Embryonic stem (ES) cell-derived cardiomyocytes (ESCMs) must be specifically purified in order to prevent teratoma formation, and this confusing issue has hampered their clinical application. We therefore investigated a technique to generate pure labeled ESCMs for possible use in cardiac repair. We generated transgenic ES cell lines expressing enhanced green fluorescent protein (EGFP) under the transcriptional control of the $\alpha$-cardiac myosin heavy chain ($\alpha$-MHC) promoter. Differentiated EGFP-positive ES cells displayed characteristics of CMs. Furthermore, neuregulin-1 (NRG-1) upregulated the expression of the cardiac-restricted transcription factors Nkx2.5 and GATA-4, as well as differentiated CM factors ($\alpha$-MHC, $\beta$-MHC). Immunohistochemistry demonstrated that NRG-1 increased expression of cardiac-specific troponin T in the beating foci of the embryoid bodies. This work revealed a potential method for specifically labeling and enriching ESCMs by combining genetically-engineered ES cell clones and exogenous growth factor treatment.
생쥐 배반포기 내부세포괴를 체외에서 분리 배양하여 분화가 억제된 내부세포괴 유래 증식세포를 미분화 상태에서 무한히 증식할 수 있는 전능성을 지닌 배아간세포(embryonic stem cell : ES cell)로 확립하고자 본 연구를 실시하였다. BCF1 생쥐 배반포를 10% FCS, 0.1mM nonessential amino acid, 0.1mM sodium pyruvate, 0.1mM 2-mercaptoethanol과 1,000U/ml LIF(세포분확억제인자)가 첨가된 DMEM 기초배양액에 mitomycin-C를 처리한 STO 단층배양세포에서 배양하여 분화가 억제된 내부세포괴 유래의 배아간세포를 분리하였다. 배반포를 STO 단층배양세포에서 4일간 배양하여 내부세포괴세포를 신선한 STO 단층배양세포에서 약 5일 간격으로 반복하여 계대배양을 실시하였다. 5차 계대배양후 뚜렷한 분화 양상없이 배양된 미분화 세포군에 대한 alkaline phosphatase (AP)염색과 체외분화능 검색을 실시한 결과 적색의 미분화 AP 양성반응이 확인되었으며 체외에서 배분화 형성이 유도됨에 따라 배양된 배아간세포주의 다능성 배아간세포 특성을 확인할 수 있었다.
Jung, Juwon;Baek, Jin Ah;Seol, Hye Won;Choi, Young Min
한국발생생물학회지:발생과생식
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제20권1호
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pp.63-71
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2016
Human embryonic stem cells (hESCs) have been routinely cultured on mouse embryonic fibroblast feeder layers with a medium containing animal materials. For clinical application of hESCs, animal-derived products from the animal feeder cells, animal substrates such as gelatin or Matrigel and animal serum are strictly to be eliminated in the culture system. In this study, we performed that SNUhES32 and H1 were cultured on human amniotic fluid cells (hAFCs) with KO-SR XenoFree and a humanized substrate. All of hESCs were relatively well propagated on hAFCs feeders with xeno-free conditions and they expressed pluripotent stem cell markers, alkaline phosphatase, SSEA-4, TRA1-60, TRA1-81, Oct-4, and Nanog like hESCs cultured on STO or human foreskin fibroblast feeders. In addition, we observed the expression of nonhuman N-glycolylneuraminic acid (Neu5GC) molecules by flow cytometry, which was xenotransplantation components of contamination in hESCs cultured on animal feeder conditions, was not detected in this xeno-free condition. In conclusion, SNUhES32 and H1 could be maintained on hAFCs for humanized culture conditions, therefore, we suggested that new xeno-free conditions for clinical grade hESCs culture will be useful data in future clinical studies.
The liver is an essential organ for the detoxification of exogenous xenobiotics, drugs and toxic substances. The incidence rate of non-alcoholic liver injury increases due to dietary habit change and drug use increase. Our previous study demonstrated that Ecklonia stolonifera (ES) formulation has hepatoprotective effect against alcohol-induced liver injury in rat and tacrine-induced hepatotoxicity in HepG2 cells. This present study was designated to elucidate hepatoprotective effects of ES formulation against carbon tetrachloride ($CCl_4$)-induced liver injury in Sprague Dawley rat. Sixty rats were randomly divided into six groups. The rats were treated orally with ES formulation and silymarin (served as positive control, only 100 mg/kg/day) at a dose of 50, 100, or 200 mg/kg/day for 21 days. Seven days after treatment, liver injury was induced by intraperitoneal injection of $CCl_4$ (1.5 ml/kg, twice a week for 14 days). The administration of $CCl_4$ exhibited significant elevation of hepatic enzymes (like AST and ALT), and decrease of antioxidant related enzymes (superoxide dismutase, glutathione peroxidase and catalase) and glutathione. Then, it leaded to DNA damages (8-oxo-2'-deoxyguanosine) and lipid peroxidation (malondialdehyde). Administration of ES formulation inhibited imbalance of above factors compared to $CCl_4$ induced rat in a dose dependent manner. Real time PCR analysis indicates that CYP2E1 was upregulated in $CCl_4$ induced rat. However, increased gene expression was compromised by ES formulation treatment. These findings suggests that ES formulation could protect hepatotoxicity caused by $CCl_4$ via two pathways: elevation of antioxidant enzymes and normalization of CYP2E1 enzyme.
