Endotoxin tolerance reduces the capacity of monocytes to produce proinflammatory cytokines, results in cellular immune paralysis, and down-regulates the production of helper T (Th)1 type cytokines with a shift toward a Th2 cytokine response. Prostaglandin (PG)E$_2$ in the immune system also results in macrophage inactivation and the suppression of Th1 activation and the enhancement of Th2 activation. However, the inhibitory effects of PGE$_2$ on the altered polarization of the Th cell and macrophage interleukin (IL)-6 production characterized in part by cellular immune paralysis in a state of endotoxin tolerance is unclear. This study was undertaken, using indomethacin, to investigate the role of endogenous PGE$_2$ on the Th cytokines and macrophage IL-6 production in a state of endotoxin tolerance compared to those with endotoxemia mice, wherein, in this latter case, the increased production of proinflammatory cytokines and PGE$_2$ is exhibited. Endotoxemia was induced by injection of lipopolysaccharide (LPS; 10 mg/kg in saline) i.p. once in BALB/c mice, and endotoxin tolerance was induced by pretreatment with LPS (1 mg/kg in saline) injected i.p. daily for two consecutive days and then with LPS 10 mg/kg on day 4. Splenocytes or macrophages were obtained from endotoxemia and endotoxin tolerance models pretreated with indomethacin, and then cytokine production was induced by Con A-stimulated splenocytes for the Th cytokine assays and LPS-stimulated macrophages for the IL-6 assay. Our results showed that endotoxemia led to significantly reduced IL-2 and IL-4 production, to significantly increased IL-6 production, whereas interferon $(IFN)-{\gamma}$ production was not affected. Indomethacin in the case of endotoxemia markedly attenuated $IFN-{\gamma}$ and IL-6 production and didnt reverse IL-2 and IL-4 production. Endotoxin tolerance resulted in the significantly reduced production of IL-2 and $IFN-{\gamma}$ and the significantly increased production of IL-4 and IL-6. Indomethacin in endotoxin tolerance greatly augmented IL-2 production, significantly decreased IL-4 production, and slightly attenuated IL-6 production. These findings indicate that endogenous PGE$_2$ may mediate the suppressed Th1 type immune response, with a shift toward a Th2 cytokine response in a state of endotoxin tolerance, whereas endotoxemia may be regulated differentially. Also, endogenous PGE$_2$ may mediate macrophage IL-6 production in the case of endotoxemia to a greater extent than in the case of endotoxin tolerance.
Endotoxin including lipopolysaccharide (LPS) confers organ tolerance against subsequent challenge by ischemia and reperfusion (I/R) insult. The mechanisms underlying this powerful adaptive defense remain to be defined. Therefore, in this study we attempted to determine whether nitric oxide (NO) and its associated enzymes, inducible NOS (iNOS) and endothelial NOS (eNOS, a constitutive NOS), are associated with LPS-induced renal tolerance against I/R injury, using iNOS (iNOS knock-out) or eNOS (eNOS knock-out) gene-deleted mice. A systemic low dose of LPS pretreatment protected kidney against I/R injury. LPS treatment increased the activity and expression of iNOS, but not eNOS, in kidney tissue. LPS pretreatment in iNOS, but not eNOS, knock-out mice did not protect kidney against I/R injury. In conclusion, the kidney tolerance to I/R injury conferred by pretreatment with LPS is mediated by increased expression and activation of iNOS.
Kim, Jae-Yeol;Choi, Hyung-Seok;Lee, Choon-Taek;Kim, Young-Whan;Han, Sung-Koo;Min, Kyung-Up;Kim, Yoo-Young;Shim, Young-Soo;Yoo, Chul-Gyu
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.49
no.2
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pp.217-224
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2000
Background : It is well known that when macrophages are stimulated with endotoxin, they produce a wide variety of cytokine mediators, including TNF-$\alpha$ and IL-1$\beta$. However, there is an alteration in the macrophages' responsiveness when they are challenged with repeated bouts of endotoxin, termed "endotoxin tolerance" which is regarded as a self-protective phenomenon from continuous stimulation. In this study, endotoxin tolerance in the peripheral blood monocytes of sepsis patients was evaluated. Methods : Fourteen patients with organism-documented sepsis were included. The severity of illness was evaluated by APACHE II score. Peripheral blood monocytes were isolated from the patients and diluted to $1{\times}10^5$ well. After stimulation with endotoxin (LPS of E. coli O114 : B4, 100 ng/ml), they were incubated at $37^{\circ}C$ in 5% $CO_2$ incubator for 24 hours. Supernatant was collected for the measurement of TNF-$\alpha$ and IL-1$\beta$ with ELISA method. Peripheral blood monocytes of seven healthy volunteers were used as control. Results : The APACHE II score (mean$\pm$SD) of the patients at the time of blood sampling was 12.2$\pm$5.7. The primary infection foci were urinary tract infection, pneumonia, subacute bacterial endocarditis, and catheter related infection, etc. The causative organisms were gram negative rods (10 cases), gram positive cocci (6 cases) with two cases of mixed infection. Serum TNF-$\alpha$ could be measured in 4 cases with 29.9$\pm$27.7 pg/ml. Serum IL-1$\beta$was measurable in only one patient. The TNF-$\alpha$ level of supernatant of cultured peripheral blood monocytes was 2,703$\pm$2,066 pg/ml in patients and 2,102$\pm$1914 pg/ml in controls. The IL-1$\beta$level of supernatant was 884$\pm$1,050 pg/ml in patients and 575$\pm$558 pg/ml in controls. There was no difference of TNF-$\alpha$ and IL-1$\beta$ level between patients and controls. Conclusion : We cannot prove the phenomenon of endotoxin tolerance in this study. Future study needs to be focused on the more severe sepsis patients who were taken for sampling earlier. Addition of serum to the culture medium could be an another valuable option for the success of this study.
