Embryos of most mammalian species grown in vitro would undergo developmental arrest at the approximate time of genomic activation. Stage-specific cell block and the resulting rapid loss of embryo viability in conventional culture media have limited the duration for which embryos may be cultured prior to transfer. As a result, embryos are usually transferred to the uterus at the 4-to 8-cell stage to avoid the loss of viability associated with long-term in vitro culture. Early transfer has led to asynchrony of the endometrium-trophectoderm interaction at the time of implantation and a resultant reduction in the rate of implantation. To overcome these problems, a variety of co-culture systems has been devised in which embryos can develop for a longer period prior to embryo transfer. Vero cells, derived from African green monkey kidney, share a common embryologic origin with cells from the genital tract. In addition, they are potentially safe to use, since they are highly controlled for viruses and other contaminants. Therefore, co-culture using Vero cells has been widely utilized to enhance embryo viability and development, although not without controversies. We thus designed a series of experiments to demonstrate whether Vero cells do indeed enhance mouse embryo development as well as to compare the efficacy of co-culturing mouse 1-cell embryos on Vero cell monolayer in both Ham's F-10 and human tubal fluid (HTF) culture media. 1-cell stage ICR mouse embryos were cultured either in the presence of Vero cells (Group A) or in conventional culture medium alone (Group B). In Ham's F-10 significantly more 3-to-8cell embryos developed in group A than group B (59.8 versus 10.0%; p<0.01). In contrast, there was no significant difference in embryonic development both group A and group B in HTF. However, significant differences were noted only in later embryonic stage (13 and 0%; p<0.05 of group A and B respectively, hatching or hatched). In Ham's F-10, we also could observe the beneficial effect of Vero cell on hatching process (70.7 and 42.1%; p<0.05 of group A and group B respectively).
The hypo-salinity effects on fertilized eggs, embryos and larvae were investigated in olive flounder (Paralichthys olivaceus) obtained from hatcheries in Cheju-Island, Yeosu and Chungnam. Those were treated to eight concentration; 0, 3.4, 6.7, 10.1, 13.4, 20.2, 27.4 and 33.6 ‰. It was not discrepancy in the survival rate and hatching success rate of fertilized embryos obtained from different regions. Also, in the larvae, the regional difference was not appeared. The survival rate and hatching ability of embryos significantly diminished in the lower groups than 13.4 ‰ compared to 33.6 ‰. After fertilization, namely embryos are tolerant of a wide range of salinity (13.4 - 33.6 ‰). Reduced salinity induced an increase of the malformed embryo and larvae including various deformities; irregular embryos membrane (or yolk sac depression), fin erosion and swim bladder inflation in the flounder embryo. The hatching success of embryos was significantly reduced in lower salinity than 13.4 ‰. Notably, the reduction of larval survival rate significantly was observed in ≤10.1 ‰ treated groups with the same manner of survival rates of the embryos. Additionally, olive flounder was found to be adequate model for measuring external impulses because there are no the regional differences.
Although the majority of surviving pigs cloned by somatic cell nuclear transfer (SCNT) appear to be physiologically normal, there is a general lack of detailed hemato-physiologic studies for the period of early adulthood to substantiate this claim. In the present study, we investigated variation in blood chemistry and endocrinological parameters between mesenchymal stem cells (MSCs) derived from cloned and normal age-matched female and male miniature pigs. Cloned females and males showed normal ranges for complete blood count assessments. Biochemical assessments showed that ${\gamma}$-GGT, ALT and cholesterol levels of male and female clones were significantly (P<0.05 or P<0.01, respectively) higher than that of age-matched control miniature pigs. Variations in insulin and IGF-1 were higher in female clones than in male clones and controls. Thus, although female and male cloned miniature pigs may be physiologically similar to normal animals, or at least within normal ranges, a greater degree of physiological and endocrinological variation was found in cloned pigs. The above variation must be taken into account before considering cloned female or male miniature pigs for various biomedical applications.
Stroke occurs when local thrombosis, embolic particle or the rupture of blood vessele interrupts the blood floe to the brain. $\beta$-estradiol 17-valerate has been reported to exert neuroprotective effects when administered before an ischemic insult. Recently, the pathophysiology of cerebral ischemia has been studied extensively in rat with various methods. In the present study, we investigates whether $\beta$-estrodiol 17-valerate can protect against brain injury. RNA sample were extracted from the hippocampus of female rat, reverse-transcription in the presence of [$\alpha$32p] dATP. Differential gene express-ion profiles were revealed (Bone morphogenetic protein type 1A receptor, Protein disulphide isomerase, Leukemia inhibitor factor receptor, cytochrome bc- 1 complex-x core P, thiol-specific antioxidant protein). RT-PCR was used to validate the relative expression pattern obtained by the cDNA array. The precise relationship between the early expression of recovery genes and stroke is a matter of luther investigation. This Study was supported by the Korea Science and Engineering Foundation(KOSEF) through the Biohealth Products Research Center(BPRC), Inje University, Korea.
In order to establish efficient plant regeneration from embryogenic suspension cultures of soybean, Glycine max L, we examined the effects of auxin type and concentration, cytokinin type and concentration, and amino acid type and concentration on the growth of embryogenic clumps from induced callus, and the effect of desiccation of mature somatic embryos obtained from these clumps on the frequency of somatic embryo germination. Embryogenic callus was induced from the edge of the cotyledons cultured on MS medium containing 6% sucrose, 40 mg/L 2,4-D, 0.2% gelrite and pH 5.7. The growth of embryogenic clumps was best in early staged, embryogenic callus that was placed in suspension culture of MS medium containing 5 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L asparagine. Single somatic embryos were isolated from the clumps and plated on the same medium for maturation. When the mature single somatic embryos were desiccated for 96 h, somatic embryo germination came up to approximately 90%. The plantlets germinated after embryos desiccation for 2 weeks were transfered to MS medium containing 3% sucrose,0.2% gelrite and pH 5.7.
