The cell cycle is regulated by cyclin-dependent kinase (CDK)-cyclin complexes as well as other regulators. We isolated Kip-related protein 4 (KRP4) cDNA that encodes 289 amino acids including six conserved domains. To investigate the expression pattern of KRP4 as well as of other cell cycle-related genes associated with plant hormones, Arabidopsis seedlings were cultured on MS medium containing auxin or cytokinin. All seedlings treated with phytohormones displayed an increased proportion of cells in S phase. A higher proportion of cells in G2 phase was observed in seedlings treated with NAA. RT-PCR confirmed that the expression of KRP4 was decreased after treatment with phytohormones, and that CDKA and D-type cyclin transcription was increased. Additionally, mitotic cyclins were up-regulated by NAA treatment. These results suggest that KRP4 as well as other cell cycle-related genes might contribute to the control of plant growth in response to exogenous hormones.
Transgenic animal and cell line models which are recently developed and used in toxicology fields combined with molecular biological technique, are powerful tools to study the mechanism of mutation in vivo and in vitro, respectively. Transgenic models, which have exogenous DNA incorporated into their genome, carry recoverable shuttle vector containing reporter genes to assess endogenous effects or alteration in specific genes related to disease processes. The lac I and lac Z gnee most widely used as a mutational target in transgenic systems. The assay is performed by treatment with putative mutagenic agents, isolation of genomic DNA from cells or tissues, exposure the isolated DNA to in vitro packaging extract, plating and sequencing. The results from these processes provide not only mutant frequency as quantitative evaluation but also mutational spectrum as qualitative evaluation of various agents. Therefore we introduce and review the principle, detailed procedure and application of transgenic mutagenesis assay system in toxicology fields especially in mutagenesis and carcinogenesis.
We established an efficient transformation method for thermophile Geobacillus kaustophilus HTA426 using conjugative transfer from Escherichia coli of host-mimicking plasmids that imitate DNA methylation of strain HTA426 to circumvent its DNA restriction barriers. Two conjugative plasmids, pSTE33T and pUCG18T, capable of shuttling between E. coli and Geobacillus spp., were constructed. The plasmids were first introduced into E. coli BR408, which expressed one inherent DNA methylase gene (dam) and two heterologous methylase genes from strain HTA426 (GK1380-GK1381 and GK0343-GK0344). The plasmids were then directly transferred from E. coli cells to strain HTA426 by conjugative transfer using pUB307 or pRK2013 as a helper plasmid. pUCG18T was introduced very efficiently (transfer efficiency, $10^{-5}-10^{-3}\;recipient^{-1}$). pSTE33T showed lower efficiency ($10^{-7}-10^{-6}\;recipient^{-1}$) but had a high copy number and high segregational stability. Methylase genes in the donor substantially affected the transfer efficiency, demonstrating that the host-mimicking strategy contributes to efficient transformation. The transformation method, along with the two distinguishing plasmids, increases the potential of G. kaustophilus HTA426 as a thermophilic host to be used in various applications and as a model for biological studies of this genus. Our results also demonstrate that conjugative transfer is a promising approach for introducing exogenous DNA into thermophiles.
We have previously reported that 2.4 kb of L-plastin promoter (LP) could regulate the expression of adenoviral vector (AV) exogenous genes in a tumor cell specific manner. In the present study, we tested if the replication competent AdLPE1A vector results in a direct cytotoxic effect in hepatocelluar carcinoma (HCC) cells. In vitro cytotoxicity tests were carried out with replication-competent (AdLPE1A) and -incompetent (AdLPCD) LP-driven vectors. AdLPE1A is an AV in which LP was inserted 5' to the E1A and E1B genes. The AdLPCD vector contains LP and the E. coli cytosine deaminase (CD) gene in transcription unit. Exposure of cells to AdLPE1A generated a significant cytotoxic effect as compared to the control. Almost 90% of the cell had manifested the characteristic cytopatic effect on day 9 after infection of cells with 10 MOI of AdLPE1A. On the other hand, almost 35% of the cells were left when the cells had been treated with 100 MOI of AdLPCD together with 5-FC on day 9 when compared with the cells which had never been exposed neither 5-FC nor AdLPCD. These results showed that the replication competent AdLPE1A vector could kill the HepG2 cells directly by the oncolytic effect of the virus. The replication competent AV vector carrying viral E1A generated greater cytotoxic effect than the replication incompetent AV, which contains the CD prodrug activation transcription unit without E1A, in HepG2 cells.
