Biomass is originally photosynthesized from inorgainic compounds such as $CO_2$, minerals, water and solar energy. Recent studies have shown that anaerobic bacteria have the ability to convert recalcitrant biomass such as cellullosic or chitinoic materials to useful compounds. The biomass containing agricultural waste, unutilized wood and other garbage is expected to utilize as feed, food and fuel by microbial degradation and other metabolic functions. In this study we isolated several anaerobic, cellulolytic and chitinolytic bacteria from rumen fluid, compost and soil to study their related enzymes and genes. The anaerobic and cellulolytic bacteria, Clostridium thermocellum, Clostridium stercorarium, and Clostridium josui, were isolated from compost and the chitinolytic Clostridium paraputrificum from beach soil and Ruminococcus albus was isolated from cow rumen. After isolation, novel cellulase and xylanase genes from these anaerobes were cloned and expressed in Escherichia coli. The properties of the cloned enzymes showed that some of them were the components of the enzyme (cellulase) complex, i.e., cellulosome, which is known to form complexes by binding cohesin domains on the cellulase integrating protein (Cip: or core protein) and dockerin domains on the enzymes. Several dockerin and cohesin polypeptides were independently produced by E. coli and their binding properties were specified with BIAcore by measuring surface plasmon resonance. Three pairs of cohesin-dockerin with differing binding specificities were selected. Two of their genes encoding their respective cohesin polypeptides were combined to one gene and expressed in E. coli as a chimeric core protein, on which two dockerin-dehydrogenase chimeras, the dockerin-formaldehyde dehydrogenase and the dockerin-NADH dehydrogenase are planning to bind for catalyzing $CO_2$ reduction to formic acid by feeding NADH. This reaction may represent a novel strategy for the reduction of the green house gases. Enzymes from the anaerobes were also expressed in tobacco and rice plants. The activity of a xylanase from C. stercorarium was detected in leaves, stems, and rice grain under the control of CaMV35S promoter. The digestibility of transgenic rice leaves in goat rumen was slightly accelerated. C. paraputrificum was found to solubilize shrimp shells and chitin to generate hydrogen gas. Hydrogen productivity (1.7 mol $H_2/mol$ glucos) of the organism was improved up to 1.8 times by additional expression of the own hydrogenase gene in C. paraputrficum using a modified vector of Clostridiu, perfringens. The hydrygen producing microflora from soil, garbage and dried pelletted garbage, known as refuse derived fuel(RDF), were also found to be effective in converting biomass waste to hydrogen gas.
Previous studies on genetic transformation of chrysanthemum using cold regulated gene (BN115) have been conducted and the PCR and Real-Time PCR based method to determine the presence of the transferred cold regulated gene in the chrysanthemum was established. To check whether over-expression of BN115 gene in transgenic chrysanthemum will enhance their tolerance to cold stress, the transgenic chrysanthemum were grown under low temperature condition and several cold signalling including growth characteristics, stoma size and shape, SPAD value and ion leakage test were investigated. The transgenic chrysanthemum in the low temperature growth chamber grow much faster in term of the height, number and size of the leaves than those of wild-type plants and damage of transgenic plant caused by the low temperature was much less than that of wild-type plants. The stoma type and size of transgenic plant leaves grown at $5^{\circ}C$ were much similar to of wild-type plant cultured on $25^{\circ}C$ It has been found that SPAD value of transgenic plants was much higher than those of wild-type, but the EC density being lower under low temperature condition.
This study was carried out to evaluate neutralization effects against WSSV using antiserum produced from recombinant envelop protein, rVP466 of WSSV. The VP466 gene of WSSV was cloned into pCold I expression vector and rVP466 was expressed in E. coli RIPL. The antiserum against rVP466 was produced in white rabbits (New Zealand white rabbit). The specific immunoreactivity to the antigen, rVP466, was confirmed by Western blot. The constant amounts of WSSV at $1{\times}10^4$ diluted stocks were mixed with various antiserum concentrations and then injected to the muscle of shrimp, Penaeus chinensis, for the neutralization challenge. The shrimps challenged with WSSV as a positive control and those with the mixture of WSSV and preimmune serum as a preimmune control showed 100% cumulative mortality at 17 days post challenge and 83% at 25 days post challenge, respectively. The shrimps challenged with 3 different mixtures of WSSV and rVP466 antiserum at ratios of 1:0.01, 1:0.1 and 1:1 showed 73%, 53% and 46% cumulative mortalities at 25 days post challenge, respectively. These results indicated that WSSV could be neutralized by the rVP466 antiserum. These results suggest that envelop protein VP466 is involved in the initial step of WSSV infection in shrimp.
