Bacillus subtilis BB-1 (KFCC l1344P)으로부터 분리된 혈전용해효소 유전자 (BCF-1)를 대량발현 벡터인 pEB 벡터에 크로닝하여 순수분리 된 혈전용해효소를 rat 경구 투여하여 출혈시간, 혈액의 응고, serum의 혈전용해능 등에 대한 in vivo 실험을 실시하였으며, 혈전용해효소의 단회경구투여에 따른 독성을 검사하였다. 효소의 경구투여에 따른 rat의 출혈시간에서는 대조군에 비하여 모든 경구 투여군에서 출혈시간이 유의적으로 약 1.75배 이상 길게 나타남을 확인하였고(P<0.05), 혈액의 출혈시간 또한 활발히 진행됨을 관찰하였다. 혈액으로부터 분리된 serum의 혈전용해작용 있어서는 경구투여 후 1시간부터 채혈한 혈액 내에서 혈전용해효소의 활성이 검출되기 시작하여 3시간째까지 높은 활성을 보였으며 4시간째부터 서서히 활성이 감소하는 것을 확인하였고 혈액의 응고 역시 대조군에 비하여 경구 투여군에서 상당히 지연되는 것을 알 수 있었다. Western blot에 의한 효소 검출에서는 경구 투여군에서 30,000 Da 크기의 단일밴드를 확인하였으며, 혈전용해효소의 rat에 대한 단회경구투여 독성실험에서 중량의 변화, 장기의 이상여부, 사망률 등에서 어떠한 이상이나 병변이 발견되지 않았다. 이상의 결과로 동물실험을 통한 혈전용해 효소의 경구투여에 의한 작용을 혈액 내에서 확인 할 수 있었으며, 본 효소의 단회 경구투여 시의 독성은 전혀 없음을 확인할 수 있었다.
Dicyma sp. YCH-37이 생산하는 효모세포벽 용해효소의 성질을 검토한 결과, 각종 환원제와 금속이온에 대체로 안정하였고, guanidine-HCl을 제외한 여러 화학수식제에 대해서도 안정하였다. 배양시간, 전처리 및 배양조건에 따른 영향을 검토한 결과, 정지기 및 사멸기에 있는 효모보다는 대수증식기의 효모, 그리고 생효모에 비해 열처리된 효모가 더 잘 용균되었다. Butanol, acetone 등의 유기용매로 처리된 효모가 그렇지 않은 효모보다 용균도가 좋았으며, 0.5 M ammonium sulfate가 함유된 Yeast extract-Malt extract 배지에서 생육한 효모, 그리고 진탕배양한 효모보다 정치배양한 효모가 용균효소에 의해 더 잘 용균되었다. SDS, Triton X-100, ${\beta}-mercaptoethanol$, potassium chloride, sodium sulfite 등의 화학수식제를 효소반응액에 첨가하였을 때 기질 효모는 더 잘 용균되었다.
Park, Sung-Soo;Joo, Hwang-Soo;Cho, Seung-Il;Kim, Min-Su;Kim, Yong-Kweon;Kim, Byung-Gee
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제8권4호
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pp.257-262
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2003
A straightforward and effective method is presented for immobilizing enzymes on a microchip platform without chemically modifying a micro-channel or technically microfabricating a column reactor and fluid channel network. The proposed method consists of three steps: the reconstitution of a nitrocellulose (NC) membrane on a plane substrate without a channel network, enzyme immobilization on the NC membrane, and the assembly of another substrate with a fabricated channel network. As a result, enzymes can be stably and efficiently immobilized on a microchip. To evaluate the proposed method, two kinds of enzymatic reaction are applied: a sequential two-step reaction by one enzyme, alkaline phosphatase, and a coupled reaction by two enzymes, glucose oxidase and peroxidase, for a glucose assay.
The two-stage enzyme reactor, packed with cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) immobilized on Amberite IRA 900, coupled with ultrafiltration membrane was investigated for continuous production of cyclodextrin (CD). 5% (w/v) of soluble starch was partially cyclized, in the 0.1 l first-stage immobilized enzyme reactor, up to CD conversion yield of 10% (w/w) at retention time of 0.56hr and 1.5 units of immobilized CGTase/1g of carrier. In the second stage main immobilized enzyme reactor capacity of 1.5 l, the maximum CD conversion yield of 39% (w/v) was achieved at retention time of 2.8hr and 0.47 unit of CGTase/1 g of carrier. Unreacted residual dextrin was fractionated with ultrafiltration membrane, and then, recycled into the second-stage main bioreactor to increase the CD conversion yield. The most suitable membrane size and the volume concentration ratio (concentrate: filterate) for recycling of unreacted residual dextrin were found to be 5K dalton and 4:6, respectively. CD conversion yield was increased about 3~4% upon co-immobilization of pulluanase along with CGTase. Spent Amberite IRA 900 can be reutilized consecutively more than 3 times for immobilization of CGTase after regeneration.
