• 한국발생생물학회:학술대회논문집
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• 한국발생생물학회 2003년도 제3회 국제심포지움 및 학술대회
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• pp.7-8
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• 2003

Since it was first reported in 1997, somatic cell cloning has been demonstrated in several other mammalian species. On the mouse, it can be cloned from embryonic stem (ES) cells, fetus-derived cells, and adult-derived cells, both male and female. While cloning efficiencies range from 0 to 20%, rates of just 1-2% are typical (i.e. one or two live offspring per one hundred initial embryos). Recently, abnormalities in mice cloned from somatic cells have been reported, such as abnormal gene expression in embryo (Boiani et al., 2001, Bortvin et al., 2003), abnormal placenta (Wakayama and Yanagimachi 1999), obesity (Tamashiro et ai, 2000, 2002) or early death (Ogonuki et al., 2002). Such abnormalities notwithstanding, success in generating cloned offspring has opened new avenues of investigation and provides a valuable tool that basic research scientists have employed to study complex processes such as genomic reprogramming, imprinting and embryonic development. On the other hand, mouse ES cell lines can also be generated from adult somatic cells via nuclear transfer. These 'ntES cells' are capable of differentiation into an extensive variety of cell types in vitro, as well assperm and oocytes in vivo. Interestingly, the establish rate of ntES cell line from cloned blastocyst is much higher than the success rate of cloned mouse. It is also possible to make cloned mice from ntES cell nuclei as donor, but this serial nuclear transfer method could not improved the cloning efficiency. Might be ntES cell has both character between ES cell and somatic cell. A number of potential agricultural and clinical applications are also are being explored, including the reproductive cloning of farm animals and therapeutic cloning for human cell, tissue, and organ replacement. This talk seeks to describe both the relationship between nucleus donor cell type and cloning success rate, and methods for establishing ntES cell lines. (중략)

• 한국발생생물학회지:발생과생식
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• 제14권4호
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• pp.253-259
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• 2010

DNA 메틸화 (DNA methylation)는 유전자의 발현을 조절하는 대표적인 후생학적 조절기작 (epigenetic regulation) 중에 하나이다. DNA 메틸화 양상은 생식세포 형성과정 및 배 발생단계에서 탈메틸화 (demethylation)와 de novo 메틸화의 드라마틱한 변화가 일어난다. 또한 이러한 DNA 메틸화는 배아줄기세포 (embryonic stem cells, ESCs)에서 특징적인 양상을 보이는 것으로 알려져 있다. 본 연구에서는 생쥐 수정란 유래 배아줄기세포와 체세포핵이식 배아줄기세포 (nuclear transplanted ESCs)를 이용해서 대표적 각인유전자 (imprinting genes)로 알려진 Snrpn, Igf2r, H19 유전자들에 대한 메틸화 양상을 알아보고자 하였다. 연구 결과 H19 유전자에 대해서는 DNA 메틸화 양상은 수정란 유래 배아줄기세포와 체세포핵이식 배아줄기세포에서 비슷한 경향을 보였으나, Snrpn과 Igf2r의 경우에는 체세포핵이식 배아줄기세포에서 과메틸화 (hypermethylation) 경향을 보였다.

• Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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• 제17권2호
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• pp.168-173
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• 2004

The ability of frozen-thawed fetal skin was examined to generate viable cell lines for nuclear transfer. Fetal skin frozen at -20$-20^{\circ}C$, $-30^{\circ}C$ or $-80^{\circ}C$ in the presence of 5% DMSO used as tissue explants to generate somatic cells. The resultant confluent cells were then used as donors for nuclear transfer (NT). Of the bovine NT embryos reconstracted from the somatic cells, 62.3%, 76.6% to 65% showed cleavage 70.5%, 81.9% to 78.5% reached the stage of morula formation and 39.7%, 43.2% or 47.6% reached the blastocyst stage. There was no significant difference in development when the NT embryos were compared with those reconstracted from fresh somatic cell derieved skin tissues (72%, 75.3%, and 45.2%, for cleavage, and development to morula and blastocyst stage, respectively). NT embryos were then placed in a portable $CO_2$ incubator and carried to China from Japan by air. After reaching to farm, two NT embryos were transferred to each of 5 recipients. We obtained 2 NT calves which birth weights is 30kg and 36kg female, and gestation periods is 281 and 284 days, respectively. There were no observation any abnormality from those calves. The results indicated that cell lines derieved from bovine fetal skin cryopreserved by a simple method could be used as donors in nuclear transfer using the portable $CO_2$ incubator.

• 한국수정란이식학회:학술대회논문집
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• 한국수정란이식학회 2006년도 The 6th Intermational Symposium on Developmental Biotechnology
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• pp.57-57
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• 2006

• 한국발생생물학회지:발생과생식
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• 제12권1호
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• pp.1-8
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• 2008

배아줄기세포는 다양한 분화 유도 방법을 통해 신경계세포로 분화시킬 수 있을 뿐만 아니라, 보다 더 엄격한 선발조건을 적용함으로써 특정 종류의 신경세포만을 확보할 수도 있게 되었다. 세포사멸연구를 포함한 신경생리학적 연구의 대상으로써 중요한 요건은 이렇게 확보한 배아줄기세포 유래의 신경계세포들이 정상적인 신경생리학적 특성을 갖고 있어야 하며, 동시에 그런 신경생리학적 특성이 체외에서 일정기간 동안 이상 자연적인 세포사멸없이 유지되어야 한다는 것이다. 생쥐 배아줄기세포를 retinoic acid로 처리한 후, astrocytes monolayer 위에서 신경계세포로 분화시키면 장기간 생존이 가능한 다수의 신경계세포를 손쉽게 확보할 수 있을 뿐만 아니라, 면역세포화학적 방법을 통해 신경세포의 생사를 개별세포 수준에서 추적할 수 있다. 배아줄기세포 유래의 신경계세포는 glutamate agonist들에 대해 수용체 특이적 흥분성 신경독성 반응을 보이며, 이 반응은 신경계세포로의 분화가 진행될수록 더욱 뚜렷해지는 양상을 보인다. 신경계세포의 발생분화, 생존에 관여하는 Neurotrophin, GDNF 계열의 신경계 작용 성장인자들의 수용체가 배아줄기세포 유래의 신경계세포에서 발현되고 있으며, 이들에 의해 신경계세포로의 분화과정에서 세포의 생존능 및 신경독성처리에 대한 세포사멸반응이 조절될 수도 있다. 따라서 배아줄기세포 유래의 신경계세포는 신경세포의 생존과 사멸, 그리고 세포손상으로부터의 보호와 같은 신경약리학적 연구를 위한 중요한 특성을 나타내고 있기에 관련 연구를 위한 새로운 연구시스템이 될 수 있는 것이다. 특히 일반적인 신경세포는 유전적 변형이 어려워 다양한 신경약리학적 연구에 많은 제약을 받아 왔으나, 이제 유전자 변형 배아줄기세포로부터 얻은 신경세포를 활용하여 연구할 수 있게 됨으로써, 보다 복합적인 신경약리학적 기초연구도 가능하게 되었다. 특히 최근 인간 배아줄기세포 유래 신경계세포도 유사한 신경독성 반응을 보이고 있음이 확인됨으로써(Schrattenholz & Klemm, 2007), 이제 배아줄기세포는 신경약리학적 기초 연구만이 아닌, 나아가 대량의 약물 스크리닝과 같은 제약산업에도 활용될 수 있는 가능성을 제시하고 있다.