Objective: Foot and mouth disease (FMD) and porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) are major diseases that interrupt porcine production. Because they are viral diseases, vaccinations are of only limited effectiveness in preventing outbreaks. To establish an alternative multi-resistant strategy against FMD virus (FMDV) and PRRS virus (PRRSV), the present study introduced two genetic modification techniques to porcine cells. Methods: First, cluster of differentiation 163 (CD163), the PRRSV viral receptor, was edited with the clustered regularly interspaced short palindromic repeats-CRISPR-associated protein 9 technique. The CD163 gene sequences of edited cells and control cells differed. Second, short hairpin RNA (shRNAs) were integrated into the cells. The shRNAs, targeting the 3D gene of FMDV and the open reading frame 7 (ORF7) gene of PRRSV, were transferred into fibroblasts. We also developed an in vitro shRNA verification method with a target gene expression vector. Results: shRNA activity was confirmed in vitro with vectors that expressed the 3D and ORF7 genes in the cells. Cells containing shRNAs showed lower transcript levels than cells with only the expression vectors. The shRNAs were integrated into CD163-edited cells to combine the two techniques, and the viral genes were suppressed in these cells. Conclusion: We established a multi-resistant strategy against viral diseases and an in vitro shRNA verification method.
Recent studies on nuclear transfer and induced pluripotent stem cells have demonstrated that differentiated somatic cells can be returned to the undifferentiated state by reversing their developmental process. These epigenetically reprogrammed somatic cells may again be differentiated into various cell types, and used for cell replacement therapies through autologous transplantation to treat many degenerative diseases. To date, however, reprogramming of somatic cells into undifferentiated cells has been extremely inefficient. Hence, reliable markers to identify the event of reprogramming would assist effective selection of reprogrammed cells. In this study, a transgene construct encoding enhanced green fluorescent protein (EGFP) under the regulation of human Oct4 promoter was developed as a reporter for the reprogramming of somatic cells. Microinjection of the transgene construct into pronuclei of fertilized mouse eggs resulted in the emission of green fluorescence, suggesting that the undifferentiated cytoplasmic environment provided by fertilized eggs induces the expression of EGFP. Next, the transgene construct was introduced into human embryonic fibroblasts, and the nuclei from these cells were transferred into enucleated porcine oocytes. Along with their in vitro development, nuclear transfer embryos emitted green fluorescence, suggesting the reprogramming of donor nuclei in nuclear transfer embryos. The results of the present study demonstrate that expression of the transgene under the regulation of human Oct4 promoter coincides with epigenetic reprogramming, and may be used as a convenient marker that non-invasively reflects reprogramming of somatic cells.
Radiation-impaired wound healing in animal experiments was believed to be an another logical experimental model to understand the wound healing mechanism in patients. The purpose of this study was to reveal the block point which would result in impaired healing. Twenty four rats(Sprague-Dawley strains) were divided into two groups according to the time interval between irradiation and wounding. Group I, observing the healing effect on the 1st day and Group II are the healing effects on the 7th days after irradiation to the wound of the rat tongue. Experimental animals were sacrificed 3, 6, 12, and 24 hours after wounding. The specimens were examined by the light microscope and transmission electron microscope. The following results were obtained 1. Fibroblasts in both groups showed degenerative changes which were dilated mitochondria and rER, reduced microorganelle, vacuoles and little cytoplasmic process. 2. Average length between bands and Quantity of the newly produced collagen fibers around fibroblasts remained unchanged against control group. 3. The severity of degenerative change of the fibroblast and impairment of wound healing including shortening of the thickness of collagen fibers were more severe in the group II than in the group I.
Kim, Gil Ah;Lee, Seung Tae;Lee, Eun Ju;Choi, Jung Kyu;Lim, Jeong Mook
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권3호
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pp.343-349
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2009
This study was designed to simplify a cryopreservation program for embryonic stem cells (ESCs) by selection of cooling method and cryoprotectant. Commercially available mouse E14 embryonic stem cells (ESCs) were cryopreserved with various protocols, and morphology and viability of the frozen-thawed ESCs and their reactive oxygen species (ROS) production were subsequently monitored. Post-thaw colony-formation of ESCs was detected only after a slow freezing using dimethyl sulfoxide (DMSO) by stepwise placement of a freezing container into a $-80^{\circ}C$ deep freezer and subsequently into -$196^{\circ}C$ liquid nitrogen, while no proliferation was detected after vitrification. When the simplified protocol was employed, the replacement of DMSO with a mixture of DMSO and ethylene glycol (EG) further improved the post-thaw survival. ROS generation in ESCs frozen-thawed with the optimized protocol was not increased compared with non-frozen ESCs. The use of fresh mouse embryonic fibroblasts as feeder cells for post-thaw subculture did not further increase post-thaw cell viability. In conclusion, a simplified slow-freezing program without employing programmable freezer but using DMSO and EG was developed which maintains cell viability and colony-forming activity of ESCs during post-thaw subculture.
