The objectives of this study was to evaluate the efficiency of the bacteria eliminated sperm by percoll gradient method on sperm quality and embryo cleavage in vitro in pig. The semen of miniature pig collected by gloved-hand method pre-warmed ($37^{\circ}C$) in thermos bottle, and separated by 65% percoll. Analysis of sperm ability was estimated by examining viability, capacitation and acrosome reaction using chlortetracycline (CTC) and the abnormality. Also, fertility of sperm was monitored with cleavage rate of embryo after IVF using separated and un-separated sperm by percoll. The result, viability of separated sperm was significantly(p<0.05) higher($83.6{\pm}$2.0 vs $59.0{\pm}4.4%$) than un-separated sperm. The results of CTC analysis showed the percentage of F- and B-patterned separated sperm was higher in separated that than un-separated sperm. On the contrary, the percentage of AR-patterned form unseparaed sperm was significantly(p<0.05) higher($13.6{\pm}0.8$ vs $8.1{\pm}0.6%$) than separated sperm. Also, abnormality of un-separated sperm was significantly(p<0.05) higher($2.2{\pm}0.4$ vs $16.8{\pm}2.8%$) than separated sperm. However, the cleavage rates of embryo using separated sperm by percoll and un-separated sperm had not significantly difference on 2 cell stage(9.25 vs 11.88%), 4 cell stage(26.76 vs 24.51%) and >4 cell stage(63.99 vs 63.61%) at 48h of IVF. Therefore, the sperm separated by percoll method showed improvement in sperm quality than un-separated sperm in miniature pig.
These experiments were carried out to optimize the parameters of electrical activation, methods of parthenogenetic activation and embryo culture in vitro and meanwhile to isolate embryonic stem cells-like (ESCs) derived from porcine parthenogenetic blastocysts (pPBs). These results showed that, as the electric field strength increased from 1.0 to 2.7 kV/cm, the cleavage rate of parthenogenetic embryos increased gradually but the rate of oocyte lysis was significantly increased when using 2.7 kV/cm field strength. The rate of cleavage in 2.2 and 2.7 kV/cm groups was significantly increased in comparison with that of the 1.0 kV/cm group. A voltage field strength of 2.2 kV/cm DC was used to investigate blastocyst development following activation with a single pulse of 30 or $60-{\mu}sec$ pulse duration. The optimum pulse duration was 30-${\mu}sec$, with a blastocyst rate of 20.7%. Multiple pulses were inferior to a single pulse for blastocyst yield (8.0% vs. 29.9) (p<0.05). For porcine oocyte parthenogenetic activation methods, the rates of cleavage (79.0% vs. 59.8%) and blastocysts (19.4% vs. 3.4%) were significantly increased in electrical activation in contrast to chemical activation with ionomycin/6-DMAP (p<0.05). Rates of cleavage and blastocyst formation in NCSU-23 and PZM-3 embryo media were higher than those of G1.3/G2.3 serial culture media, but there was no significant difference among the three groups. The total cell number of blastocysts in PZM-3 embryo culture media containing $5{\mu}g/ml$ insulin was significantly higher than that of the control (no insulin) ($44.3{\pm}9.1$ vs. $33.9{\pm}11.7$). For isolation of PESCs-like, the rates of porcine blastocysts attached to feeder layers and ICM colony formation in Method B (nude embryo culture) were better than those in Method A (intact embryo culture).
The individual difference of superovulatory responses and inferior embryo quality in superovulated cattle may cause disturbances in the endocrine profile, follicular steroidogenesis, nuclear maturation of nocyte, fertilization and cleavage of embryos. However, the reasons why those disturbances are occurred were not understood. The methods of the improvement of superovulatory response and embryo production were the use of anti-PMSG if PMSG used, pure FSH or controlled FSH-LH inducer, priming dose of gonadotropin in the first few day of the estrous cycle and GnRH or analogue. However, all of the above methods were not reduced the individual differences but improved embryo production We must continue the fundamental studies to understand the mechanism.
