Effect of mannose on auxin-induced ethylene production in corn (Zea mays L.) coleoptiles was studied. Auxin induced ethylene production decreased in proportion to mannose concentrations. The inhibitory effect of mannose appeared after 2 h of incubation. Ethylene production was significantly depressed by mannose at high concentration (10-5M-10-4M) of indole acetic acid (IAA), but not at low concentrations (10-8M-10-6M). The inhibition of auxin-induced ethylene production by mannose was specific, since other sugars such as galactose, glucose, sucrose and mannitol did not have an inhibitory effect. In an effort to elucidate mechanisms of mannose the effect on the auxin induced ethylene production, effect of the sugar on ACC synthase activity and ACC induced ethylene production was studied. Mannose failed to inhibit ACC mediated ethylene production, but decreased both the ACC content and ACC synthase activity in the tissue. These results suggest that the inhibitory effect of mannose on auxin induced ethylene production results from suppression of auxin induction of ACC synthase.
The effect of Ca2+ on auxin-induced ehtylene production in etiolated mungbean (Vigna radiata W.) hypocotyls was studied. Auxin-induced ethylene production by mungbean seedlings which had been germinated in the presence of 5-10mM Ca2+ (High Ca2+ ; HC) is greater than that by seedlings which had been germinated in distilled water (Low Ca2+ ; LC). The effect of Ca2+ on auxin-induced ethylene production was greatly increased after 12hr of incubation period. The stimulation of auxin-induced ethylene production by Ca2+ was specific, since divalent cations, such as Mg2+ and Mn2+ did not enhance auxin-induced ethylene production. Calcium also promoted ethylene evoluation induced by methionine and 1-Aminocyclopropane-1-carboxylic acid(ACC). The effect of Ca2+ on auxin-induced ethylene production was not caused by increase in free IAA or ACC contents of hypocotyl tissue. Dimethyl sulfoxide and Triton X-100, that disrupts the emembranes, inhibited ethylene production to a greater extent in LC segments than in HC segments. Addition of Ca2+ to the incubation medium for LC segments resulted in enchancement of ethylene production probalby because the membrane integrity is supported under these conditions. Comparison of activity of Ethylene Forming Enzyme(EFE) in LC and HC hypocotyl segments indicated that the enzyme activity of HC was about 2 times higher than that of L.C. It is suggested that Ca2+ increases the activity of plasma membrane-bound EFE through its stabilizing effect onn the membrane, which in turn brings about promotion of ethylene production.
The ability of several auxin analogs to induce ethylene production was tested in the corn coleoptile. The synthetic auxins 1-naphthaleneacetic acid (1-NAA) and 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid (2, 4-D) had strong stimulatory effects on ethylene induction surpassing that of IAA. Both 2-naphthalaneacetic acid (2-NAA) and 2, 6-dichlorophenoxy acetic acid (2, 6-D), structural analogs of these auxins, respectively, were found to be inactive. Treatment with NPA, a strong inhibitor of polar auxin transport, led to drastic increase in IAA-induced ethylene production while it has bo effect on ethylene production induced by 1-NAA. A positive correlative existed between intracellular auxin level and ethylene production.
Effects of methyl jasmonate (MeJA) on ethylene production in tomato(Lycopersicon esculentum Mill.) hypocotyl segments and fruits were studied. Ethylene production in tomato hypocotyl segments was inhibited by the increasing concentratons of MeJA, and 450 $\mu$M of MeJA showed 50% inhibitory effect. Time course data indicate that this inhibitory effect of MeJA appeared after 3 h of incubation period and continued until 24 h. Inhibition of ethylene producton by MeJA was due to the decrease in 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid(ACC) synthase activity. However, MeJA treatment had no effect on ACC oxidase activity and the accumulaton of ACC oxidase mRNAs. MeJA also inhibited auxin-induced ethylene production by decreasing in ACC synthase activity. In contrast, MeJA stimulated ethylene production in tomato fruits. When 30 $\mu$L/mL MeJA was treated in a gaseous state, ethylene production doubled and this stimulating effect continued until 4 days. To investigate the mechanisms of MeJA on ethylene production, ACC synthase and ACC oxidase activities were examined after MeJA treatment. MeJA increased the activities of both ACC synthase and ACC oxidase, and induced ACC oxidase mRNA accumulation. These data suggest that MeJA plays distinct roles in the ethylene production in different tomato tissues. It is possible that MeJA affects differently the mechanisms of signal transuction leading to the ethylene biosynthesis.
The physiological effects of oligogalacturonic acid (OGA:D. P. 6-7), a product of acid hydrolysis of polygalacturonic acid (PGA), on ethylene biosynthesis in mung bean (Vigna radiata W.) hypocotyl segments was studied. Among PGA, OGA and monogalacturomic acid (MGA), only OGA stimulated ethylene production in mung bean hypocotyl segments, and the most effective concentraton of OGA was 50$\mu\textrm{g}$/mL. Time course data indicated that this stimulatiion effect of OGA appeared after 90 min incubation period and continued until 24 h. When indol-3-acetic acid (IAA) and 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC) were treated with OGA to investigate the mechanism of OGA on ethylene production, they did not show synergistic effects on ethylene production. The stimulation of ethylene production by OGA was due to the increase of in vivo ACC synthase activity, but OGA treatment had no effect of in vivo ACC oxidase activity. The effect of aminoethoxy vinyl glycine (AVG) and Co2+, the inhibitor of ethylene synthesis, was siminished a little by the OGA, but the treatment of Ca2+, known to increase ACC, with OGA did not increase the ethylene production, this effect seems to be specific for Ca2+ because other divalent cation, Mg2+, did not show the inhibition of OGA-indyuced ethylene production. It is possible that the OGA adopts a different signal transduction pathway to the ethylene bioxynthesis.