Human rotavirus is a causative agent of acute diarrhea among children. The artificial gene encoding the truncated $VP8^*$ protein of human rotavirus A (serotype 1 strain WA) was synthesized according to the Escherichia coli codon preference. The synthetic $VP8^*$ gene also possessed the NdeI and HindIII restriction sites for the convenient in-frame cloning for translation and a 6-histidine tag at C-terminus for Ni+ affinity purification. Molecular weight of the truncated $VP8^*$ protein deduced from the nucleotide sequences of the artificial gene was a 19.7-kDa. This synthetic $VP8^*$ DNA fragment was inserted into the pT7-7 expression vector and transformed into E. coli BL21 (DE3). Transformants harboring the synthetic gene encoding the $VP8^*$ protein was induced by supplement of a final concentration of 0.05 mM ITPG at $20^{\circ}C$. Protein crude extract from the E. coli transformants was subjected to Western blotting with the mouse anti-rotavirus capsid antibody, showing ~20-kDa $VP8^*$ protein band. The truncated $VP8^*$ protein band was also observed by Western blotting using the rabbit polyclonal antibody serum made against the truncated $VP8^*$ protein. This study suggested that the synthetic gene could be used as an easy way to produce the antigenic vaccine candidate for control of virus-associated diseases or to develop antibodies for diagnostic purpose.
Kim, Joonmo;Jung, Eun-Young;Jang, Kyung-Lib;Min, Do-Sik
Journal of Life Science
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v.13
no.5
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pp.551-558
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2003
Hepatitis C Virus (HCV) is associated with a severe liver disease and increased frequency in the development of hepatocellular carcinoma. Overexpression of HCV core protein is known to transform fibroblast cells. Phospholipase D (PLD) activity is commonly elevated in response to mitogenic signals, and PLD has been also reported to be overexpressed and hyperactivated in some human cancer. The aim of this study was to understand how PLD can be regulated in HCV core protein-transformed NIH3T3 mouse fibroblast cells. We observed that in unstimulated state, basal PLD activity was higher in NIH3T3 cells overexpressing HCV core protein than in vector-transfected cells. Although expression of PLD and protein kinase C (PKC) in core protein-transformed cells was similar with that of control cells, phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA), which is known to activate PKC, stimulated significantly PLD activity in core protein-transformed cells, compared with that of the control cells. PLD activity assay using PKC isozyme-specific inhibitor, and PKC translocation experiment showed that PKC-$\delta$ was mainly involved in the PMA-induced PLD activation in the core-transformed cells. Taken together, these results suggest that PLD might be implicated in core protein-induced transformation.
The efficient fermentative production of L-threonine fermentation was achieved by using Escherichia coli MT201, transformed a plasmid carrying pyruvate carboxylase gene. It is an attempt to supply oxaloacetate to the L-threonine biosynthetic pathway. In order to improve the L-threonine productivity of E. coli MT201, a plasmid pPYC which is an expression vector of the pyruvate carboxylase gene of Coryne-bacterium glutamicum, was introduced. When E. coli MT/pPYC was incubated with medium containing only glucose as a carbon source, both the cell growth and L-threonine production were reduced, compared to the results from fermentation of E. coli MT201. In order to circumvent this effect, we attempted the addition of a mixed carbon source, composed of glucose and sodium citrate at a ratio of 1.5:3.5. It was shown that L-threonine production and cell growth (OD660) with E. coli MT/pPYC reached up to 75.7 g/l and 48, respectively, at incubation for 75 hr under fed-batch fermentation conditions. It is assumed that overproduction of L-threonine by anaplerotic pathway leads unbalance of TCA cycle and sodium citrate might playa role to recover normal TCA cycle.
Shafiee, Sayed Mohammad;Rasti, Mozhgan;Seghatoleslam, Atefeh;Azimi, Tayebeh;Owji, Ali Akbar
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.16
no.9
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pp.3723-3727
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2015
The p53 tumor suppressor protein is a principal mediator of growth arrest, senescence, and apoptosis in response to a broad array of cellular damage. p53 is a substrate for the ubiquitin-proteasome system, however, the ubiquitin-conjugating enzymes (E2s) involved in p53 ubiquitination have not been well studied. UBE2Q1 is a novel E2 ubiquitin conjugating enzyme gene. Here, we investigated the effect of UBE2Q1 overexpression on the level of p53 in the MDA-MB-468 breast cancer cell line as well as the interaction between UBE2Q1 and p53. By using a lipofection method, the p53 mutated breast cancer cell line, MDA-MB-468, was transfected with the vector pCMV6-AN-GFP, containing UBE2Q1 ORF. Western blot analysis was employed to verify the overexpression of UBE2Q1 in MDA-MB-468 cells and to evaluate the expression level of p53 before and after cell transfection. Immunoprecipitation and GST pull-down protocols were used to investigate the binding of UBE2Q1 to p53. We established MDA-MB-468 cells that transiently expressed a GFP fusion proteins containing UBE2Q1 (GFP-UBE2Q1). Western blot analysis revealed that levels of p53 were markedly lower in UBE2Q1 transfected MDA-MB-468 cells as compared with control MDA-MB-468 cells. Both in vivo and in vitro data showed that UBE2Q1 co-precipitated with p53 protein. Our data for the first time showed that overexpression of UBE2Q1can lead to the repression of p53 in MDA-MB-468 cells. This repression of p53 may be due to its UBE2Q1 mediated ubiquitination and subsequent proteasome degradation, a process that may involve direct interaction of UBE2Q1with p53.