Kim, Duk Kyung;Won, Kyeong Hye;Moon, Seung Hyun;Lee, Hak-Kyo
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.7
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pp.1044-1051
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2016
The present study compared the differential functions of two groups of adjuvants, Montanide incomplete Seppic adjuvant (ISA) series and Quil A, cholesterol, dimethyl dioctadecyl ammonium bromide, and Carbopol (QCDC) formulations, in chicken by analyzing published microarray data associated with each type of vaccine adjuvants. In the biological function analysis for differentially expressed genes altered by two different adjuvant groups, ISA series and QCDC formulations showed differential effects when chickens were immunized with a recombinant immunogenic protein of Eimeria. Among the biological functions, six categories were modified in both adjuvant types. However, with respect to "Response to stimulus", no biological process was modified by the two adjuvant groups at the same time. The QCDC adjuvants showed effects on the biological processes (BPs) including the innate immune response and the immune response to the external stimulus such as toxin and bacterium, while the ISA adjuvants modified the BPs to regulate cell movement and the response to stress. In pathway analysis, ISA adjuvants altered the genes involved in the functions related with cell junctions and the elimination of exogenous and endogenous macromolecules. The analysis in the present study could contribute to the development of precise adjuvants based on molecular signatures related with their immunological functions.
The rice blast disease caused by of Magnaporthe oryzae is one of the most destructive diseases of rice. By the microarray analysis, we profiled expression changes of genes during conidiation and found out many putative genes that are up-regulated. Among those, we first selected MGG_06399 encoding a dual-specificity tyrosine-regulated protein kinase (DYRK), homologous to YAK1 in yeast. To investigate functional roles of MoYAK1, We made ${\Delta}Moyak1$ mutants by homology dependent gene replacement. The deletion mutant showed a remarkable reduction in conidiation and produced abnormally shaped conidia smaller than those of wild type. The conidia form ${\Delta}Moyak1$ were able to develop a germ tube, but failed to form apppressoria on a hydrophobic coverslip. The ${\Delta}Moyak1$ formed appressria on a hydrophobic cover slip when exogenous cAMP was induced, but the appressoria shape was abnormal. The ${\Delta}Moyak1$ also formed appressoria abberent in shape on onion epidermis and rice sheaths and failed to penetrate the surface of the plants. These data indicate that MoYAK1 is associated with cAMP/PKA pathway and important for conidiation, appressorial formation and pathogenic development in Magnaporthe oryzae. Detailed characterization of MoYAK1 will be presented.
Seo Jung Park;Seobin Yoon;Eui-Hwan Choi;Hana Hyeon;Kangseok Lee;Keun Pil Kim
BMB Reports
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v.56
no.2
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pp.102-107
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2023
Genome editing using CRISPR-associated technology is widely used to modify the genomes rapidly and efficiently on specific DNA double-strand breaks (DSBs) induced by Cas9 endonuclease. However, despite swift advance in Cas9 engineering, structural basis of Cas9-recognition and cleavage complex remains unclear. Proper assembly of this complex correlates to effective Cas9 activity, leading to high efficacy of genome editing events. Here, we develop a CRISPR/Cas9-RAD51 plasmid constitutively expressing RAD51, which can bind to single-stranded DNA for DSB repair. We show that the efficiency of CRISPR-mediated genome editing can be significantly improved by expressing RAD51, responsible for DSB repair via homologous recombination (HR), in both gene knock-out and knock-in processes. In cells with CRISPR/Cas9-RAD51 plasmid, expression of the target genes (cohesin SMC3 and GAPDH) was reduced by more than 1.9-fold compared to the CRISPR/Cas9 plasmid for knock-out of genes. Furthermore, CRISPR/Cas9-RAD51 enhanced the knock-in efficiency of DsRed donor DNA. Thus, the CRISPR/Cas9-RAD51 system is useful for applications requiring precise and efficient genome edits not accessible to HR-deficient cell genome editing and for developing CRISPR/Cas9-mediated knockout technology.