Objective: This study investigated the effects of intrauterine growth restriction (IUGR) during late pregnancy on the cell growth, proliferation, and differentiation in ovine fetal thymuses. Methods: Eighteen time-mated Mongolian ewes with singleton fetuses were allocated to three groups at d 90 of pregnancy: restricted group 1 (RG1, 0.18 MJ ME/body weight [BW]0.75/d, n = 6), restricted group 2 (RG2, 0.33 MJ ME/BW0.75/d, n = 6) and control group (CG, ad libitum, 0.67 MJ ME/BW0.75/d, n = 6). Fetuses were recovered at slaughter on d 140. Results: The G0/G1 phase cell number in fetal thymus of the RG1 group was increased but the proliferation index and the expression of proliferating cell nuclear antigen (PCNA) were reduced compared with the CG group (p<0.05). Fetuses in the RG1 group exhibited decreased growth hormone receptor (GHR), insulin-like growth factor 2 receptor (IGF-2R), and their mRNA expressions (p<0.05). For the RG2 fetuses, there were no differences in the proliferation index and PCNA expression (p>0.05), but growth hormone (GH) and the mRNA expression of GHR were lower than those of the CG group (p<0.05). The thymic mRNA expressions of cyclin-dependent protein kinases (CDKs including CDK1, CDK2, and CDK4), CCNE, E2-factors (E2F1, E2F2, and E2F5) were reduced in the RG1 and RG2 groups (p<0.05), and decreased mRNA expressions of E2F4, CCNA, CCNB, and CCND were occurred in the RG1 fetuses (p<0.05). The decreased E-cadherin (E-cad) as a marker for epithelial-mesenchymal transition (EMT) was found in the RG1 and RG2 groups (p<0.05), but the OB-cadherin which is a marker for activated fibroblasts was increased in fetal thymus of the RG1 group (p<0.05). Conclusion: These results indicate that weakened GH/IGF signaling system repressed the cell cycle progression in G0/G1 phase in IUGR fetal thymus, but the switch from reduced E-cad to increased OB-cadherin suggests that transdifferentiation process of EMT associated with fibrogenesis was strengthened. The impaired cell growth, retarded proliferation and modified differentiation were responsible for impaired maturation of IUGR fetal thymus.
The purpose of this study was to development of transgenic cow using the nuclear transfer. To secrete hFSH in urea, the vector was constructed with UPII promoter. The fetal fibroblast cells (KbFF) were constructed from pregnant day 45 male fetus. The hFSH genes were cotransfected with pcDNA3 (neo) vector to KbFF cells by electroporation. (omitted)
The objectives of the present study were to initiate cloning of Korean native goat by somatic cell nuclear transfer (NT) and to examine whether unovulated (follicular) oocytes can support the same developmental ability of NT embryos as ovulated (oviductal) oocytes after hCG injection in stimulated cycles of the goat. The in vivo-matured and immature oocytes were collected from the oviducts and follicles of superovulated does, respectively, and the immature oocytes were maturated in vitro. Ear skin fibroblasts derived from a 3-yr-old female Korean native goat were used as the donors of nuclei or karyoplasts. Following fusion, activation and in vitro culture to a 2- to 4-cell stage, 49 in vitro-derived and 105 in vivo-derived embryos were transferred to 6 and 17 recipient does, respectively. One doe and three does of the respective groups were identified as pregnant by ultrasonography on day 30 after embryo transfer. However, only one doe, which had received in vivo-derived embryos, delivered a normal female kid of 1.9 kg on d 149. The cloned kid gained more weight than her age-matched females as much as 87% during the first 4 mo after birth (17.7 vs. $9.4{\pm}0.8$ kg) and reached puberty at 6-mo age a few months earlier than normal female does. The telomere length of the kid, which was similar to that of the donor fibroblast at 2-mo age, decreased 8% between 2- and 7-mo ages. Moreover, at 7-mo age, she had 21% shorter telomere than her age-matched goats. To our knowledge, this is the first case in which a cloned animal born with a normal weight exhibited accelerated growth and development. The unusually rapid growth and development of the cloned goat may have resulted from SCNT-associated epigenetic reprogramming involving telomere shortening.