In this study, nitric oxide (NO) production in a macrophage-lymphocyte co-culture system was used to assess the cytokine producing capability of cells during endotoxin tolerance in mice. Incubation of peritoneal macrophages with interferon-$\tau$ (IFN-$\tau$) in the presence of lipopolysaccharide (LPS) augmented NO synthesis. Exogenous tumor necrosis factor-$\alpha$(TNF-$\alpha$) could also replace LPS for the stimulation of NO production. Macrophages co-cultured with splenic lymphocytes showed augmented NO synthesis by LPS alone. However, pretreatment of mice with 2.5 mg/kg LPS completely prevented the lethality and the increase of blood TNF-$\alpha$ and IFN-$\tau$ after the second challenge with a lethal dose of LPS. In addition, when macrophages prepared from LPS-tolerant mice were co-cultured with normal splenocytes, LPS also could not induce the production of NO, even in the presence of exogenous TNF-$\alpha$. Moreover, when normal macrophages were co-cultured with splenocytes obtained from LPS-tolerant mice, stimulation with LPS could not evoke the NO production enhancement. However, this down-regulation was able to reverse by exogenous IFN-$\tau$ or concanavalin A (ConA), a stimulator of IFN-$\tau$ production. Our results indicate that not only macrophages but also lymphocytes contribute to LPS tolerance. As INF-$\tau$ can enhance the expression of TNF-$\alpha$, the decrease of INF-$\tau$synthesis from lymphocytes may orchestrate with the decrease of TNF-$\alpha$ synthesis from LPS-tolerant macrophages for the production of tolerant state and the prevention of excessive inflammation. Therefore, LPS tolerance may be exploited for prophylaxis of severe sepsis in patients at risk.
Lee, Hyo-Ji;Kim, Keun-Cheol;Han, Jeong A;Choi, Sun Shim;Jung, Yu-Jin
Molecules and Cells
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v.38
no.1
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pp.26-32
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2015
Toll-like receptors (TLR) 7 and 9 transduce a cellular signal through the MyD88-dependent pathway and induce the production of inflammatory mediators against microbial nucleotide components. The repeated stimulation of TLR4 leads to endotoxin tolerance, but the molecular mechanisms of tolerance induced through the costimulation of individual TLR has not yet been established, although endosomal TLRs share signaling pathways with TLR4. In the present study, mouse macrophages were simultaneously stimulated with the TLR7 agonist, gardiquimod (GDQ), and the TLR9 agonist, CpG ODN 1826, to examine the mechanism and effector functions of macrophage tolerance. Compared with individual stimulation, the costimulation of both TLRs reduced the secretion of TNF-${\alpha}$ and IL-6 through the delayed activation of the NF-${\kappa}B$ pathway; notably, IL-10 remained unchanged in costimulated macrophages. This tolerance reflected the early induction of suppressor of cytokine signaling-1 (SOCS-1), according to the detection of elevated TNF-${\alpha}$ secretion and restored NF-${\kappa}B$ signaling in response to the siRNA-mediated abrogation of SOCS-1 signaling. In addition, the restimulation of each TLRs using the same ligand significantly reduced the expression of both TLRs in endosomes. These findings revealed that the costimulation of TLR7 and TLR9 induced macrophage tolerance via SOCS-1, and the restimulation of each receptor or both TLR7 and TLR9 downregulated TLR expression through a negative feedback mechanisms that protects the host from excessive inflammatory responses. Moreover, the insufficient and impaired immune response in chronic viral infection might also reflect the repeated and simultaneous stimulation of those endosomal TLRs.
