Phase transition is not unique to solid state systems or homogeneous molecular systems but it is also observed in highly heterogeneous biological systems. Phase transition and phase separation in cells are recently being found to be central to many biological functions by temporarily and locally controlling the storage and exchange of certain proteins and RNAs. There are also clues suggesting them to be playing pivotal roles in the spatial organization of chromosomes into topological domains and its time-dependent control. Here we introduce early efforts to explain at the molecular level how the spatiotemporal organization of chromosomes are programmed and modulated by the sequence and chemical modifications of the DNA. Continuing works may provide a physical framework to understand the molecular level control of chromosome structure and dynamics that determine the epigenetic state and the fate of the cells.
Adenomyosis is a benign gynecological disease frequently affecting women of reproductive age. It has a negative impact on the quality of life, causing bleeding disorders, dysmenorrhea, chronic pelvic pain, and infertility. However, the molecular mechanisms involved in adenomyosis development remain unclear. This paper summarizes the reports found in the MEDLINE database on the molecular mechanisms involved in the development and progression of uterine adenomyosis. The literature search included the following terms: "adenomyosis," "adenomyoma," "pathogenesis," "molecular mechanisms," and "gynecological disorders." Only peer-reviewed, English-language journal articles were included. This review focuses on the molecular genetics, epigenetic modifications, and pivotal signaling pathways associated with adenomyosis development and progression, which will provide insights into and a better understanding of its underlying pathophysiology.
After transcription, RNAs are always associated with RNA binding proteins (RBPs) to perform biological activities. RBPs can interact with target RNAs in sequence- and structure-dependent manner through their unique RNA binding domains. In development and progression of carcinogenesis, RBPs are aberrantly dysregulated in many human cancers with various mechanisms, such as genetic alteration, epigenetic change, noncoding RNA-mediated regulation, and post-translational modifications. Upon deregulation in cancers, RBPs influence every step in the development and progression of cancer, including sustained cell proliferation, evasion of apoptosis, avoiding immune surveillance, inducing angiogenesis, and activating metastasis. To develop therapeutic strategies targeting RBPs, RNA interference-based oligonucleotides or small molecule inhibitors have been screened based on reduced RBP-RNA interaction and changed level of target RNAs. Identification of binding RNAs with high-throughput techniques and integral analysis of multiple datasets will help us develop new therapeutic drugs or prognostic biomarkers for human cancers.
DNA methylation is one of the most extensively studied epigenetic regulatory mechanisms, known to play crucial roles in various organisms. It has been implicated in the regulation of gene expression and chromatin changes, ranging from global alterations during cell state transitions to locus-specific modifications. 5-hydroxymethylcytosine (5hmC) is produced by a major oxidation, from 5-methylcytosine (5mC), catalyzed by the ten-eleven translocation (TET) enzymes, and is gradually being recognized for its significant role in genome regulation. With the development of state-of-the-art experimental techniques, it has become possible to detect and distinguish 5mC and 5hmC at base resolution. Various techniques have evolved, encompassing chemical and enzymatic approaches, as well as third-generation sequencing techniques. These advancements have paved the way for a thorough exploration of the role of 5hmC across a diverse array of cell types, from embryonic stem cells (ESCs) to various differentiated cells. This review aims to comprehensively report on recent techniques and discuss the emerging roles of 5hmC.
The nucleus, a highly organized and dynamic organelle, plays a crucial role in regulating cellular processes. During cell differentiation, profound changes occur in gene expression, chromatin organization, and nuclear morphology. This review explores the intricate relationship between nuclear architecture and cellular function, focusing on the roles of the nuclear lamina, nuclear pore complexes (NPCs), sub-nuclear bodies, and the nuclear scaffold. These components collectively maintain nuclear integrity, organize chromatin, and interact with key regulatory factors. The dynamic remodeling of chromatin, its interactions with nuclear structures, and epigenetic modifications work in concert to modulate gene accessibility and ensure precise spatiotemporal control of gene expression. The nuclear lamina stabilizes nuclear shape and is associated with inactive chromatin regions, while NPCs facilitate selective transport. Sub-nuclear bodies contribute to genome organization and gene regulation, often by influencing RNA processing. The nuclear scaffold provides structural support, impacting 3D genome organization, which is crucial for proper gene expression during differentiation. This review underscores the significance of nuclear architecture in regulating gene expression and guiding cell differentiation. Further investigation into nuclear structure and 3D genome organization will deepen our understanding of the mechanisms governing cell fate determination.
Histone modifications on major transcription factor target genes are one of the major regulatory mechanisms controlling adipogenesis. Plant homeodomain finger 2 (PHF2) is a Jumonji domain-containing protein and is known to demethylate the histone H3K9, a repressive gene marker. To better understand the function of PHF2 in adipocyte differentiation, we constructed stable PHF2 knock-down cells by using the mouse pre-adipocyte cell line 3T3-L1. When induced with adipogenic media, PHF2 knock-down cells showed reduced lipid accumulation compared to control cells. Differential expression using a cDNA microarray revealed significant reduction of metabolic pathway genes in the PHF2 knock-down cell line after differentiation. The reduced expression of major transcription factors and adipokines was confirmed with reverse transcription- quantitative polymerase chain reaction and Western blotting. We further performed co-immunoprecipitation analysis of PHF2 with four major adipogenic transcription factors, and we found that CCATT/enhancer binding protein (C/EBP)${\alpha}$ and C/EBP${\delta}$ physically interact with PHF2. In addition, PHF2 binding to target gene promoters was confirmed with a chromatin immunoprecipitation experiment. Finally, histone H3K9 methylation markers on the PHF2-binding sequences were increased in PHF2 knock-down cells after differentiation. Together, these results demonstrate that PHF2 histone demethylase controls adipogenic gene expression during differentiation.