Pectate lyase from alkalitolerant Bacillus sp. YA-14 is an endo-type pectate lyase which acts randomly at the $\alpha$-1, 4-galacturonan linkage, and requires calcium or strontium ions for its activity. The enzyme is active on low methyl esterified pectin, but the activity toward a high methyl esterified substrate is reduced. The apparent Km's of the enzyme toward sodium polygalacturonic acid, polygalacturonic acid, and various pectins such as apple pectin, citrus pectin, and genu pectin are 0.826 mg/ml, 0.685 mg/ml, and 1.14 mg/ml, respectively. The enzyme activity is inhibited by SDS, urea, and sodium azide, but not by various reducing reagents, such as $\beta$-mercaptoethanol, Na-thiosulfate, Na-sulfate, cystein, and L-ascorbic acid. The enzyme is inactivated by N-bromosuccinimide, $I_2, H_2O_2$. PMSF, and iodoacetate. Judging from the results of their inhibition types, we speculate that tryptophan and serine residues are directly involved in enzyme activity, while tyrosine and methionine residues are indirectly involved in its activity.
The gene encoding Thermus caldophilus GK24 polyphosphate kinase (Tca PPK) was cloned and sequenced. The gene contains an open reading frame encoding 608 amino acids with a calculated molecular mass of 69,850 Da. The deduced amino acid sequence of Tca PPK showed a 40% homology to Escherichia coli PPK, and $39\%$ to Klebsiella aerogenes PPK. The Tca ppk gene was expressed under the control of the T7lac promoter on pET-22b(+) in E. coli and its enzyme was purified about 70-fold with $36\%$ yield, following heating and HiTrap chelating HP column chromatography. The native enzyme was found to have an approximate molecular mass of 580,000 Da and consisted of eight subunits. The optimum pH and temperature of the enzyme were 5.5 and $70^{\circ}C$, respectively. A divalent cation was required for the enzyme activity, with $Mg^2+$ being the most effective.
An electrochemical bioreactor (ECB) composed of a cathode compartment and an air anode was used in this study to characterize the ethanol fermentation of Zymomonas mobilis. The cathode and air anode were constructed of modified graphite felt with neutral red (NR) and a modified porous carbon plate with cellulose acetate and porous ceramic membrane, respectively. The air anode operates as a catalyst to generate protons and electrons from water. The growth and ethanol production of Z. mobilis were 50% higher in the ECB than were observed under anoxic nitrogen conditions. Ethanol production by growing cells and the crude enzyme of Z. mobilis were significantly lower under aerobic conditions than under other conditions. The growing cells and crude enzyme of Z. mobilis did not catalyze ethanol production from pyruvate and acetaldehyde. The membrane fraction of crude enzyme catalyzed ethanol production from glucose, but the soluble fraction did not. NADH was oxidized to $NAD^+$in association with $H_2O_2$reduction, via the catalysis of crude enzyme. Our results suggested that NADH/$NAD^+$balance may be a critical factor for ethanol production from glucose in the metabolism of Z. mobilis, and that the metabolic activity of both growing cells and crude enzyme for ethanol fermentation may be induced in the presence of glucose.
An intracellular invertase was purified to homogeneity from the cell extract of an alkalophilic and thermophilic Bacillus sp. TA-11, which was classified as a new species belonging to Bacillus cereus based on chemotaxanomic and phylogenetic analyses. The purified enzyme with a recovery of 26.6% was determined to be a monomeric protein with a molecular weight of 23 kDa by SDS-PAGE and 26 kDa by gel filtration. The maximum enzyme activity was observed at pH 7.0 and $50^{\circ}C$, and the purified enzyme was stable at the pH range of 5.0 to 8.0 and below $60^{\circ}C$. $K_m$ and $V_{max}$ values of the enzyme for sucrose were 370 mM and 3.0 ${\mu}M$ per min, respectively. The enzyme activity was significantly inhibited by bivalent metal ions ($Hg^{2+}$, $Cd^{2+}$ and $Cu^{2+}$) and sugars (glucose and fructose).
The concentrations and catalytic activities of enzymes control metabolic rates. Previous studies have focused on enzyme concentrations because there are no genome-wide techniques used for the measurement of enzyme activity. We propose a method for evaluating the significance of enzyme activity by integrating metabolic network topologies and genome-wide microarray gene expression profiles. We quantified the enzymatic activity of reactions and report the 388 significant reactions in five perturbation datasets. For the 388 enzymatic reactions, we identified 70 that were significantly regulated (P-value < 0.001). Thirty-one of these reactions were part of anaerobic metabolism, 23 were part of low-pH aerobic metabolism, 8 were part of high-pH anaerobic metabolism, 3 were part of low-pH aerobic reactions, and 5 were part of high-pH anaerobic metabolism.
Food waste can be a valuable carbon source in biological nutrient removal (BNR) systems because of high C/N and C/P ratios. However, food waste should be pretreated to promote its hydrolysis rate because hydrolysis reaction would be a rate-limiting step. This study investigates the influence of the enzymatic pretreatment on acid fermentation of food waste. Solubilization of particulate matter in food waste by using commercial enzymes was examined. The acidification efficiency and the volatile fatty acids (VFAs) production potential of enzymatically pretreated food waste were also examined. The highest volatile suspended solids (VSS) reduction was obtained with an enzyme mixture ratio of 1:2:1 of carbohydrase:protease:lipase. An optimum enzyme dosage for solubilization of food waste was $0.1\%$(V/V) with the enzyme mixture ratio of 1:2:1. In the acid fermentation of enzymatically pretreated food waste, $0.1\%$(V/V) enzyme mixture dosage for pretreatment result in the maximum VFAs production and the best VFAs fraction in soluble COD(SCOD). The VFAs production at this addition level was 3.3 times higher than that of no-enzyme added fermenter. The dominant VFAs present was n-butyrate followed by acetate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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