We tried to analyze the growth time for secretion of the iron containing superoxide dismutase by comparing the intra-and extracellular enzyme activity from Streptomyces subrutilus P5 and analyze possible genetic information for this enzyme secretion. The mycelial dry weights and glucose concentrations in culture filtrates were determined during growth. Glucose was consumed rapidly during logarithmic growth phase and almost exhausted at 24 h of cultivation. While the intracellular activity of iron containing superoxide dismutase was first appeared at three hours, the extracellular activity of this enzyme appeared from 7.5 h of cultivation, early logarithmic growth phase. This early presence of the superoxide dismutase might not be the result of cell lysis but active secretion pathway. There was no information for signal peptide responsible for the enzyme secretion in sodF. However, we found a type three secretion box in the promoter region of sodF that has been known for the genes of type III secreted proteins in other bacteria. This is the first report on the possible existence of type III secretion in Streptomyces.
Superoxide dismutase (SOD) removes damaging reactive oxygen species from the cellular environment by catalyzing the dismutation of two superoxide radicals to hydrogen peroxide and oxygen. Extracellular superoxide dismutase (EC-SOD) is a tetramer and is present in the extracellular space and to a lesser extent in the extracellular fluids. Increasing therapeutic applications for recombinant human extracellular superoxide dismutase (rEC-SOD) has broadened interest in optimizing methods for its purification, with a native conformation of tetramer. We describe a solid phase refolding procedure that combines immobilized metal affinity chromatography (IMAC) and gel filtration chromatography in the purification of rEC-SOD from Escherichia coli. The purified rEC-SOD tetramer from the $Ni^{2+}$-column chromatography is refolded in Tris buffer. This method yields greater than 90% of the tetramer form. Greater than 99% purity is achieved with further purification over a Superose 12PC 3.2/30 column to obtain the tetramer and specific activities as determined via DCFHDA assay. The improved yield of rEC-SOD in a simple chromatographic purification procedure promises to enhance the development and therapeutic application of this biologically potent molecule.
A balance between production and degradation of reactive oxygen species (ROS) is critical for maintaining cellular homeostasis. Increased levels of ROS during oxidative stress are associated with disease conditions. Antioxidant enzymes, such as extracellular superoxide dismutase (EC-SOD), in the extracellular matrix (ECM) neutralize the toxicity of superoxide. Recent studies have emphasized the importance of EC-SOD in protecting the brain, lungs, and other tissues from oxidative stress. Therefore, EC-SOD would be an excellent therapeutic drug for treatment of diseases caused by oxidative stress. We cloned both the full length (residues 1-240) and truncated (residues 19-240) forms of human EC-SOD (hEC-SOD) into the donor plasmid pFastBacHTb. After transposition, the bacmid was transfected into the Sf9-baculovirus expression system and the expressed hEC-SOD purified using FLAG-tag. Western blot analysis revealed that hEC-SOD is present both as a monomer (33 kDa) and a dimer (66 kDa), as detected by the FLAG antibody. A water-soluble tetrazolium (WST-1) assay showed that both full length and truncated hEC-SOD proteins were enzymatically active. We showed that a potent superoxide dismutase inhibitor, diethyldithiocarbamate (DDC), inhibits hEC-SOD activity.
Background Diabetes is characterized by chronic hyperglycemia, which can increase reactive oxygen species (ROS) production by the mitochondrial electron transport chain. The formation of ROS induces oxidative stress and activates oxidative damage-inducing genes in cells. No research has been published on oxidative damage-related extracellular superoxide dismutase (EC-SOD) protein levels in human diabetic skin. We investigated the expression of EC-SOD in diabetic skin compared with normal skin tissue in vivo. Methods The expression of EC-SOD protein was evaluated by western blotting in 6 diabetic skin tissue samples and 6 normal skin samples. Immunohistochemical staining was also carried out to confirm the EC-SOD expression level in the 6 diabetic skin tissue samples. Results The western blotting showed significantly lower EC-SOD protein expression in the diabetic skin tissue than in the normal tissue. Immunohistochemical examination of EC-SOD protein expression supported the western blotting analysis. Conclusions Diabetic skin tissues express a relatively small amount of EC-SOD protein and may not be protected against oxidative stress. We believe that EC-SOD is related to the altered metabolic state in diabetic skin, which elevates ROS production.
