The present study was to assess the in vitro viability and sexing rate of bovine embryos. Blastocysts were harvested on day 7~9 day after insemination(in vitro and in vivo), and the sex of the embryos was examined using the LAMP method. Embryo cell biopsy was carried out in a $80{\mu}l$ drop $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$ free D-PBS and, biopsied embryos viability were evaluated after more 12 h culture in IVMD culture medium. The formation of recovered embryo to expanded and hatching stages had ensued in higher of sexed embryo in vivo than in vitro (100% vs. 89%, p<0.05), and in vitro, the rates of degeneration after sexing were significantly (p<0.05) higher in vitro than in vivo(11% vs. 0.0%). The rates of the predicted sex were female 61% vs. 56%, and male 39% vs. 44% in vivo and in vitro, respectively. The rates of survival following different biopsy methods were seen between punching and bisection method in vivo and in vitro (100% vs. 89% and 100% vs, 78% respectively). Biopsy method by punching was significantly (p<0.05) higher than bisection between produced embryos in vivo and in vitro. The present data indicate that with microblade after punching for embryo sexing results in high incidence of survivability on development after embryo biopsy. It is also suggested that LAMP-based embryo sexing suitable for field applications.
This study was performed to investigate the result that in-vivo or in-vitro embryos of Hanwoo cows were transferred to Holstein cows. Seventeen Hanwoo cows were used as donors for production of in-vivo embryos and fresh hanwoo in-vivo embryos were transferred to 1,150 Holsteins. And 2 embryos were transferred to 188 Holstein recipients to produce twin calves. Diagnosis on pregnancy was performed by rectal palpation at $60\sim90$ days after transfer. The pregnancy rate of Holstein recipients was 55.8% after transfer with Hanwoo in-vivo embryos and 38.2% after transfer with Hanwoo in-vitro embryos. The delivery rate of pregnant Holstein recipients was 88.4% after transfer with Hanwoo in-vivo embryos and 75.6% after transfer with Hanwoo in-vitro embryos. The rate of delivery of Holstein recipients transferred with two Hanwoo embryos was 36.2% and the rate of twin production was 25.9%. The rate of twin production by embryo transfer with in-vivo embryos was 30.4%, whereas the fate with in-vitro embryos was 15.6%. The pregnancy rate according to the grade of corpus luteum of Holstein recipients transferred with Hanwoo in-vitro embryos was 41.5 and 36.0% for A and B grade, respectively. The pregnancy rate according to the transfer in site in the uterine lumen of recipients was 40.9 and 32.7% for anterior and middle site, respectively. The pregnancy rate according to day of embryo transfer after estrus of recipients was 45.5, 38.8 and 39.7% for day 6, day 7 and day 8, respectively. There was difference of pregnancy rate according embryo transfer technician ($30.5\sim45.8%$) individual dairy farm ($21.1\sim51.0%$). These results are supposed to indicate that the rate of pregnancy after transfer with Hanwoo embryos to Holstein recipients was similar to that within the same breed, and consequently that this method would be beneficial to enhance the productivity in Hanwoo reproduction.
This study was conducted to enhance the efficiency of embryo transfer and embryos produced in vitro according to select good quality blastocyst among in vivo or in vitro produced embryos. After middle blastocys(MB) and late blastocyst(LB) stages embryos that developed in vitro for 7∼8 days were treated hypertonic solution(380 mOsm or 600 mOsm) and the rate of development to hatched blastocyst(HB) was examined. The results obtained were summarized as follows: The proportion of embryos developed to HB was higher than that of control regardless of hypertonic solution treatment. However, it was related to culture time in hypertonic solution The propotrion of embryos developed to HB of morphologically recovered embryos in 380 nOsm solution ws higher than that of morphologically shrinked embryos. However, treatment time was not significantly different the rates of HB development. Especially, the proportion of embryos developed to HB of morphologically recovered embryos of the 30-min-treated group was significantly higher than that of control (p<0.05). The results suggest that hypertonic solution treatment should enhance the efficiency for criterion of transferable blastocyst quality.