The aim of this study was to determine the effect of additional alpha-linolenic acid (ALA) supplementation during in vitro maturation (IVM) and culture (IVC) on nucleic maturation and embryo development of pigs. Cumulus-oocyte complexes (COCs) were incubated in IVM medium containing different concentration of ALA (25, 50 and $100{\mu}M$) for 44 h. After in vitro maturation, nuclear maturation of oocytes were evaluated by aceto-orcein stain. Mature oocytes with $50{\mu}M$ ALA were fertilized and cultured in IVC medium with ALA (25, 50 and $100{\mu}M$) during early-embryogenesis (48 hours after fertilization). Then, embryos were cultured with $25{\mu}M$ ALA during early embryogenesis and/or late embryogenesis (120 hours after early-embryogenesis). In results, oocyte maturation were significantly increased by $50{\mu}M$ ALA treatment groups compared with control groups (p<0.05). Treatment of $25{\mu}M$ ALA during early-embryogenesis enhanced cleavage rate of embryo compared with other groups (p<0.05), whereas formation and total cell number of blastocyst had no significant difference. Similarly, cleavage rate of embryos were increased by $25{\mu}M$ ALA supplement during early- or late-embryogenesis than ALA treatment both stage of embryogenesis (p<0.05), but did not influence to blastocyst formation. Interestingly, total cell number of blastocyst were enhanced in ALA treatment group during early-embryogenesis. These findings indicated that ALA supplement enhance the nuclear maturation of oocyte and embryo development, however, excessive ALA could negatively influence. Therefore, we suggest that ALA is used for improvement of in vitro production of mammalian embryo and further study regarding with functional mechanism of ALA is needed.
Commercial applications of OPU/IVP were to produce embryos and calves from high genetic cows. The aim of this present study was to compare the number of recovered oocytes and cultured In vitro produced embryos from Ovum Pick-up (OPU). OPU derived embryo production was carried out of oocytes by ultrasonographic guided follicular aspiration and then produced in vitro produced blastocysts by IVP culture system. In result, the rate of recovered oocytes was obtained 612 (57.2%) and 451(73.7) G1+G2 grade oocytes. No difference of recovered rate (51.1~62.1%) was seen in six donor. The rate of cleavage and blastocyst development were obtained 320 (70.9%) and 78 (24.4%) that was $3.3{\pm}0.4$ cleaved embryo and $0.9{\pm}0.2$ blastocysts per session. Cleavage rate of OPU oocytes in No. 6 donor was 90.6%, significantly (P<0.05) higher than that in the other donors, However, blastocysts was similar (25.8~30.0%). In conclusion, limited numbers of OPU oocytes had competent development when cultured in SOF culture medium.
The ability to determine the sex of bovine embryos before the transfer is advantageous in livestock management, especially in dairy production, where female calves are preferred in milk industry. The milk production of female and male cattle benefits both the dairy and beef industries. Pre-implantation sexing of embryos also helps with embryo transfer success. There are two approaches for sexing bovine embryos in farm animals: invasive and non-invasive. A non-invasive method of embryo sexing retains the embryo's autonomy and, as a result, is less likely to impair the embryo's ability to move and implant successfully. There are lists of non-invasive embryo sexing such as; Detection of H-Y antigens, X-linked enzymes, and sexing based on embryo cleavage and development. Since it protects the embryo's autonomy, the non-invasive procedure is considered to be the safest. Invasive methods affect an embryo's integrity and are likely to damage the embryo's chances of successful transformation. There are different types of invasive methods such as polymerase chain reaction, detection of male chromatin Y chromosome-specific DNA probes, Loop-mediated isothermal amplification (LAMP), cytological karyotyping, and immunofluorescence (FISH). The PCR approach is highly sensitive, precise, and effective as compared to invasive methods of farm animal embryonic sexing. Invasive procedures, such as cytological karyotyping, have high accuracy but are impractical in the field due to embryonic effectiveness concerns. This technology can be applicable especially in the dairy and beef industry by producing female and male animals respectively. Enhancing selection accuracy and decreasing the multiple ovulation embryo transfer costs.