Extracellular superoxide dismutase (EC-SOD) is an antioxidant enzyme that protects cells and tissues from extracellular damage by eliminating superoxide anion radicals produced during metabolism. Two different forms of EC-SOD exist, and their different enzyme activities are a result of different disulfide bond patterns. Although only two folding variants have been discovered so far, five folding variants are theoretically possible. Therefore, we constructed five different mutant EC-SOD expression vectors by substituting cysteine residues with serine residues and evaluated their expression levels and enzyme activities. The mutant EC-SODs were expressed at lower levels than that of wild-type EC-SOD, and all of the mutants exhibited inhibited extracellular secretion, except for C195S ECSOD. Finally, we demonstrated that co-expression of wild-type EC-SOD and any one of the mutant EC-SODs resulted in reduced secretion of wild-type EC-SOD. We speculate that mutant EC-SOD causes malfunctions in systems such as antioxidant systems and sensitizes tissues to ROS-mediated diseases.
Kim, Sunghwan;Kim, Hae-Young;Kim, Jung-Ho;Choi, Jung-Hye;Ham, Won-Kook;Jeon, Yoon-Jae;Kang, Hara;Kim, Tae-Yoon
BMB Reports
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v.48
no.2
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pp.91-96
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2015
Cells express several antioxidant enzymes to scavenge reactive oxygen species (ROS) responsible for oxidative damages and various human diseases. Therefore, antioxidant enzymes are considered biomedicine candidates. Among them, extracellular superoxide dismutase (SOD3) had showed prominent efficacy against asthma and inflammation. Despite its advantages as a biomedicine, the difficulty in obtaining large quantity of active recombinant human SOD3 (rhSOD3) has limited its clinical applications. We found that a significant fraction of over-expressed rhSOD3 was composed of the inactive apo-enzyme and its potency against inflammation depended on the rate of metal incorporation. Also, purified rhSOD3 was unstable and lost its activity very quickly. Here, we suggest an ideal preparative method to express, purify, and store highly active rhSOD3. The enzymatic activity of rhSOD3 was maximized by incorporating metal ions into rhSOD3 after purification. Also, albumin or polyethylene glycol prevented rapid inactivation or degradation of rhSOD3 during preparative procedures and long-term storage.
Extracellular superoxide dismutase (EC-SOD) is a metallo-protein and functions as an antioxidant enzyme. In this study, we used lentiviral vectors to generate transgenic chickens that express the human EC-SOD gene. The recombinant lentiviruses were injected into the subgerminal cavity of freshly laid eggs. Subsequently, the embryos were incubated to hatch using phases II and III of the surrogate shell ex vivo culture system. Of 158 injected embryos, 16 chicks (G0) hatched and were screened for the hEC-SOD by PCR. Only 1 chick was identified as a transgenic bird containing the transgene in its germline. This founder (G0) bird was mated with wild-type hens to produce transgenic progeny, and 2 transgenic chicks (G1) were produced. In the generated transgenic hens (G2), the hEC-SOD protein was expressed in the egg white and showed antioxidant activity. These results highlight the potential of the chicken for production of biologically active proteins in egg white.
We investigated changes in the superoxide dismutase (SOD) activity and SOD isoenzyme pattern in suspension cultures of tomato (Lycopersicon esculentum), which were compared with those of intact tomato plants. two grams (fr wt) of cells subcultured at 15-day intervals were inoculated into 50 mL MS medium containing l mg/L 2,4-D and 30 g/L sucrose in a 300 mL flask and maintained at $25^{\circ}C$ in the dark (100 rpm). The cell growth reached a maximum at 20 days after subculture (DAS), followed by a rapid decrease with further cultures. The cell colour changed from white to black from 23 DAS. The intracellular SOD activity (units/g cell dry wt) was significantly increased from 23 DAS and reached a maximum at 28 DAS (52,400 units), followed by a decrease with further cultures, whereas the extracellular SOD activity showed a maximum at 25 DAS (27,800 units/50 mL medium). The total SOD activity per flask showed a maximum at 25 DAS (35,700 units), in which the extracellular SOD activity occupied about 75%. The tomato cultured cells had four SOD isoenzymes and their patterns were well correlated with SOD activity without a qualitative change during the cell cultures. The intact tomato plants had an additional CuZnSOD isoenzyme, showing the different isoenzyme patterns from cultured cells.