In order to investigate the effect of phytochromes on the regulation of ethylene biosynthesis, we measured the ethylene production and the activities of enzymes involved in ethylene biosynthesis using phytochrome mutants such as $phyA$, $phyB$, and $phyAB$ of Arabidopsis. The ethylene production was decreased in mutants grown in white light. In particular, double mutants showed a 37% decrease compared to the wild type in ethylene production. When Arabidopsis roots were grown in the dark, mutants did not show a decrease in ethylene production; however, production was significantly decreased in the double mutant grown in red light. Only $phyB$ did not show the decrease in the ethylene production in far-red light. Unlike the ACO activities, the ACS activities of mutants showed the same pattern as the ethylene production under several light conditions. The results of ACS activities confirmed the expression of the ACS gene by RT-PCR analysis. The decrease of ethylene production in mutants was due to the lower activity of ACC synthase, which converts the S-adenosyl-L-methionine (AdoMet) to 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC), the precursor of ethylene. These results suggested that both phytochrome A and B play an important role in the regulation of ethylene biosynthesis in Arabidopsis roots in the conversion step of AdoMet to ACC, which is regulated by ACS.
Fruits are subjected to a variety of vibration stress during the transportation from a production area to markets. Vibration inputs are transmitted from the transporting vehicle through the packaged fruit. And the steady state vibration input may cause serious internal damage of fruit. Product quality of fruits declines by various factors while they are stored right after harvesting and among the substance in charge of post ripening action, ethylene ($C_2H_4$) biosynthesis increases fruits' respiration process after harvesting and decreases storage expectancy. Ethylene production of apples rapidly increases while storage duration becomes longer. This tendency is much clearer for the apples with vibration stress at input acceleration level. When there was no vibration stress, change in ethylene production level of apples are not very large during storage. Ethylene production rates inside the gas collecting container increased significantly ($p{\leq}0.05$) after 24 hours storage, particularly for apples with vibration stress ($0.7{\mu}l/kg{\cdot}hr$ (1st stack), $0.78{\mu}l/kg{\cdot}hr$ (2nd stack), $0.96{\mu}l/kg{\cdot}hr$ (3rd stack)); whereas less ethylene was produced in control apples ($0.18{\mu}l/kg{\cdot}hr$ during storage. Also ethylene production rates of apples according to the stack position were significantly different ($p{\leq}0.05$). The vibration stress clearly accelerated the degradation of apple quality during storage, resulting in increased ethylene production.
Ethylene gas classified as one of five major plant hormones plays an important role in various plant metabolism. The precise analysis of ethylene production of plants or plant parts is a valuable research procedure because knowledge of ethylene production facilitates measures of the physiological activity within the tissue. This paper describes procedures for analyzing ethylene from plant tissues by gas chromatography and discusses problems associated with extracting gas samples either by introducing a vacuum to plant samples or by using a hypodermic syringe. Introduced are a continuous flow system for efficient analysis and an automated system for sampling, analyzing, calculating and recording ethylene production data.
The deep irrigation of rice plants brings about some beneficial effects such as reduced tiller production which results in the formation of bigger panicles, prevention of chilling injury, reduced weed growth, etc. The present study was carried out to examine the involvement of ethylene in the suppression of tiller production due to deep water irrigation in rice (cv. Dongjinbyeo). The ethylene production was induced in leaf sheath within 24 hours after the deep water irrigation and has increased even until 30 days after the treatment, recording 4.5-fold increase as compared to the shallow-irrigated rice plants. In the deep water irrigated rice plants, ethylene was accumulated to a high concentration in the air space of submerged leaf sheath as the irrigated water deterred the diffusion of ethylene out of the leaf sheath and ethylene biosynthesis was accelerated by the deep irrigation as well. The ethylene concentration recorded 35-fold increase in the deep-irrigated rice plants for 35 days. The tiller production was reduced significantly by the deep irrigation with water, the tiller bud, especially tertiary tiller bud differentiation being suppressed by the deepwater irrigation treatment, whereas the rice plants deep-irrigated with solutions containing $10^{-5}$ M or $10^{-6}$ M silver thiosulfate (STS), an action inhibitor of ethylene, showed the same or even higher production of tillers than those irrigated shallowly with water. This implies that the ethylene is closely linked with the suppression of tiller production due to deep water irrigation. In conclusion, ethylene, which was induced by hypoxic stress and accumulated in the leaf sheath due to submergence, played a key role in suppressing the tiller production of the deepwater irrigated rice.
Calcium promoted ethylene production from mungbean hypocotyl segments incubated in the presence of either auxin or cytokinin (kinetin). Time course studies indicated that the calcium effect on ethylene production had a longer latent period (about 6 h) in combination with kinetin than with auxin. Studies on the effects of agents that are known to interfere with either action or transport (uptake) of calcium on ethylene biosynthesis indicated different patterns between auxin- and kinetin-treated tissues. Auxin-induced ethylene production was inhibited by the calmodulin inhibitor, trifluoperazine (TFP), and this inhibition was overcome by high concentrations of calcium applied, but TFP had no significant effect on kinetin-induced ethylene production regardless of calcium in the medium. The calcium channel blocker, verapamil, inhibited auxin-induced, but had little effect on kinetin-induced, ethylene producton. In vivo activity of "ethylene forming enzyme (EFE)" was found to be substantially promoted by calcium treatment. The enzyme activity was further increased by kinetin when segments were simultaneously treated with calcium, but auxin did not have such an effect.an effect.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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