Kim, Na Na;Choi, Young Jae;Oh, Sung-Yong;Choi, Cheol Young
Journal of Marine Life Science
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v.1
no.1
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pp.41-49
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2016
Kisspeptin (Kiss) and its cognate receptor, kisspeptin receptor (KissR; G protein coupled receptor 54, GPR54), have recently been recognized as potent regulators of reproduction in teleosts. Additionally, leptin plays an important role in energy homeostasis and reproductive function in teleosts. The purpose of this study was to examine differences in the concentration of the hormones of the Kiss/KissR system and leptin and the expression of their underlying genes, all of which are involved in the sexual maturation of female goldfish, Carassius auratus, following treatment with Kiss. The expression levels of KissR increased after the Kiss injection. Furthermore, the peptide hormone leptin also increased after the injection (in vivo and in vitro). Additionally, the expression of GnRH and GTHs (GTHα, FSHβ, and LHβ) increased in the brain and pituitary (in vitro and in vitro). These results support the hypothesis that Kiss plays important roles in the direct regulation of the hypothalamus-pituitary-gonad axis and leptin in goldfish. Therefore, we suggest that Kiss system gene expression is correlated with energy balance and reproduction.
Recently, poly-γ-glutamic acid synthetase A (pgsA) has been applied to display exogenous proteins on the surface of Lactobacillus casei or Lactococcus lactis, which results in a surface-displayed component of bacteria. However, the ability of carrying genes encoded by plasmids and the expression efficiency of recombinant bacteria can be somewhat affected by the longer gene length of pgsA (1,143 bp); therefore, a truncated gene, pgsA, was generated based on the characteristics of pgsA by computational analysis. Using murine IL-10 as an exogenous gene, recombinant Lactobacillus plantarum was constructed and the capacity of the surface-displayed protein and functional differences between exogenous proteins expressed by these strains were evaluated. Surface expression of IL-10 on both recombinant bacteria with anchorins and the higher expression levels in L. plantarum-pgsA'-IL-10 were confirmed by western blot assay. Most importantly, up-regulation of IL-1β, IL-6, TNF-α, IFN-γ, and the nuclear transcription factor NF-κB p65 in RAW264.7 cells after stimulation with Poly(I:C) or LPS was exacerbated after co-culture with L. plantarum-pgsA. By contrast, IL-10 expressed by these recombinant strains could reduce these factors, and the expression of these factors was associated with recombinant strains that expressed anchorin (especially in L. plantarum-pgsA'-IL-10) and was significantly lower compared with the anchorin-free strains. These findings indicated that exogenous proteins could be successfully displayed on the surface of L. plantarum by pgsA or pgsA', and the expression of recombinant bacteria with pgsA' was superior compared with bacteria with pgsA.
Objective: Transgenic technology is widely used for industrial applications and basic research. Systems that allow for genetic modification play a crucial role in biotechnology for a number of purposes, including the functional analysis of specific genes and the production of exogenous proteins. In this study, we examined and verified the cumate-inducible transgene expression system in chicken DF1 and quail QM7 cells, as well as loxP element-mediated transgene recombination using Cre recombinase in DF1 cells. Methods: After stable transfer of the transgene with piggyBac transposon and transposase, transgene expression was induced by an appropriate concentration of cumate. Additionally, we showed that the transgene can be replaced with additional transgenes by co-transfection with the Cre recombinase expression vector. Results: In the cumate-GFP DF1 and QM7 cells, green fluorescent protein (GFP) expression was repressed in the off state in the absence of cumate, and the GFP transgene expression was successfully induced in the presence of cumate. In the cumate-MyoD DF1 cells, MyoD transgene expression was induced by cumate, and the genes controlled by MyoD were upregulated according to the number of days in culture. Additionally, for the translocation experiments, a stable enhanced green fluorescent protein (eGFP)-expressing DF1 cell line transfected with the loxP66-eGFP-loxP71 vector was established, and DsRed-positive and eGFP-negative cells were observed after 14 days of co-transfection with the DsRed transgene and Cre recombinase indicating that the eGFP transgene was excised, and the DsRed transgene was replaced by Cre recombination. Conclusion: Transgene induction or replacement cassette systems in avian cells can be applied in functional genomics studies of specific genes and adapted further for efficient generation of transgenic poultry to modulate target gene expression.
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