Bae, Da-Jeong;Jun, Ji Ae;Chang, Hun Soo;Park, Jong Sook;Park, Choon-Sik
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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제83권1호
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pp.1-13
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2020
For the past three decades, more than a thousand of genetic studies have been performed to find out the genetic variants responsible for the risk of asthma. Until now, all of the discovered single nucleotide polymorphisms have explained genetic effects less than initially expected. Thus, clarification of environmental factors has been brought up to overcome the 'missing' heritability. The most exciting solution is epigenesis because it intervenes at the junction between the genome and the environment. Epigenesis is an alteration of genetic expression without changes of DNA sequence caused by environmental factors such as nutrients, allergens, cigarette smoke, air pollutants, use of drugs and infectious agents during pre- and post-natal periods and even in adulthood. Three major forms of epigenesis are composed of DNA methylation, histone modifications, and specific microRNA. Recently, several studies have been published on epigenesis in asthma and allergy as a powerful tool for research of genetic heritability in asthma albeit epigenetic changes are at the starting point to obtain the data on specific phenotypes of asthma. In this presentation, we mainly review the potential role of DNA CpG methylation in the risk of asthma and its sub-phenotypes including nonsteroidal anti-inflammatory exacerbated respiratory diseases.
Testis-derived germline stem (GS) cells can undergo reprogramming to acquire multipotency when cultured under appropriate culture conditions. These multipotent GS (mGS) cells have been known to differ from GS cells in their DNA methylation pattern. In this study, we examined the DNA methylation status of the H19 imprinting control region (ICR) in multipotent adult germline stem (maGS) cells to elucidate how epigenetic imprints are altered by culture conditions. DNA methylation was analyzed by bisulfite sequencing PCR of established maGS cells cultured in the presence of glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) alone or both GDNF and leukemia inhibitory factor (LIF). The results showed that the H19 ICR in maGS cells of both groups was hypermethylated and had an androgenetic pattern similar to that of GS cells. In line with these data, the relative abundance of the Igf2 mRNA transcript was two-fold higher and that of H19 was three fold lower than in control embryonic stem cells. The androgenetic DNA methylation pattern of the H19 ICR was maintained even after 54 passages. Furthermore, differentiating maGS cells from retinoic acid-treated embryoid bodies maintained the androgenetic imprinting pattern of the H19 ICR. Taken together these data suggest that our maGS cells are epigenetically stable for the H19 gene during in vitro modifications. Further studies on the epigenetic regulation and chromatin structure of maGS cells are therefore necessary before their full potential can be utilized in regenerative medicine.
Hox proteins containing DNA-binding homedomain act as transcription factors important for anteroposterior body patterning during vertebrate embryogenesis. However, the precise mechanisms by which signal pathways are transduced to regulate the Hox gene expression are not clear. In the course of an attempt to isolate an upstream regulatory factor(s) controlling Hox genes, protein kinase B alpha (Akt1) has been identified as a putative regulator of Hox genes through in silico analysis (GEO profile). In the Gene Expression Omnibus (GEO) dataset GDS1784 at the NCBI (National Center for Biotechnology Information) site, Hox genes were differentially expressed depending on the presence or absence of Akt1. Since it was not well known how Akt1 regulates the specific Hox genes, whose transcription was reported to be regulated by epigenetic modifications such as histone acetylation, methylation etc., the expression of Gcn5, a histone acetyltransferase (HAT), was analyzed in wild type (WT) as well as in $Akt1^{-/-}$ mouse embryonic fibroblast (MEF) cells. RT-PCR analysis revealed that the amount of Gcn5 mRNA was similar in both WT and $Akt1^{-/-}$ MEFs. However, the protein level of Gcn5 was significantly increased in $Akt1^{-/-}$ MEF cells. The half life of Gcn5 was 1 hour in wild type whereas 8 hours in $Akt1^{-/-}$ MEF. These data all together, indicate that Gcn5 is post-transcriptionally down-regulated and the protein stability is negatively regulated by Akt1 in MEF cells.
In the present study, we studied the hypermethylation of the human riboflavin transporter 2 (hRFT2) gene and regulation of protein expression in biopsies from resected tissues from Uighur cervical squamous cell carcinoma (CSCC) patients and their neighboring normal tissues. hRFT2 gene promoter region methylation sequences were mapped in cervical cancer cell line SiHa by bisulfite-sequencing PCR and quantitative detection of methylated DNA from 30 pairs of Uighur's CSCCs and adjacent normal tissues by MassARRAY (Sequenom, San Diego, CA, USA) and hRFT2 protein expression was analyzed by immunohistochemistry. In SiHa, we identified 2 CG sites methylated from all of 12CpG sites of the hRFT2 gene. Analysis of the data from quantitative analysis of single CpG site methylation by Sequenom MassARRAY platform showed that the methylation level between two CpG sites (CpG 2 and CpG 3) from CpG 1~12 showed significant differences between CSCC and neighboring normal tissues. However, the methylation level of whole target CpG fragments demonstrated no significant variation between CSCC ($0.476{\pm}0.020$) and neighboring normal tissues ($0.401{\pm}0.019$, p>0.05). There was a tendency for translocation the hRFT2 proteins from cytoplasm/membrane to nucleus in CSCC with increase in methylation of CpG 2 and CpG 3 in hRFT2gene promoter regions, which may relate to the genesis of CSCC. Our results suggested that epigenetic modifications are responsible for aberrant expression of the hRFT2 gene, and may help to understand mechanisms of cervical carcinogenesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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