 45 transcript levels were observed with a low-dose EB treatment. The treatment of a high-dose EB resulted in expressional reduction of Cxs30.3, 31, 31.1, 37, 40, 43, and 45. The Flu treatment at a low dose caused increases of Cxs26, 37, and 40 transcript levels but decreases of Cxs31.1, 43, and 45 transcript levels. Increases of Cxs30.3, 31, 37, and 40 mRNA amounts were induced by a high-dose Flu treatment. However, exposure to a high-dose Flu produced expressional decreases of Cxs31.1, 32, and 43 in the adult caput epididymis. These observations suggest that exposure to EB or Flu at the neonatal period could lead to aberrant expression of Cx isoforms in the adult caput epididymis.
Hershberger assay is known as one of the in vivo-short-term scrrning assays for endocrine disrupting chemicals (EDCs), but this method is not a validated test system. In the present study, the establishment of Hershberger assay to detect EDCs was tried using a model substance, di(n-butyl)phthalate (DBP), a plasticizer for plastics. Thirty-six immature male rats were randomly assigned to six groups: DBP 0, 40, 200, and 1000mg/kg, a positive control (flutamide 20 mg/kg), and a combination group(DBP 1000mg/kg and testosterone 50 ug/kg). DBP and flutamide were administered by gavage to male rats from day 21 to 40 post partum. Testosterone was subcutaneously injected during the same period. We evaluated body weigth gain, weights of ventral prostate, seminal vesicle, and levator ani and bulvocavernous muscle, and serum concentrations of testosterone and lutenizing hormone in male rats. The weights of seminal vesicle and levator ani and bulvocavernous muscle of males receiving 1000mg/kg of DBP was significantly lower than controls. There was no effect of DBP-treatment on body weight gain, prostate weight, and hormone concentrations. In the positive control group, the weights of seminal vesicle and levator ani and bulvocavernous muscle of males receiving 20mg/kg of flutamide were significantly lower than controls. In the combination group, there was no effect of co-treatment of DBP and testosterone on all parameters effect against DBP. This method was found to be a useful short-term screening assay system for EDCs.
The present research was chiefly designed to determine the effect of the treatment of estrogenic agonist, estradiol benzoate (EB), or antiandrogenic compound, flutamide (Flu), at the weaning age on the expression of connexin (Cx) isoforms in the caudal epididymis of adult male rat. Animals were subcutaneously administrated with a single shot of either EB at a low-dose ($0.015{\mu}g$ of EB/kg body weight (BW)) or a high-dose ($1.5{\mu}g$ of EB/kg BW) or Flu at a low-dose ($500{\mu}g$ of EB/kg BW) or a high-dose (5 mg of EB/kg BW). Expressional changes of Cx isoforms in the adult caudal epididymis were examined by quantitative real-time PCR analysis. The treatment of a low-dose EB caused significant increases of Cx30.3, Cx31, Cx32, and Cx43 transcript levels but reduction of Cx31.1, Cx37, and Cx45 expression. Exposure to a high-dose EB resulted in very close responses observed in a low-dose EB treatment, except no significant expressional change of Cx37 and a significant induction of Cx40. Expression of all Cx isoforms, except Cx45, was significantly increased by a low-dose Flu treatment. Expressional increases of all Cx isoforms were detected by a high-dose Flu treatment. The current study demonstrates that a single exposure to estrogenic or antiandrogenic compound during the early postnatal developmental period is sufficient to disrupt normal expression of Cx isoforms in the adult caudal epididymis.
A proper development of the epididymis during the early postnatal development is required for successful fertility in the adult male. Direct cell-cell communication via connexin (Cx) molecules is a common way of cellular interactions to achieve normal development of a given tissue consisting of different cell types. The present research was attempted to determine the effect of exogenous exposure to estrogenic agonist or antiandrogen at the weaning age on expression of Cx isoforms in the adult corpus epididymis. Male rats were subcutaneously administrated with estradiol benzoate (EB) or flutamide (Flu) at the weaning age. The tissue was collected at 4 months of age. Expressional levels of Cx isoforms were determined by a quantitative real-time PCR. Statistical comparison showed significant increases of Cxs31, 32, 37, 40, and 43 transcript amounts by a treatment of $0.015{\mu}g$ of EB /kg body weight (BW). A treatment of $1.5{\mu}g$ of EB /kg BW caused a significant decrease of Cx43 gene expression but increases of Cxs26, 31, 32, 37, and 40 transcript levels. Exposure to $500{\mu}g$ of Flu/kg BW induced an increase of Cx37 expression but significant decreases of Cxs43 and 45 mRNA levels. Expression of Cx37 was increased by a treatment of 5 mg of Flu/kg BW, while transcript levels of Cxs26, 30.3, 31, 31.1, 32, and 43 were significantly decreased by same treatment. These results demonstrate that exposure to steroidal compounds at the early developmental age alters expression of Cx isoforms in the adult corpus epididymis.