Park, K-W.;Yoo, J.Y.;Choi, K.M.;Yang, B.S.;Im, G.S.;Seol, J.G.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권1호
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pp.20-25
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2009
Xenotransplantation of pig organs into humans is a potential solution for the shortage of donor organs for transplantation. However, multiple immune barriers preclude its clinical application. In particular, the initial type of rejection in xenotransplantation is an acute cellular rejection by host $CD8^+$ cytotoxic T lymphocyte (CTL) cells that react to donor major histocompatibility complex (MHC) class I. The human cytomegalovirus (HCMV) glycoprotein Unique Short (US) 2 specifically targets MHC class I heavy chains to relocate them from the endoplasmic reticulum (ER) membrane to the cytosol, where they are degraded by the proteasome. In this study we transfected the US2 gene into minipig fetal fibroblasts and established four US2 clonal cell lines. The integration of US2 into transgenic fetal cells was confirmed using PCR and Southern blot assay. The reduction of Swine Leukocyte Antigen (SLA)-I by US2 was also detected using Flow cytometry assay (FACS). The FACS analysis of the US2 clonal cell lines demonstrated a substantial reduction in SLA-I surface expression. The level (44% to 76%) of SLA-I expression in US2 clonal cell lines was decreased relative to the control. In cytotoxicity assay the rate of $CD8^+$ T cell-mediated cytotoxicity was significantly reduced to 23.8${\pm}$15.1% compared to the control (59.8${\pm}$8.4%, p<0.05). In conclusion, US2 can directly protect against $CD8^+$-mediated cell lysis. These results indicate that the expression of US2 in pig cells may provide a new approach to overcome the CTL-mediated immune rejection in xenotransplantation.
MicroRNAs (miRNAs) are approximately 22 nucleotides of small noncoding RNAs that control gene expression at the posttranscriptional level through translational inhibition and destabilization of their target mRNAs. The miRNAs are phylogenetically conserved and have been shown to be instrumental in a wide variety of key biological processes including cell cycle regulation, apoptosis, metabolism, imprinting, and differentiation. Recently, a paper has shown that expression of the miRNA-302/367 cluster expressed abundantly in mouse and human embryonic stem cells (ESCs) can directly reprogram mouse and human somatic cells to induced pluripotent stem cells (iPSCs) efficiently in the absence of any of the four factors, Oct4, Sox2, c-Myc, and Klf4. To apply this efficient method to porcine, we analyzed porcine genomic sequence containing predicted porcine miRNA-302/367 cluster through ENSEMBL database, generated a non-replicative episomal vector system including miRNA-302/367 cluster originated from porcine embryonic fibroblasts (PEF), and tried to make porcine iPSCs by transfection of the miRNA-302/367 cluster. Colonies expressing EGFP and forming compact shape were found, but they were not established as iPSC lines. Our data in this study show that pig miRNA-302/367 cluster could not satisfy requirement of PEF reprogramming conditions for pluripotency. To make pig iPSC lines by miRNA, further studies on the role of miRNAs in pluripotency and new trials of transfection with conventional reprogramming factors are needed.
The random insertion of useful gene in genome has been a common method to produce transgenic animals. This method is inefficient for induction of high levels gene expression in transgenic animals. To improve this limit, we tried to develop the system which target the gene at the specific genomic region. Thus, in our experiment, the vector system to target the human thrombopoietin (TPO) gene was developed. Targeting vector including TPO, neo and DT genes was transfrcted into bovine embryonic fibroblasts (bEF) or bovine ear skin fibroblasts (bESF). First of all, we determined concentration of the geneticin (G418) for selection of transfected cell lines. Our results showed that 1200 and 900 $\mu\textrm{g}$/ml of G418 were the most proper for selection of transfscted bEF and bESF cells. In this study, lipofectamine was used as a transfection reagent. Thus, the proper ratio of DNA:lipofectamine for transfection was also required to elevate targeting efficiency in primary mammalian cells. Our result indicates that the most proper ratios of DNA:lipofectamine were 4:2 and 1:2 in bEF and bESF cells. According to the optimized these conditions, single colonies were picked following transfection and were analyzed by PCR. More than 90% of the single colonies have TPO gene. However, there were no colonies with targeted TPO at the specific genomic region. Therefore, further experiments to select the specifically targeted colonies and to find more efficient methods such as reducing selection time and shortening a size of TPO gene are required.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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