Park, Gye-Young;Kim, Jae-Yeol;Yoo, Chul-Gyu;Kim, Young-Whan;Han, Sung-Koo;Shim, Young-Soo
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.44
no.3
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pp.601-610
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1997
Background : Monocytes/macrophages play a central role in determining the host response during Gram-negative infection through secretion of a variety of mediators after stimulation of LPS. Even though cytokine production has been shown to play an important role in host defense during sepsis, cytokine release may also lead to tissue injury. Thus, regulation of macrophage response to LPS is critical for host survival during Gram-negative sepsis. In animals exposed to nonlethal doses of endotoxin, a characteristic hyporesponsiveness to subsequent administration of endotoxin has been observed. This phenomenon was known as 'LPS tolerance'. However, little information is available regarding the underlying mechanism of LPS tolerance. Method : Peripheral blood monocyte(PBMC) was isolated from peripheral blood of normal volunteers by adhesion purification method. To evaluate the conditions to obtain LPS tolerance, preculture was carried out with LPS at 10ng/ml for 24 hours. For stimulation, culture plates were washed two times and were stimulated with LPS at $1{\mu}g/ml$ for 4, 6 and 26 hours. To assess the underlying mechanisms of LPS tolerance, autologous serum, PMA, anti-CD14 Ab, Indomethacin or $PGF_2$ were added to preculture solution respectively. Cytokine concentrations in culture supernatants were measured using ELISA for TNF-$\alpha$ and IL-8 and mRNA of TNF-$\alpha$ and IL-8 were determined by Northern blot analysis. Results : The exposure of PBMC to low dose of LPS suppressed the cytokine production and mRNA expression of TNF-$\alpha$, but not IL-8. Anti-CD14 Ab partially recovered production of TNF-$\alpha$ which was suppressed by preculture with low dose LPS. The preculture with PMA induces LPS tolerance, as preculture with low dose LPS. Conclusion : LPS tolerance to TNF-$\alpha$ is regulated pretranslationally and is influenced by protein kinase C pathway and CD14.
The transgenic tomato plants showing the insecticidal activity against the coleopteran insect larvae have been bred to the 4th generation $(R_4)$. The Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis (B.t.t.)-toxin gene and the expression were detected in the $R_4$ transgenic plants. The expression of the toxin gene conferred a coleopteran insect larvae tolerance to the transgenic tomato plants. The ploidy levels of the $R_4$ transgenic plants were diploid. The results indicated that the toxin gene was inherrited to the next generation and expressed. Such a molecular breeding can provide a method for a permanent control of insects a agronomic relevance.
In the previous studies, we isolated the compound K rich fractions (CKRF) and showed that CKRF inhibited Toll-like receptor (TLR) 4- or TLR9-induced inflammatory signaling. To extend our previous studies,1) we investigated the molecular mechanisms of CKRF in the TLR4-associated signaling via nuclear factor (NF)-${\kappa}B$, and in vivo role of CKRF for induction of tolerance in lipopolysaccharide (LPS)-induced septic shock. In murine bone marrow-dervied macrophages, CKRF significantly inhibited the induction of mRNA expression of proinflammatory mediators such as tumor necrosis factor-${\alpha}$, interleukin-6, cyclooxygenase-2, and inducible nitric oxide synthase. In addition, CKRF significantly attenuated the transcriptional activities of TLR4/LPS-induced NF-${\kappa}B$. Nuclear translocation of NF-${\kappa}B$ in response to LPS stimulation was significantly abrogated by pre-treatment with CKRF. Furthermore, CKRF inhibited the recruitment of p65 to the interferon-sensitive response element flanking region in response to LPS. Finally, oral administration of CKRF significantly protected mice from Gram-negative bacterial LPS-induced lethal shock and inhibited systemic inflammatory cytokine levels. Together, these results demonstrate that CKRF modulates the TLR4-dependent NF-${\kappa}B$ activation, and suggest a therapeutic role for Gram-negative septic shock.
Adiponectin, a hormone produced by adipose tissue, is very abundant in plasma, and its anti- and pro-inflammatory effects are reported. However, the mechanisms of these pro- and anti-inflammatory effects are not fully defined. Herein, we evaluated the dual inflammatory response mechanism of adiponectin in macrophages. Short-term globular adiponectin (gAd) treatment induced $I{\kappa}B{\alpha}$ degradation, $NF-{\kappa}B$ nuclear translocation, and $TNF-{\alpha}$ production in RAW 264.7 cells. Polymyxin B pretreatment did not block gAd-induced $I{\kappa}B{\alpha}$ degradation, and heated gAd was unable to degrade $I{\kappa}B{\alpha}$, suggesting that the effects of gAd were not due to endotoxin contamination. gAd activated IKK and Akt, and inhibition of either IKK or Akt by dominant-negative $IKK{\beta}$ ($DN-IKK{\beta}$) or DN-Akt overexpression blocked gAd-induced $I{\kappa}B{\alpha}$ degradation, suggesting that short-term incubation with gAd mediates inflammatory responses by activating the $I{\kappa}B/NF-{\kappa}B$ and PI3K/Akt pathways. Contrastingly, long-term stimulation with gAd induced, upon subsequent stimulation, tolerance to gAd, lipopolysaccharide, and CpG-oligodeoxynucleotide, which is associated with gAd-induced downregulation of IL-receptor-associated kinase-1 (IRAK-1) due to IRAK-1 transcriptional repression. Conclusively, our findings demonstrate that the pro- and anti-inflammatory responses to gAd in innate immune cells are time-dependent, and mediated by the activation of the $I{\kappa}B/NF-{\kappa}B$ pathway, and IRAK-1 downregulation, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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