The maize lipoxgyenase-1 is a non-traditional dual positional specific enzyme and the reaction proceeds via enzyme-initiated catalysis. Bioinformatic analysis indicated that the maize lipoxygenase-1 is structurally more similar to soybean LOX1 than pea LOXN2 in that it has an additional external loop (residues 318-351) in the carboxy-terminal catalytic domain. We analyzed the dependence of product distribution on concentration of linoleic acid and monitored the formation of hydroperoxyoctadecadienoic acid as a function of enzyme concentration. Product distribution was strongly influenced by substrate concentration, such that kinetically-controlled regioisomers were enriched and thermodynamically-controlled regioisomers were depleted at high substrate concentration. Kinetic studies indicated that the formation of hydroperoxyoctadecadienoic acid saturated rapidly in an enzyme concentration-dependent manner, which implied that reactivation by reoxidation of inactive Fe(II) failed to occur. Our results support the previously proposed enzyme-initiated catalytic mechanism of the maize lipoxgyenase-1 and reveals that a substrate molecule serves as a hydrogen atom donor in its enzyme-initiated catalysis.
By the use of multi-loop thermodynamic boxes developed here by us, we show that models of enzyme catalysis (e.g., split-site model) developed in an attempt to emphasize the importance of the reactant-state destabilization and, thus, demonstrate misleading nature of the fundamentalist position which defines Pauling's transition-state stabilization as the entire and sole source of enzyme catalytic power, should be reduced to the fundamentalist formulation which completely neglects dynamical aspects of mechanism between the reactant and the transition states and dwells only on events restricted to the reactant and transition states alone, because the splitsite (and other canonical) formulations as well as fundamentalist formulations are based, in common, on equilibrium assumptions stipulated by the thermodynamic box logics. We propose to define the equilibrium assumptions as the requisite and sufficient conditions for the fundamentalist position to enjoy its primacy as central dogma, but not as sufficient conditions for its validity, because it is subjected to contradictions presented by existing data.
Phosphatidylethanolamine N-methyltransferase (PEMT) is known to be a membrane-associated protein. However, cytosolic PEMT was detected when sufficient amounts of exogenous phospholipids were added in the incubation media. The methylation of phospholipids was measured by the incorporation of the $[^3H]-methyl$ group from S-adenosylmethionine and the methylated phospholipids were analyzed by thinlayer chromatography. The essence of the assay condition for the cytosolic enzyme was the inclusion of 200 ${\mu}g$ of each substrate, phosphatidylethanolamine (PE), phosphatidyl N-monomethylethanolamine (PME) and phosphatidyl N,N-dimethylethanolamine (PDE), in the reaction mixture of 100 ${\mu}l$. The subcellular fractionation of brain PEMT activities revealed that approximately 38.1 % for PME, 39.5% for PDE, and 22.4% for PC formation was present in the cytosolic fraction. The general properties of cytosolic PEMT were characterized and compared with those of neuronal nuclei PEMT.
With current developments in enzyme-catalyzed reactions and techniques available for rational redesign of natural biocatalysts, the enzymatic biosynthesis can become one of the most valuable Synthetic methods. Enzymatic regioselective catalysis in organic media has played a key role in pursuing asymmetric synthesis for active chiral compounds. Here, we shortly do-scribe some historical issues of the rapidly growing area, enzymatic catalysis in synthetic organic chemistry and then review researches that have been carried out in the regioselective enzymatic catalysis for the past two decades. An application of this technology to the modification of some potential target drug co m pound will be adios presented.
An, Jae-Hyung;Lee, Gha-Young;Song, Jong-Hee;Lee, Dai-Woon;Kim, Yu-Sam
BMB Reports
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v.32
no.4
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pp.414-418
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1999
A novel gene for malonyl-CoA decarboxylase was discovered in the mat operon, which encodes a set of genes involved in the malonate metabolism of Rhizobium trifolii (An and Kim, 1998). The subunit mass determined by SDS-PAGE was 53 kDa, which correspond to the deduced mass from the sequence data. The molecular mass of the native enzyme determined by field flow fractionation was 208 kDa, indicating that R. trifolii malonyl-CoA decarboxylase is homotetrameric. R. trifolii malonyl-CoA decarboxylase converted malonyl-CoA to acetyl-CoA with a specific activity of 100 unit/mg protein. Methylmalonyl-CoA was decarboxylated with a specific activity of 0.1 unit/mg protein. p-Chloromercuribenzoate inhibited this enzyme activity, suggesting that thiol group(s) is(are) essential for this enzyme catalysis. Database analysis showed that malonyl-CoA decarboxylase from R. trifolii shared 32.7% and 28.1% identity in amino acid sequence with those from goose and human, respectively, and it would be located in the cytoplasm. However, there is no sequence homology between this enzyme and that from Saccharopolyspora erythreus, suggesting that malonyl-CoA decarboxylases from human, goose, and R. trifolii are in the same class, whereas that from S. erythreus is in a different class or even a different enzyme, methylmalonyl-CoA decarboxylase. According to the homology analysis, Cys-214 among three cysteine residues in the enzyme was found in the homologous region, suggesting that the cysteine was located at or near the active site and plays a critical role in catalysis.