The present study was conducted to examine the effect of antioxidant treatment during parthenogenetic activation procedure on the reactive oxygen species (ROS) levels and in vitro development of porcine parthenogenetic embryos. Porcine in vitro matured oocytes were activated by a combination of electric stimulus and 2 mM 6-dimethylaminopurine (6-DAMP) before in vitro culture. During the activation period, oocytes were treated with $50{\mu}M$${\beta}$-mercaptoethanol (${\beta}$-ME), $100{\mu}M$ L-ascorbic acid (Vit. C) or $100{\mu}M$ L-glutathione (GSH). To examine the ROS level, porcine parthenogenetic embryos were stained in $10{\mu}M$ dichlorohydrofluorescein diacetate ($H_2DCFDA$) dye 20 h after culture, examined under a fluorescence microscope, and the fluorescence intensity (pixels) were analyzed in each embryo. The parthenogenetic embryos were cultured for 6 days to evaluate the in vitro development. The apoptosis was measured by TUNEL assay. The $H_2O_2$ levels of parthenogenetic embryos were significantly lower in antioxidant treatment groups ($26.9{\pm}1.6{\sim}29.1{\pm}1.3$ pixels/embryo, p<0.05) compared to control ($33.2{\pm}1.7$ pixels/embryo). The development rate to the blastocyst stage was increased in antioxidant treatment groups (32.0~32.5%) compared to control (26.9%, p<0.05), although, there was no difference in apoptosis among groups. The result suggests that antioxidant treatment during parthenogenetic activation procedure can inhibit the ROS generation and enhance the in vitro development of porcine parthenogenetic embryos.
Uhm, Sang Jun;Gupta, Mukesh Kumar;Chung, Hak-Jae;Kim, Jin Hoi;Park, Chankyu;Lee, Hoon Taek
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권4호
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pp.483-491
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2009
In vitro produced porcine embryos have potential application in reproductive biotechnology. However, their development potential has been very low. This study evaluated the in vitro developmental ability and quality of cloned and parthenogenetic porcine embryos having 2-4 cells or 5-8 cells on Day 2 of in vitro culture. Analysis of results showed that 2 to 4 cell embryos had higher ability to form blastocysts than 5 to 8 cell embryos (p<0.05). Blastocysts produced from culture of 2 to 4 cell embryos also contained higher cell numbers and had lower BAX:BCLxL transcript ratio than those produced from 5 to 8 cell embryos (p<0.05), thereby suggesting 2 to 4 cell embryos have higher development potential. Further investigation revealed that 5 to 8 cell embryos had higher incidence (100${\pm}$0.0%) of blastomeric fragmentation than 2 to 4 cell embryos (15.2${\pm}$5.5% for parthenogenetic and 27.7${\pm}$7.1% for cloned embryos). This suggests that low development potential of 5 to 8 cell embryos was associated with blastomeric fragmentation. In conclusion, we have shown that morphological selection of embryos based on cell number on Day 2 of in vitro culture could offer a practical and valuable non-invasive means to select good quality porcine embryos.
Background: The successful production of superior or transgenic offspring from in vitro produced embryos in cattle relies heavily on the quality of blastocyst stage embryos. In order to enhance the developmental competency of these embryos, a novel culture method was devised. Methods: This study utilized stem cell culture medium (SCM) from hESCs as a supplement within the culture medium for bovine in vitro produced embryos. To gauge the efficacy of this approach, in vitro fertilized embryos were subjected to culture in CR1aa medium enriched with one of three supplements: 0.3% BSA, 10% FBS, or 10% SCM. Results: The blastocyst development and hatching rates of one-cell zygotes cultured in CR1aa medium supplemented with SCM (23.9% and 10.2%) surpassed those cultured in CR1aa medium supplemented with BSA (9.3% and 0.0%) or FBS (3.1% and 0.0%) (p < 0.05). Furthermore, post-zygotic gene activation, cleaved embryos cultured in CR1aa medium supplemented with SCM (57.8% and 34.5%) exhibited notably higher rates (p < 0.05) compared to those cultured with BSA (12.9% and 0.0%) or FBS (45.7% and 22.5%) supplementation. Furthermore, the microinjection of SCM into the cytoplasm or pronucleus of fertilized zygotes resulted in elevated blastocyst development and hatching rates, particularly when the microinjected embryos were subsequently cultured in CR1aa medium supplemented with SCM from the 8-cell embryo stage onwards (p < 0.05), in contrast to those cultured with FBS supplementation. Conclusions: In conclusion, this study conclusively demonstrated that the incorporation of SCM into the culture medium significantly enhances the developmental progress of preimplantation embryos.
