The cholinesterase-inhibiting organophosphorous (OP) compounds known as nerve agents are highly toxic. The principal toxic mechanism of OP compounds is the inhibition of acethylcholine esterase (AChE) by phosphorylation of its catalytic site. The reversible competitive inhibition of AChE may prevent the subsequent OP intoxication. In this study, three-dimensional quantitative structure-activity relationship (3D-QSAR) was performed to investigate the relationship between the 29 compounds with structural diversity and their bioactivities against AChE. In particular, predictive models were constructed using the comparative molecular field analysis (CoMFA) and comparative molecular similarity indices analysis (CoMSIA). The results indicate reasonable model for CoMFA ($q^{2}=0.453,\;r^{2}=0.697$) and CoMSIA ($q^{2}=0.518,\;r^{2}=0.696$). The presence of steric and hydophobic group at naphtyl moiety of the model may lead to the design of improved competitive inhibitors for organophosphorous intoxication.
A sensory element against carbaryl, as a widely used pesticide was prepared based on adsorbed acetylcholine esterase (AChE) from Torpedo california. Octadecyl was substituted on macro-porous silica, confirmed by infra-red (IR) spectroscopy and quantitatively estimated through thermo-gravimetric analysis (TGA). Immobilization of the enzyme was achieved by adsorption on this support. Activity of the immobilization product was measured as a function of the loaded enzyme concentration, and maximum binding capacity of the support was estimated to be 43.18 nmol.mg-1. The immobilized preparations were stable for more than two months at storage conditions and showed consistency in continuous operations. Possible application of the immobilized AChE for quantitative analysis of carbaryl is proposed in this study.
The comparative study of enzymes that catalyze a similar reactions but have different substrate spectrum and/or stereospecificity is a powerful approach to understanding the reaction mechanism between the relative enzymes, and it was also an useful tool to cloning the related enzyme, without the typical cloning from DNA library of genomic pools. For this purpose, we conducted an approach that the comparison at the molecular and protein level of esterases, from various sources including a previously identified (S)-stereospecific esterase of Pseudomonas sp. ES1. As expected, we found an esterase family genes that shared a high similarity at the protein and genetic level in the identical genus Pseudomonad. The striking structural and biochemical identity strongly suggested the family genes to be an identical one. We, hence, aligned the family genes and designated a degenerated primer for PCR-cloning using six Pseudomonas strains as templates. As a result, a recombinant esterase from Pseudomonas fluorescens KCTC 1767 was cloned and high-level expressed with high selectivity to (R,S)-ketoprofen ethyl ester. The enzyme exhibited a high ester-hydrolyzing activity to (S)-ketoprofen but did not hydrolyzed the opposite stereoisomer. Further characteristics were discussed in our presentation.
KIM JEONG-NYEO;SEO MYUNG-JI;CHO EUN-AH;LEE SANG-JAE;KIM SEONG-BO;CHEIGH CHAN-ICK;PYUN YU-RYANG
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권5호
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pp.1067-1072
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2005
A metagenomic library was constructed using a fosmid vector, and total genomic DNA was extracted directly from soil at Cisolok (hot spring area, Indonesia). This library was composed of 10,214 clones and screened for lipolytic enzyme on tributyrin agar plates. An esterase gene (estMa) was subcloned and sequenced from a positive lipolytic active clone. Esterase EstMa was encoded by a 954-bp open reading frame and showed low ($11-33\%$) amino acid similarity to known esterases. The amino acid sequence analysis demonstrated that the enzyme is a new member of lipolytic enzyme family VI. The estMa gene encodes a preprotein of 317 amino acids with a predicted molecular mass of 34,799 Da. The purified enzyme exhibited optimal activity at $50^{\circ}C$ and pH 6.5. The $K_m,\;and\;V_{max}$ values of EstMa for the hydrolysis of p-nitrophenyl valerate were $45.3\;{\mu}M$ and 4.45 U/mg, respectively.
내산성(耐酸性) pectinase를 강하게 생성(生成)하는 Aspergillus속(屬)의 한 균주(菌株)에 대한 P.E.의 효소학적(酵素學的) 성질(性質)을 검토(檢討)하였다. 본효소(本酵素)의 최적반응(最適反應) pH는 4.2부근이며 최적반응온도最適反應溫度는 $45^{\circ}C$ 부근이고 PH $2.2{\sim}4.6$에서 안정(安定)하며 pH $5.4{\sim}8.0$에서도 비교적(比較的) 안정(安定)하여 20%정도의 효소실활(酵素失活)에 지나지 않았으므로 pH에 대해 비교적 안정(安定)한 것으로 나타났다. 열(熱)에 대한 안정성(安定性)은 $50^{\circ}C$에서 1시간 처리(處理)로 극히 안정(安定)하며 $70^{\circ}C$에서 30분(分)처리로 완전히 실활(失活)했다. 본효소(本酵素) 작용(作用)에 있어서 NaCl은 조해작용(阻害作用)을 나타냈으며 pH가 낮아질수록 조해(阻害)가 뚜렷해서 pH 7.0에서는 거의 영향이 없으나 1.0M NaCl농도일 때 pH 3.0에서는 47%, pH 4.0에서는 28%의 상대활성조해(相對活性阻害)를 나타내었다. sucrose에 대한 영향을 본 결과 본효소(本酵素)에 대하여 거의 영향이 없으나 고농도(高濃度)에서는 약간의 조해(阻害)를 보였다.