Direct cell-cell communication through connexin (Cx) complexes is a way to achieve functional accordance of cells within a tissue or an organ. The initial segment (IS), a part of the epididymis, plays important roles in sperm maturation. Steroid hormones influence on expression of a number of genes in the IS of adult animals. However, developmental effect of sex hormones on the gene expression in the IS has not been examined. In this study, estradiol benzoate (EB, an estrogen agonist) or flutamide (Flu, an androgen antagonist) was exogenously administrated at 1 week of postnatal age, and expressional changes of Cx genes in the IS were determined at 4 months of age by a quantitative real-time PCR analysis. Treatment of EB at $0.015{\mu}g/kg$ body weight (BW) increased expression of Cx30.3, 31.1, and 43 genes. However, treatment of 1.5 mg EB/kg BW resulted in expressional decreases of Cx31, 32, and 45 genes and caused increases of Cx30.3 and 43 gene expression. Significant decreases of Cx31, 31.1, 32, 37, and 45 gene expression were detected with a treatment of $500{\mu}g\;Flu/kg$ BW, while expression of Cx43 gene was significantly increased with a treatment of $500{\mu}g\;Flu/kg$ BW. A treatment of $50{\mu}g\;Flu/kg$ BW led to significant increases of Cx30.3, 32, 37, 40, and 43 gene expression. These findings imply that exogenous exposure of steroidal hormones during the early developmental period would result in aberrant expression of Cx genes in the adult IS.
Cell-cell direct communication through channel-forming molecules, connexin (Cx), is essential for a tissue to exchange signaling molecules between neighboring cells and establish unique functional characteristics during postnatal development. The corpus epididymis is a well-known androgen-responsive tissue and involves in proper sperm maturation. In the present research, it was attempted to determine if expression of Cx isoforms in the corpus epididymis in the adult is modulated by exposure to estrogenic or anti-androgenic compound during the early postnatal period. The neonatal male rats at 7 days of age were subcutaneously injected by estradiol benzoate (EB) at low-dose ($0.015{\mu}g/kg$ body weight) or high-dose ($1.5{\mu}g/kg$ body weight) or flutamide (Flu) at low-dose ($500{\mu}g/kg$ body weight) or high-dose (50 mg/kg body weight). The corpus epididymis collected at 4 months of age was subjected to evaluate expressional changes of Cx isoforms by quantitative real-time PCR. Treatment of low-dose EB resulted in increases of Cx32, Cx37, and Cx45 transcript levels, while exposure to high-dose EB decreased expression of Cx26, Cx30.3, Cx31, Cx31.1, Cx32, Cx40, Cx43, and Cx45. Treatments of Flu caused significant decreases of expression of all examined Cx isoforms, except Cx37 and Cx43 shown no expressional change with high-dose Flu treatment. These findings imply that expression of most Cx isoforms present in the corpus epididymis would be transcriptionally regulated by actions of androgen and/or estrogen during postnatal period.
Connexin (Cx) involves in the regulation of various physiological functions of tissue by forming a channel, a gap junction which allows direct cell-cell communication, between adjacent cells. The effect of a single subcutaneous treatment of estradiol benzoate (EB) or flutamide (Flu) at the weaning age on the expression of Cx isoforms in the adult caput epididymis was evaluated in this research. Using quantitative real-time PCR analysis, a low-dose of EB [$0.015{\mu}g/kg$ body weight (BW)] caused significant decreases of Cx30.3, Cx32, Cx40, Cx43, and Cx45 mRNA levels and no change of Cx26, Cx31, Cx31.1, Cx37 transcript levels. The treatment of a high-dose EB ($1.5{\mu}g/kg\;BW$) resulted in reduced expression of Cx30.3, Cx31, Cx43, and Cx45 but increased expression of Cx37 and Cx40. Expression of all Cx isoforms examined, except Cx31, was significantly increased by the treatment of a low-dose Flu ($500{\mu}g/kg\;BW$). However, the treatment of a high-dose Flu (5 mg/kg BW) led significant expressional suppression of Cx30.3, Cx31, Cx31.1, Cx32, Cx40, Cx43, and Cx45 but an increase of Cx37 transcript level. With the comparison of previous findings, the expression of Cx isoforms in the adult epididymis after the exposure to EB or Flu is likely differentially regulated in regional-specific and/or exposed postnatal age-specific manner.
The rodent Hershberger assay is considered as a potential short term in vivo screening method for the detection of androgenic or anti-androgenic compounds. The objective of this study was to evaluate the anti-androgenic activities of di(2-ethylhexyl) phthalate (DEHP), di(n-butyl) phthalate (DBP), and butylbenzyl phthalate (BBP). A 10-day Hershberger assay was performed using immature Sprague-Dawley male rats castrated at 6 weeks of age. Tastosterone propionate (TP, 0.4 mg/kg/day) was administered s.c. to castrated male rats and followed by flutamide (1, 5, 10, or 20 mg/kg/day) treatment for 10 days by oral gavage. Similarly, DEHP, DBP, or BBP were also administered by oral gavage at 250, 500, or 1000 mg/kg/day after TP (0.4 mg/kg/day) administration. As expected, flutamide significantly inhibited the TP-induced re-growth of seminal vesicles, ventral prostate, and Levator ani plus bulbocavernosus muscles (LABC) at 1 mg/kg/day and above, and Cowper's glands and glans penis at 5 mg/kg/day and above. DEHP significantly (p<0.05) decreased the seminal vesicles, ventral prostate, LABC and Cowper's glands weights at 1000 mg/kg/day. BBP at 1000 mg/kg/day significantly inhibited TP-induced re-growth of the LABC in the immature castrated male rats, whereas ventral prostate, seminal vesicles, and Cowper's glands weights were unaffected. In contrast to DEHP, DBP did not affect accessory sex organ weights at any concentration. Body weights, combined adrenal glands, and kidney weights were not affected, but liver weights were significantly increased at high dosages in the DEHP, DBP, and BBP treatment groups. Our observations strongly suggest that DEHP acts as an androgen antagonist at the high dose (i.e., 1000 mg/kg/day).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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