This study was carried out to clarify the effects of various kinds of cryoprotectants which were frequently used in freezing embryos of domestic animals on the survival of frozen-thawed mouse embryos. Mouse embryos were collected by hyperstimulation induction of ICR mouse. The samples were slowly cooled ($l^{\circ}C/min$) to temperatures between $-7^{\circ}C$ and $-30^{circ}C$ before direct transfer to liquid nitrogen ($-196^{\circ}C$) and thawed rapidly ($-500^{\circ}C$/min). As cryoprotectants, Glycerol, DMSO, Ethylene glycol and Propylene glycol were used and applied each 2 cell, 8 cell, morula in embryo stage. After normal mouse embryos developed to blastocyst by in vitro culture, we observed recovery rate and developing rate of embryos at thawing. The results obtained in these experiments were as follows : 1. The in vitro development rate from the frozen-thawed 2 cell embryos to the blastocyst were 67.7% in ethylene glycol, 65.7% in Propylene glycol, 55.2% in glycerol and 50.0% in DMSO respectively. 2. The in vitro development rate from the frozen-thawed 8 cell embryos to the blastocyst were 83.6% in DMSO, 75.7% in glycerol, 52.2% in propylene glycol respectively. 3. The in vitro development rate from the frozen-thawed morula to the blastocyst were 84.2% in glycerol, 80.0% in DMSO, 66.6% in propylene glycol and 55.2% in ethylene glycol respectively.
These studies were carried out to overcome 2-cell block and in vitro development to blastocysts in vitro fertilization of mouse embryos. The unfertilized ova were obtained by superovulation in ICR mice of 4 to 6 weeks old. Tyrode's 280 solution was used as basal media, and the pH range of media examined was designed from 6.5 to 7.5 with 0.2 interval and the range of osmolality from 250 to 370 mOsm with 20 interval, and the period of sperm preincubation examined was 30, 60, 120, and 180 minutes. The ova developed to 2-cell embryos after 26hrs of incubation with preincubated sperm were evaluatated as in vitro fertilized ones. The results obtained were summarized as follows: 1. The optimal ranges of pH and osmolality of culture media and of sperm preincubation time for in vitro development of in vitro fertilized ova to blastocyst were pH 7.1 to 7.3, 250 to 350 mosmol and 60 to 180 min, respectively. 2. With the media of pH 7.1, 310 mOsm and sperm preincubation period of 120min in another experiment of large sample size, the in vitro fertilized ova was found 66.5% and the in vitro development of in vitro fertilized ova to blastocyst was found 35.8%. From the above results it was concluded that the optimal conditions of pH and osmolality of the media for mouse IVF and embryo culture, and the period of sperm preincubation might be 7.1, 310 mOam and 120min, respectively.
The ability to preselect the sex of piglets is advantageous in the pig industry. The objective of this study was to examine the feasibility of using intracytoplasmic sperm injection (ICSI) with sorted spermatozoa to produce piglets with a preselected sex. Pig embryos were produced by ICSI of frozen X- and Y-sperm that had been separated by flow cytometry. The developmental competence of the embryos was investigated in vitro and in vivo. The populations of X- and Y-spermatozoa were 52.7% and 47.3%, respectively in our samples. The in vitro development of ICSI embryos was enhanced by longer of in vitro maturation of oocytes ($44{\sim}48\;h$ vs. $40{\sim}43\;h$). Their cleavage ($65{\sim}70%$) and blastocyst formation ($9{\sim}12%$) rates were not significantly different between male and female ICSI embryos, or between sorted and unsorted sperm-derived embryos. One pregnancy was established in a recipient that was transferred with 110 female ICSI embryos, but the pregnancy was terminated on Day 89 of gestation. Our results suggest that the separation X- and Y-spermatozoa by flow cytometric sorting can be a useful tool in combination with ICSI for the production of pig embryos and piglets of preselected sex.
This study was carried out to investigate on the survival rates and in vitro developmental rates of bisected bovine embryos by micromanipulator and micropipette. Bisected embryos were cultured for 1∼5 days in 20% FCS+TCM-199 medium. Survival rate and in vitro developmental rate were defined as development rate on in vitro culture or FDA-test. The results are summarized as follows ; 1. The survival rates of intact or free zona pellucida of bisected embryos were 30.3 and 25.0%, respectively. And the survival rates of bisected embryos by micromanipulator and micropipette were 33.3 and 26.7%, respectively. The survival rate of bisected embryos was significantly lower than that of non-bisection embryos(65.0%). 2. The survival rates of bisection embryos in cultured for 12, 24, 48, 72 hrs with 20% FCS+TCM-199 medium were 40.0, 30.0, 23.3 and 13.3%, respectively. 3. The in vitro developmental rates of intact of free zona pellucida of bisected embryos by micromainipulator and micropipettes were 33.3 and 26.7%, respectively. The survival rate of bisection embryos was significantly lower than that of non-bisection embryos(45.0%).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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