In an effort to isolate novel strains expressing a thermostable esterase that hydrolyzed the rac-ketoprofen ethyl ester to ketoprofen in the stereospecific manner, we screened various soils and composts from broad ecological niches in which the activity was expected to be found. Three hundreds of microbial strains were tested to determine their ester-hydrolyzing activity by using an agar plate containing insoluble tributyrin as an indicative substrate, and then further screened by activity on the (R,S)-ketoprofen ethyl ester. Twenty-six strains were screened primarily at high growth and incubation temperature and further compared the ability to ethyl ester-hydrolyzing activity in terms of conversion yield and chiral specificity. Consequently, a strain JYl44 was isolated as a novel strain that produced a (R)-stereospecific esterase with high stability and systematically identified as a Bacillus stearothermophilus JY144. The enzyme indeed stables at a broad range of temperature, upto 65 $^{\circ}C$, and pH ranging from 6.0 to 10.0. The optimal temperature and pH for enzymatic conversion were 50 $^{\circ}C$ and 9.0, respectively. Based on the observations that resulted a poor cell growth, and enzyme expression in wild type strain, we further attempted the gene cloning into a general host Escherichia coli and determined its primary structure, concomitantly resulting a high level expression of the enzyme. The cloned gene had an open reading frame (250 amino acids) with a calculated molecular mass of 27.4 kDa, and its primary structure showed a relative high homology (45-52 %) to the esterases from Streptomyces and Bacillus strains. The recombinant whole cell enzyme could efficiently convert the rac-ketoprofen ethyl ester to (R)-ketoprofen, with optical purity of 99 % and yield of 49 %.
We have isolated a water-extracted novel regulator for blood coagulation from an earthworm, Lumbricus rubellus. As a folk remedy, the earthworm has been known to facilitate blood circulation. After complete heat inactivation of endogenous proteases in the earthworm, an anticoagulant(s) was purified through ammonium sulfate fractionation and three consecutive gel permeation chromatography of Sephacryl S-300, Sephadex G-75, and G-150 by measuring activated partial thromboplastin time (APTT) The anticoagulant was further purified to 2,800 fold with a C4 reversed-phase HPLC This activity was stable under heat ($100^{\circ}C$ for 30 min) and acidic conditions (0.4 N HCl). The effects of this partially purified anticoagulant on thrombin were observed with various substrates such as N${\alpha}$-benzoyl-DL-arginine-p-nitroanilide (BApNA), H-D-phenylalanyl-L-pipecoyl-L-arginine-p-nitroanilide (S-2238), N${\alpha}$-p-tosyl-L-arginine methyl ester (TAME), and fibrinogen as a natural substrate. Only TAME hydrolysis, due to an esterase activity of the enzyme, was inhibited among the chromogenic substrates. In addition, the anticoagulant not only inhibited the conversion of fibrinogen to fibrin but also prolonged the fibrin clot formation monitored with the in vitro coagulation test. Based on these observations, we suggest the significance of measuring the ability of antithrombotic drugs to inhibit the esterase activity of thrombin. In this report, it was also shown that the earthworm indeed contained a water-extractable, heat- and acid-stable anticoagulant which could be used as a novel antithrombotic agent.
We isolated a 10 kb Bam HI fragment originated from the chromosome of a $H_2O$$^2$-resistant mutant strain of Streptomyces coelicolor, which confer $H_2O$$^2$-resistance to S. lividance upon transformation. Among various subclones ot 10kb Bam HI fragment tested for their $H_2O$$^2$-resistant phenotype in S. lividans, a subclone containing 5.2 kb Bam HI-BglII fragment was found to be responsible for $H_2O$$^2$-resistance. The plasmid containing this 5.2 kb fragment was then transformed into S. coellicolor A3(2) at early and tested for their phenotype of $H_2O$$^2$-resistance and the change in various enzymes whose activity can be stained in the gel. We found out that the 5.2 kb insert DNA conferred $H_2O$$^2$-resisstance in S. coelicolor A3(2) at early phase of cell growth. The presence of this DNA also resulted in higher level of peroxidase compared with the wild type cell containing parental vector (pIJ702) only. Esterase activity was also higher in this clone. However, alcohol dehydrogenase activity decreased compared with the wild type. These results suggest that the presence of a gene in 5.2 kb BamHI-BglII DNA fragment causes multiple changes in S. coelicolor related to its response against hydrogen peroxide. The result also implies that not only peroxidase but also esterase may function in the defencse meahsnism agianst $H_2O$$^2$-.
Biotransformation of pharmacologically inactive lactone prodrug simvastatin (SV) into pharmacologically active simvastatin ${\beta}$-hydroxy acid (SVA) exhibits inter-species differences due to variations in amount and activity of esterase enzymes. In this study, we investigated the pharmacokinetics (PK) of SV and its metabolite SVA following oral doses of SV from controlled-release (CR) tablets and immediate-release (IR) tablets in rodent and canine animal models that features different esterase activity. In rat PK study, no SV was detected in plasma for both formulations due to rapid hydrolysis of SV into SVA by plasma esterase. Besides, no significant differences in PK parameters of SV or SVA were observed between both species. In dog PK study, the relative oral bioavailability of CR tablets in terms of SV was 72.3% compared to IR tablets. Regarding formulation differences in dogs, CR tablets exhibited significantly lower $C_{max}$ (p<0.05), and higher $T_{max}$ (p<0.01) and MRT (p<0.01) for both SV and SVA compared to IR tablets. Accordingly, CR tablets of SV with prolonged drug release profiles in both species might be a potential candidate for a more effective delivery of SV with reduced side effects. Besides, similar PK parameters of SV and SVA in both species despite variation in enzyme activities suggested involvement of equally potent biotransformation pathways in these animal species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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