Gene-manipulated mice were discovered for the first time about a quarter century ago. Since then, numerous sophisticated technologies have been developed and applied to answer key questions about the fundamental roles of the genes of interest. Functional genomics can be characterized into gain-of-function and loss-of-function, which are called transgenic and knock-out studies, respectively. To make transgenic mice, the most widely used technique is the microinjection of transgene-containing vectors into the embryonic pronucleus. However, there are critical drawbacks: namely position effects, integration of unknown copies of a foreign gene, and instability of the foreign DNA within the host genome. To overcome these problems, the ROSA26 locus was used for the knock-in site of a transgene. Usage of this locus is discussed for the gain of function study as well as for several brilliant approaches such as conditional/inducible transgenic system, reproducible/inducible knockdown system, specific cell ablation by Cre-mediated expression of DTA, Cre-ERTM mice as a useful tool for temporal gene regulation, MORE mice as a germ line delete and site specific recombinase system. Techniques to make null mutant mice include complicated steps: vector design and construction, colony selection of embryonic stem (ES) cells, production of chimera mice, confirmation of germ line transmission, and so forth. It is tedious and labor intensive work and difficult to approach. Thus, it is not readily accessible by most researchers. In order to overcome such limitations, technical breakthroughs such as reporter knock-in and gene knock-out system, production of homozygous mutant ES cells from a single targeting vector, and production of mutant mice from tetraploid embryos are developed. With these upcoming progresses, it is important to consider how we could develop these systems further and expand to other animal models such as pigs and monkeys that have more physiological similarities to humans.
Chaperone 분자는 세포 내에서 새로 합성된 polypeptides의 misfolding을 보호하는 역할을 가진다. 이런 chaperone 분자와의 공발현은 활성형 재조합 단백질의 생산을 증가를 기대할 수 있다. 본 연구에서는 E. cozi에서 B. macerans 유래 cyclodextrin glucanotransferase (CGTase)의 활성형 생산에 GroEL/ES chaperone과의 공발현의 효과에 대해 조사하였다. cgt와 groEL/ES 유전자출 발현하는 pTCGT1과 pGro7은 각각 T7 promoter와 araB promoter에 의해 조절되고 이들을 E. coli cell에 co-transformation시켰다. 재조합 E. coli에서 IPTG와 L-arabinose의 최적 농도를 결정하기 위해 행한 결과 1 mM IPTG, 0.3 mg L-arabinose/$m\ell$에서 가장 높은 CGTase 활성을 나타내었다. 그리고 tube에서는 L-arabinose와 IPTG를 각각 0.4~0.5 $OD_{600}$과 0.8~l.0 $OD_{600}$에서 첨가하였을 때 활성형 CGTase의 생산이 증가되었다. GroEL/ES 공발현 조건에서는 가용성 CGTase 활성이 0.7~0.73 unit/$m\ell$로 단독 발현의 0.36~0.56 unit/$m\ell$에 비해 약 1.5 배 정도 증가함을 알 수 있었다. SDS-PAGE 분석에서는 GroEL/ES 공발현 조건에서 총 CGTase의 33.6%정도가 가용성 형태로 생산됨을 알 수 있었다.
본 연구의 목적은 유자씨와 유자씨 유지로부터 HT-29 암세포 생장 억제효과를 확인하고 주요 원인 물질을 확인하는 것이다. 유자씨, 헥산 추출 유자씨 유지, 냉압착 유자씨 유지로부터 60% 메탄올을 이용하여 추출물(각각 ES, EHO, ECO)을 얻었다. 추출물의 성분은 HPLC-MS를 이용하여 확인하였다. ES, EHO, ECO를 HT-29 세포에 처리하여 생장 억제 효과를 확인한 결과, EHO와 ECO가 유의적인 효과가 있었다(p<0.05). 반면, ES와 리모닌, 노밀린은 24시간과 48시간 처리 후에 암세포 생장 억제 효과가 없었다(p>0.05). 유자씨 유지 추출물의 암세포 생장 억제효과에 주요 역할을 하는 성분을 탐색하기 위해 제조용 LC로 EHO와 ECO를 분획하여 이 분획물의 암세포 생장 억제 효과와 조성을 확인하였다. 분획물 중에서 EHO의 3개 분획물과 ECO의 2개 분획물이 유의적인 HT-29 세포 생장 억제 효과가 있었다(p<0.05). 이 5개 분획물의 HPLC-MS 분석 결과, 아이소핌피넬린, 버갑텐, 이찬젠신이 주요 성분일 것으로 추정되었다. 아이소핌피넬린, 버갑텐, 이찬젠신을 HT-29 세포에 처리한 결과, 이찬젠신이 유의적인 생장 억제 효과가 있었고(p<0.05), 아이소핌피넬린과 버갑텐은 약간의 생장 억제 효과가 있었으나 유의적이지는 않았다(p>0.05). 따라서 아이소핌피넬린, 버갑텐, 이찬젠신이 유자씨 유지 내의 주요 암세포 생장 억제 물질이며, 이 중에서 이찬젠신이 그 활성이 가장 높은 물질인 것으로 추정한다.