Polychlorinated biphenyls (PCBs) are persistent pollutants in aquatic environments, often causing the decline or disappearance of wild populations. In this study, we used a random amplified polymorphic DNA (RAPD) assay to evaluate the effects on the genomic DNA of olive flounder embryo and larval stages of exposure to Aroclor 1254 at concentrations of 1, 5, 10, 20, and $40{\mu}g/L$. We compared RAPD fingerprints of exposed and non-exposed samples. Polymorphisms were revealed as the presence and/or absence of DNA fragments between the two samples. A dose-dependent increase in the number of polymorphic bands was observed with Aroclor 1254 treatment. Also, RAPD profiles of animals exposed to Aroclor 1254 exhibited an increase in the frequency values (FV) compared to the control. A phenogram constructed using neighbor-joining method indicated that genomic template stability in developing embryo and larval stages was significantly affected at ${\geq}5{\mu}g/L$. This study suggested that DNA polymorphisms detected by RAPD analysis could be used as an investigative tool for environmental toxicology and as a useful biomarker in early life stages for the detection of potential genotoxicants.
The technology of creating transgenic animals has a potential value in improving productivity and disease resistance of animals, gene therapy, drug pharming and production of model animals for certain diseases. Up to date, fairly low success rate of production of transgenic animals and a pronounced variability with respect to the expression of transgenes have been much observed. The mechanisms how to integrate the injected genes with a certain part of the genomes are unknown yet. Many techniques in gene transfer, beside microinjection, have been introduced and explored thus to improve the production efficiency of transgenic animals. In this article, the methods and efficiency of gene-transfer techniques, the detection and preselection of transgenes in embryos by PCR- and GFP-screenings and cloning of preselected transgenic embryos by nuclear transplantation are described and discussed. Some experimental results showed that the early screening and selection of integration of the injected gene with embryonic genome by polymerase chain reaction(PCR) and green fluorecence protein(GFP) were promising methods. Further, the application of nuclear transplantation technology to cloning and multiplication of the positively integrated genes in the cleaving embryos and embryonic cells will be beneficially used for the mass production of transgenic embryos and consequently improving the production efficiency in transgenic animals.
Growth differentiation factor 9 (GDF9) and bone morphogenetic protein 15 (BMP15) are oocyte-specific growth factors that regulate many critical processes involved in early folliculogenesis and oocyte maturation. In this study, effects of GDF9 and BMP15 treatment during in vitro maturation of porcine oocytes upon development after parthenogenetic activation were investigated. Neither GDF, BMP15 alone nor in combination affects the number and viability of cumulus cells or the rates of oocyte maturation and blastocyst development. However, the treatment of GDF9 on porcine oocytes increased the number of trophectodermal (TE) cells of blastocysts derived from activated oocytes (P<0.05). The treatment of BMP15 increased the cell numbers of both inner cell mass (ICM) and TE cells (P<0.05). The treatment with the combination of GDF9 and BMP15 further increased the numbers of ICM and TE cells, compared with GDF9 or BMP15 treatment alone (P<0.05). In conclusion, the treatment of GDF9 or BMP15 (or both) enhanced the quality of blastocysts via the increased number of ICM and/or TE cells.
Embryogenic callus was obtained from bulb segments of Iris pseudacorus on Murashige and Skoog (MS) medium with 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) alone or in combination with kinetin. When early globular somatic embryos were subcultured onto MS medium with $4.52{\mu}M$ 2,4-D, high frequency of somatic embryogenesis was obtained. Deprivation of 2,4-D was required for maturation. Mature somatic embryos had an elongated scutellum with a notch on the base of scutellum. Separation of embryos from embryo clusters was necessary to enhance the frequency of germination. Germination was stimulated by separation of embryos from embryo clusters and transfer onto fresh half-strength MS medium with 3% sucrose. After acclimation in artificial soil in greenhouse for 2 months, 96.4% of plantlets survived.
Direct injection of genome editing tools such as CRISPR/Cas9 system into developing embryos has been widely used to generate genetically engineered pigs. The approach allows us to produce pigs carrying targeted modifications at high efficiency without having to apply somatic cell nuclear transfer. However, the targeted modifications during embryogenesis often result in mosaicism, which causes issues in phenotyping founder animals and establishing a group of pigs carrying intended modifications. This study was aimed to establish a genomic PCR and sequencing system of a single blastomere in the four-cell embryos to detect potential mosaicism. We performed genomic PCR in four individual blastomeres from four-cell embryos. We successfully amplified target genomic region from single blastomeres of 4-cell stage embryo by PCR. Sanger sequencing of the PCR amplicons obtained from the blastomeres suggested that PCR-based genotyping of single blastomere was a feasible method to determine mutation type generated by genome editing technology such as CRISPR/Cas9 in early stage embryos. In conclusion, we successfully genotyped single blastomeres in a single 4-cell stage embryo to detect potential mosaicism in porcine embryos. Our approach offers a simple platform that can be used to screen the prevalence of mosaicism from designed CRISPR/Cas9 systems.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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