The CryIIA gene encoding the insecticidal crystal protein of Bacillus thuringiens!s subsp. kurstalri HD-l has been cloned in Escherichia col!, and its nucleotide sequences were determined completely. 5kb Hindlli fragment harboring CryIIA gene was screened in the large ca. 225kb plasmid DNA by southern blot. HindlIT digested 5kb fragment was ligated into pUC19 and transformed in E. coli. The 4kb BamHI-HindlIT fragment containing the CryIIA gene was subcloned and named pSKIIA. DNA sequence analysis demonstrates that pSKIIA is the gene of an operon which is comprised of Lhree open reading frames (designated orn, orf2 and or£3). The CrylIA gene is composed of 3,952bp-long BamHI-Hindill DNA restriction fragment. The orf3 code for a polypeptide of 633 amino acid residues. The protoxin protein has a predicted molecular weight of 70,780. The E. coli derived protoxin gene product is biologICally active against three species of Lepidopteran (Plu.lelia maculipennis, He/iolhis assulta, Spodoptera litura) and a species of Dip Leran( Culex pipines) larvae in bioassay.
[ $17\;{\alpha}-hydroxylase/17,20-lyase(P450_{C17})$ ] is the key enzyme mediating the conversion of progesterone to $17\;{\alpha}-hydroxyprogesterone$, ultimately to androstenedione during steroidogenesis. R. dybowskii's ovarian $P450_{C17}$ cDNA was cloned to understand the regulatory mechanism of ovarian steroidogenic pathway at the molecular level in amphibian. A 2.5kb cDNA clone encoding a single open-reading frame with a 519 deduced amino acid was isolated with the screening of ovarian cDNA library. This sequence contained the three highly conserved domains as seen in $P450_{C17}$ of other species. The comparison of amino acid sequence of Rana $P450_{C17}$ with other animal's $P450_{C17}$ showed relatively high identity with 76% in Xenopus, 63% in chicken, 60% in rainbow trout, and 45% in human. Phylogenic analysis also indicated that Rana $P450_{C17}$ gene was evolutionary well conserved among vertebrate. Northern analysis indicated that the two different sizes of $P450_{C17}$ transcripts with approximately 2.5 and 3.6kb were detected in ovary tissue, but not in other tissues. The expression vector of Rana $P450_{C17}$ clearly showed the $17\;{\alpha}-hydroxylase$ activity converting the exogenous progesterone into $17\;{\alpha}-hydroxyprogesterone$ in the nonsteroidogenic COS-1 cells. Therefore, Rana $P450_{C17}$ cDNA is very useful to investigate the molecular mechanism of the ovarian steroidogenesis in amphibian.
One of the reasons to causing blood coagulation in the tissue of xenografted organs was known to incompatibility of the blood coagulation and anti-coagulation regulatory system between TG pigs and primates. Thus, overexpression of human CD73 (hCD73) in the pig endothelial cells is considered as a method to reduce coagulopathy after pig-to-non-human-primate xenotransplantation. This study was performed to produce and breed transgenic pigs expressing hCD73 for the studies immune rejection responses and could provide a successful application of xenotransplantation. The transgenic cells were constructed an hCD73 expression vector under control porcine Icam2 promoter (pIcam2-hCD73) and established donor cell lines expressing hCD73. The numbers of transferred reconstructed embryos were $127{\pm}18.9$. The pregnancy and delivery rate of surrogates were 8/18 (44%) and 3/18 (16%). The total number of delivered cloned pigs were 10 (2 alive, 7 mummy, and 1 died after birth). Among them, three live hCD73-pigs were successfully delivered by Caesarean section, but one was dead after birth. The two hCD73 TG cloned pigs had normal reproductive ability. They mated with wild type (WT) MGH (Massachusetts General Hospital) female sows and produced totally 16 piglets. Among them, 5 piglets were identified as hCD73 TG pigs. In conclusion, we successfully generated the hCD73 transgenic cloned pigs and produced their litters by natural mating. It can be possible to use a mate for the production of multiple transgenic pigs such as ${\alpha}-1,3-galactosyltransferase$ knock-out /hCD46 for xenotransplantation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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