Park, Young-S.;Lee, Jae-E.;Lee, Seo-H.;Lee, Hyeon-Y.
한국약용작물학회지
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제10권4호
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pp.237-242
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2002
It was found that the purified extract from A. gigas Nakai (polysaccharide, M.W., 25 kD) controled differentiating human ES cells. Its optimal supplementation concentration was decided as 0.8 $({\mu}g/ml)$ to efficiently control the differentiation. It also enhanced the cell growth, compared to the control. However, most widely used and commercially available differentiating agent, Leukemia Inhibitory Factor (LIF) negatively affected on the cell growth even though it controls the differentiation of ES cells, down to 40-50 % based on morphological observation and telomerase activity. It was presumed that the extract first affected on cell membrane and resulted in controlling signal system, then amplify gene expression of telomere, which enhanced the telomerase activity up to three times compared to the control. LIF only increased the enzyme activity up to two times. It was confirmed that the extract from A. gigas Nakai could be used for substituting currently used differentiation controlling agent, LIF from animal resources as a cheap plant resource and not affecting the cell growth. It can broaden the application of the plants not only to functional foods and their substitutes but also to fine chemicals and most cutting-edge biopharmaceutical medicine.
The purpose of this study is to evaluate an efficacy of in vitro differentiated human embryonic stem (hES, MB03) cells expressing Nurr1 in relief of symptomatic motor behavior of Parkinson's disease (PD) animal models MB03 was genetically modified to express Nurr1 protein and was induced to differentiate according to 2-/4+ protocol using retinoic acid and ascorbic acid. The differentiation-induced cells were selected for 10 to 20 days thereafter in N2 medium. Upon selection, cells expressing GFAP, TH, or NF200 were 38.8%, 11%, and 20.5%, respectively. in order to examine therapeutic effects of the differentiated cells in PD animal model, rats were unilaterally lesioned by administration of 6-kydroxydopamine HCI (6-OHDA) into medial forebrain region (MFB, AP -4.4 mm, ML 1.2 mm, DV 78 mm with incision bar set at -2.4 mm), as a reference to bregma and the surface of the skull. Confirmation of successful lesion by apomorphine-induced rotational behavior, differentiated cells were transplanted into the striatum (AP 1.0, ML 3.5, DV -5.0; AP 0.6, ML 2.5, DV -4.5). Improvements of asymmetric motor behavior by the transplantation were examined every two weeks after the surgery. In two weeks, numbers of rotation by the experimental rats were $-14.8 \pm 33.9%$ (P<0.05) of the number before transplantation, however, the ratio increased slightly to $13.6 \pm 56.3%$ in six weeks. In contrast, the ratio of sham-grafted animals ranged from 112.3+8.5% to 139.2+28.9% during the examination. Immunohistochemical studies further confirmed the presence, survival, migration, and expression of TH of the transplanted human cells.
최근 Escherichia coli에서 RNA의 분해와 가공과정에 중추적인 역할을 하는 리보핵산 내부분해효소인 RNase E의 효소활성을 조절하는 단백질 조절자인 RraA가 밝혀졌으며, 이 단백질은 E. coli RNase E의 효소활성 부위와 36%의 유사성을 가지는, Streptomyces coelicolor RNase ES의 효소활성을 조절하는 것으로 알려져 있다. S. coelicolor의 유전체에는 RraA와 아미노산 서열이 35.4% 이상 유사한 단백질을 코딩하는 유전자가 두 개 존재하는데, 그 중 하나인 rraAS2를 클로닝하여 E. coli RNase E의 효소활성을 조절하는지를 알아보았다. 그 결과 세포내에서 RraAS2를 발현시키면 RNase E의 과발현에 의해 저해된 세포의 생장을 RraA와 같이 효과적으로는 아니지만, 어느 정도 복원시키는 것을 확인하였다. 또한 RraAS2가 발현됨으로서 RNase E의 과발현에 의해 증가된 ColE1-타입 플라스미드의 복제 수를 14% 감소시키는 것을 관찰하였다. 이러한 결과는 RraAS2가 RNase E의 RNA I분자에 대한 효소 활성을 저해하는 능력을 가지고 있음을 시사한다. 동일한 배양조건에서 E. coli 세포내에서의 RNase E에 대한 RraAS2의 상대적인 발현양이 RraA에 비해 6.2배 낮은 것을 확인하였고, 이로 인해 RraAS2가 RNase E의 과발현에 의한 세포 생장의 저해를 복원하는데 필요한 모든 RNA의 가공과 분해속도를 효과적으로 조절하지는 못한다는 것을 추론할 수 있다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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