An enzyme, named GTP cyclohydorlase, that catalizes the hydrolytic removal of carbon No.S of GTP has been partially purified from extracts of Pseudomonas putida (IAM 1506). The enzyme exists in two molecuar weight forms : a high molecular weight form (150,000) and a low molecular weight from (40,000). The high molecular weight form has been purified 25-fold. Some of the properties of the enzyme are as follows : It functions optimally at pH8.0, and at $52^{\circ}C$. The Km value for GTP is $20{\mu}M$. Divalent cations $(Cd^{2+}\;and\;Hg^{2+})$ 2+/) at a concentration of 5mM inhibit completely the enzyme activity. No metal ion including $Mg^{2+}$ is needed for the catalysis. The enzyme is heat labile ; its half at $57^{\circ}C$ is 1.5 min. Of a number of nucleotides tested, only GDP was used to any extent as substrbte in place of GTP. One of the products of the enzyme is determined to be a dihydro-neopterin compound.
The molecular nature of aspirin hydrolysis was studied using cyclodextrin as a biomimetic model for esterase. Cyclodextrin was selected for this purpose because it meets the necessary requirements for the hydrolysis study, Dissociation constants and catalytic rates were obtained under alkaline conditions by the kinetic method.
The dependence of the catalytic properties of horseradish peroxidase on the structural changes of ionic liquids was investigated with two water-miscible ionic liquids, N-butyl-3methypyridinium tetraftuoroborate ([$BMP_y$][$BF_4$]) and 1-butyl-3-methylimidazolium methylsulfate ([BMIM][$MeSO_4$]), each of which shares an anion ($BF_4^-$) or a cation ($BMIM^+$) with 1-butyl-3-methylimidazolium tetraftuoroborate ([BMIM][$BF_4$]), respectively. The oxidation of guaiacol (2-methoxyphenol) with $H_2O_2$was used as a model reaction. In order to minimize the effect of solution viscosity on the kinetic constants of the enzymatic catalysis, the enzymatic reactions for the kinetic study were performed in water-ionic liquid mixtures containing 25% (v/v) ionic liquid at maximum. Similarly to the previously reported results for [BMIM][$BF_4$], as the concentration of [$BMP_y$][$BF_4$] increased, the $K_m$value increased with a decrease in the $k_{cat}$value: the $K_m$value increased markedly from 2.8 mM in 100% water to 12.6 mM in 25% (v/v) ionic liquid, indicating that ionic liquid significantly weakens the binding affinity of guaiacol to the enzyme. On the contrary, [BMIM][$MeSO_4$] decreased the Km value to 1.4 mM in 25% (v/v) ionic liquid. [BMIM][$MeSO_4$] also decreased $k_{cat}$more than 3-folds [from 13.8 $s^{-1}$in 100% water to 4.1 $s^{-1}$in 25% (v/v) ionic liquid]. These results indicate that the ionic liquids interact with the enzyme at the molecular level as well as at a macroscopic thermodynamic scale. Specifically, the anionic component of the ionic liquids influenced the catalysis of horseradish peroxidase in different ways.
Alanine racemase catalyzes the interconversion of L-alanine and D-alanine and plays a crucial role in spore germination and cell wall biosynthesis. In this study, alanine racemase produced by Bacillus anthracis was expressed and purified as a monomer in Escherichia coli and the importance of lysine 41 in the cofactor binding octapeptide and tyrosine 270 in catalysis was evaluated. The native enzyme exhibited an apparent $K_m$ of 3 mM for L-alanine, and a $V_{max}$ of $295\;{\mu}moles/min/mg$, with the optimum activity occurring at $37^{\circ}C$ and a pH of 8-9. The activity observed in the absence of exogenous pyridoxal 5'-phosphate suggested that the cofactor is bound to the enzyme. Additionally, the UV-visible absorption spectra indicated that the activity was pH independece, of VV-visible absorption spectra suggests that the bound PLP exists as a protonated Schiff's base. Furthermore, the loss of activity observed in the apoenzyme suggested that bound PLP is required for catalysis. Finally, the enzyme followed non-competitive and mixed inhibition kinetics for hydroxylamine and propionate with a $K_i$of $160\;{\mu}M$ and 30 mM, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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