There are a number of problems during the process of culture in vitro on fertilization and embryo development compared to those on in vivo counterparts. And the platelet activating factor (PAF), which is found not only in mammalian spermatozoa but also preembryos, is implicated on reproductive process. To improve the environment of culture on in vitro fertilization and embryo development, coculture using salpingeal epithelial cells has been considered to accept the better result on pregnancy rate. This study was designed to determine if two different culture systems, coculture alone and PAF treated coculture, are positive or negative influence on process of in vitro fertilization and embryo culture in mouse. The cell cleavage rate reached to 2-4 cell stage at 24 hours of culture is 56.81% (50/88) and 48.21%(54/112) respectively, in PAF treated group which is added PAF on coculture and in coculture group. But the rate of cells cleavage was similar in both group after 48 hours of culture. The rate of unfertilization after insemination of oocytes was higher in coculture group(55..53%) than in PAF treated group(42.37%). And in assessment of undeveped embryos, the rate of equalized cell block was similar on both, coculture alone (35.3%)and PAF treated coculture(35.5%). while unequalized cell block was higher rate in PAF treated coculture(19.4%) than coculture alone (11.8%). But the rate of cytoplasmic degeneration of undeveloped embryos was significantly higher in PAF treated coculture than coculture alone. In conclusion, we have observed that PAF treated coculture is superior in the rates of in vitro fertilization and early embryo cell cleavage compared to those in coculture alone, but there is no difference on the rates of embryo develpments, cell degeneration, cell quality in both PAF treated coculture and coculture alone when the embryo cells were continuosly cultured for 48 hours or more.
The objectives of the study were to establish sperm separation method and duration of insemination for bovine IVF. Oocytes from slaughterhouse ovaries were matured and fertilized using general protocol. After 18 or 42 h of insemination, six to ten embryos were placed into a 30${mu}ell$ drop of each medium, and the embryos were examined 7~10d post in semination without medium renewal. First, we compared Percoll gradient will swim-up technique for sperm separation. There was no difference in cleavage rates between them, but the development rates over morula stage of oocytes fertilized with sperm separated by Percoll gradient was significantly higher than that sperm selected by swim-up technique (p<0.05). Second, we evaluated development of bovine embryos derived from the IVF procedure with different durations(18 vs 42 h) of fertilization. There was also no difference in cleavage rates, but the development to blastocyst stage of oocytes exposed in cleavage rates, but the development to blastocyst stage of oocytes exposed to sperm for 42 h was significantly higher than that exposed for 18 h (p<0.05). In conclusion, Percoll gradient can be used for sperm selecton, improving of embryonic development. Also, 42h of IVF may improve the development of bovine embryos.
This study was conducted to establish an in vitro maturation (IVM) system by selection of efficient macromolecule in the porcine in vitro production (IVP) technology. To choose the efficient macromolecules in the development of porcine embryos, the effects of 3 kinds of macromolecules (porcine serum; PS, porcine follicular fluid; pFF, and polyvinyl alcohol; PVA) supplemented in IVM media on the maturation, cleavage, and development rates to blastocyst of parthenogenetic activation (PA) and in vitro fertilization (IVF) embryos were examined. The maturation rates of porcine oocytes in media supplemented with PS were significantly higher than those with pFF and PVA (92.4% vs. 85.4%, 77.1%; p<0.05). In the cleavage and development to blastocyst rates, supplement with PS or pFF in the IVM media was more effective than PA. However, there were no significant differences in cleavage and development to blastocyst between PS and pFF group. From the results of this study, it was demonstrated that PS was optimal macromolecule in the porcine IVM media.
This study was conducted to investigate the effect of $\alpha$-tocopherol and cysteamine with Whitten's medium in supporting the development on in vitro maturation(IVM), in vitro fertilization (IVF) and in culture(IVC) on porcine oocytes. When the immature oocytes were cultured of $\alpha$-tocopherol for 40h, the nuclear maturation rates were 39, 4, 52.5 and 54.1%, respectivley. The nuclear maturation rates of treat groups were signficantly (P<0.05) higher than those of non-treat groups. After matureation, the oocytes were inseminated in vitro in medium 199 with ejaculated spermatoza for examination of sperm penetration, polyspermy, male pronuclear(MPN) formation, and cleavage rate. Sperm penetration rates of treat higher than the control groups(P<0.05), and MPN formation rates were significantly(P<0.05) higher on treated groups (24.3~53.1%) than control groups(14.2~21.4%). After insemination, the cleavage rates at 120hr were groups higher than control groups(P<0.05).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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