유리 라디칼과 활성 산소종, 산화방지제 간의 불균형이 염증성 구강내 질환의 발생과 진행에 있어 중요한 역할을 한다는 주장이 제기되었고 최근에는 만성 염증성 치주질환에서도 산화에 의한 소실이 관찰되었다. 다양한 내적인 항산화 방어 기전 중 superoxide dismutase 가 $O_2$를 $H_2O_2$로 효과적으로 전환시킴으로써 활성산소종에 대한 일차적인 방어를 맡고 있다. 현재까지 인간에서 발견된 superoxide dismutase 는 cytoplasmic copper-zinc SOD와 mitochondrial manganase SOD, extracellular SOD의 3가지 아형이다. 이번 연구는 만성 치주질환을 가전 환자의 치주조직에서 효소 항산화제인 SOD의 발현정도를 알아봄으로써 질환조직 내의 산화자극 정도를 평가해 보고자하였다. 전남대학교 치주과에 내원한 33명의 만성 치주질환자와 20명 의 임상적으로 건강한 대상으로부터 조직을 얻어 Cu/Zn-SOD와 Mn-SOD, EC-SOD를 이용한 면역조직화학 염색을 시행하였다. 임상적 소견과 조직학적 소견이 일치하지 않아 조직학적 소견을 기준으로 건강한 조직, 경도, 중등도, 중도 치주질환 조직으로 그룹을 나누고 완전한 상피와 결합조직을 가진 27개의 표본에 대한 분석을 시행하였다. 치주질환 조직에서 건강한 조직에 비해 Cu/Zn-SOD가 상피의 기저층과 상피에 근접한 결합조직에서 발현되고 Mn-SOD는 염증이 증가함에 따라 크게 상피의 과립증과 각화층, 그리고 상피에 근접한 결합조직에서 발현됨으로써 활성산소종이 치주조직 파괴에 관여한다는 것을 알 수 있었다. 세 아형 모두 혈관주위에서 발현되었고 특히 EC-SOD는 작은 모세혈관주위에서만 발현되었으나 염증에 의해 혈관벽이 두꺼워지고 혈관 수가 증가한 곳에서 뚜렷하게 염색되었다. 이번 연구는 염증성 치주조직내 증가된 SOD의 활성이 치주질환자의 산화자극 정도와 관련되어 있음을 시사하였다.
Kim, Sung-Hyun;Kim, Myoung-Ok;Lee, Sang-Gyu;Ryoo, Zae-Young
Reproductive and Developmental Biology
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v.30
no.4
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pp.229-234
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2006
We have generated transgenic mice that expressed mouse extracellular superoxide dismutase (EC-SOD) in their skin. In particular, the expression plasmid DNA containing human keratin K14 promoter was used to direct the keratinocyte-specific transcription of the transgene. To compare intron-dependent and intron-independent gene expression, we constructed two vectors. The vector B, which contains the rabbit -globin intron 2, was not effective for mouse EC-SOD overexpression. The EC-SOD transcript was detected in the skin, as determined by Northern blot analysis. Furthermore, EC-SOD protein was detected in the skin tissue, as demonstrated by Western blot analysis. To evaluate the expression levels of EC-SOD in various tissues, we purified EC-SOD from the skin, lungs, brain, kidneys, livers, and spleen of transgenic mice and measured its activities. EC-SOD activities in the transgenic mice skin were approximately 7 fold higher than in wild-type mice. These results suggest that the mouse overexpressing vector not only induces keratinocyte-specific expression of EC-SOD, but also expresses successfully functional EC-SOD. Thus, these transgenic mice appeared to be useful for the expression of the EC-SOD gene and subsequent analysis of various skin changes, such as erythema, inflamation, photoaging, and skin tumors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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