Viral RNA was extracted from a purified orchid strain of tobacco mosaic virus (TMV-O) from Cymbidium "Grace Kelly". Polyadenylated viral RNAs were primed with Not I-oligo (dT) primer-adapter. First-strand cDNAs were reversely transcribed by Moloney murine leukaemia virus reverse transcriptase (RNAse H-), and then second-strand cDNAs were synthesized by RNase H and DNA polymerase I. The resulting double-stranded cDNAs were ligated into pSPORT1 vector and transformed into competent E. coli strain JM109 cells. The size of cDNAs within the recombinant plasmids was ranging from 0.9 to 3.9 kb. Among the selected clones, pTMO-0205 and -0210 covered the 3' half and the 5' half of the viral genomic RNA, respectively, which were covering more than 99% of the viral genemo size based on sequencing analysis. Two cDNA fragments which were 3.1 kb BamHI and NotI fragement released from pTMO-0.205 and 3.3 kb SalI and BamHI fragment released from pTMO-0210 were ligated with T4 DNA ligase. The clone was almost entire length, lacking only 31 nucleotides from the 5' terminus based on the sequencing result. This method was shown to be efficiently applicable to other plant viral gnomic RNA for the construction of cDNA.n of cDNA.
Bacillus thuringiensis serovar israelensis 4Q1 contains 8 different covalently closed-circular (CCC) plasmids of molecular weight 204, 267, 109, 103, 16, 7.6, 6.4, and 5.0kb. The three smallest plasmids, designated pBti6, and pBti8 may prove to be useful as cloning vectors because of thier size and ease of isolation. The three plasmids were incubated separately with 9 different restriction enzymes and 7 of the enzymes tested cleaved one or more of the plasmids. Plasmid pBti6 has a single site for Bg1 II, Pst I and Pvu II, two sites for Bc1 I and Eco RI, and five sites for Hind III. Plasmid pBti7 has a single site for Bam HI and Pst I, two sites for Hind III, and three sites for PvuII. Plasmic pBti8 has a single site for Bam HI, BelI and Hind III, two sites for Eco RI, and three sites for Bgl II and Pvu II. Composite restriction enzyme maps for pBti6, pBti7 and pBti8 were constructed. The sites of restriction enzyme cleavage were determined by single, double and partial digests of the plasmid DNA. All the restriction sites were aligned relative to the single Bgl II(pBti6), Pst I(pBti7) or Hind III(pBti8) site, respectively.
The upstream regulatory region (URR) of bovine papillomavirus type 1 (BPV) contains promoters and a conditional transcriptional enhancer that is trans-activated by the viral E2 protein. After deleting the 5' and 3' ends of BPV URR, BamHI linkers were inserted into several positions of BPV URR without causing an addition or a deletion of URR sequences. Most linker scanning mutations did not show any effects on the transcription of P7940 and P89 promoters in BPV URR. However, several mutants showed reduced transcriptional activities. Based on our results we found that the AP-2 and Sp1 binding sites were important for basal level transcription of BPV URR in the absence of the E2 protein and that the CTF/NF-1 site is dispensable for E2 transactivation of BPV URR transcription.
Interferons are cytokines that confer resistance to viral infection and inhibit cellular proliferation. The interferon alpha gene from human blood samples was amplified, cloned and expressed in E. coli (BL21). Leukocyte chromosomal DNA was used as a source of template DNA. Using specific primers, the gene for HulFN$\{alpha}$-2b was amplified and inserted into the E. coli vector, pET21b, by ligation of the HindIII and BamHI linkers of the vector and insert. The insert was further analyzed by PCR, DNA restriction mapping and sequencing, and expressed in a suitable E. coli strain. The production of this important cellular protein in the laboratory has significant applications in production of the recombinant pharmaceutical proteins.
Total genomic DNA library of Serratia marcescens was prepared by inserting Sau3AI partial digesting fragments(above 5 kb) into the dephosphorylated BamHl site of pUC19. In primary screening, two colonies were selected by observing the halo around E. coli transformants grown on the swollen colloidal chitin media. Secondary screening was performed by soaking two colonies with a few drops of 4-methylumbelleliferryl N-acetyl-$\beta$-D-glucocosaminide(4-MuNGlcNAc). As 4-MuNGlcNAc is a specific, fluorogenic substrate for chitinase, the positive clones produce light fluorescence by the exposure under the long wave U.V. light(360 nm). From genomic DNA library derived from pUC19, we have isolated two different chitinase clones, pCH1(11.0Kb) and pCH2(7.5Kb), which show completely different restriction map to each other. The cross-hybridization of pCH1EA and pCH2 have not revealed any hybridization signals to each other.
Antibiotic resistant bacteria isolated from the river water in Cheongju City were studied on the transfer of their R-plasmids in water environment. The R-plasmids were transferred by conjugation between the isolates ai the frequencies of 1.1$\times$10$^{-6}$ to 1.2$\times$10$^{-7}$ under laboratory condition and 1.2$\times$10$^{-7}$ to 1.0$\times$10$^{-9}$ in natural environment. The R-plasmids isolated from those bacteria were also transferred into the recipient cells of E. coli HB101 at the frequencies of 1.7-6.7$\times$10$^{-6}$. The AP$^{r}$Cm$^{r}$Tc$^{r}$-plasmid of isolate T-44 which were transformation by conjugation and transformation was determined to be 9.01 kilobses in molecular size. When the AP$^{r}$Cm$^{r}$Tc$^{r}$-plasmid DNA was treated with restriction endonuclease, the plasmid appeared to have one restriction site for EroRI and BamHI, respectively, and three sites for Pst I endonuclease.
The gene for the Bdi I modification enzyme, which is one of Bdi I restriction-modification system, fromBrevibacterium divaricatum FERM 5948 was cloned and expressed in E. coli. For cloning of the Bdi I methylase gene, we have initially used three cloning site(EcoRI, BamHI and Sal I) of plasmid vector pBR 322 and adopted the retransformation method after Bdi I restriction endonuclease cleavage. Selection of transformants carrying the gene was based on the resistance of the modified plasmid encoding the enzyme to cleavage by Bdi I restriction enzyme, and the recombinant plasmid pBDIM 116 containing 5.6kb EcoRI insery was proved to carry the gene. Crude cell extracts prepared from strains carrying the plasmid pBDIM 116 contained an S-adenosylmethionine-dependent methyltransferase activity specific for the Bdi I recognition site, ATCGAT. The restriction map was constructed with 11 restriction enzyme, and the Bdi I restriction-modification system was also discussed.
Journal of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers
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v.15
no.1
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pp.67-74
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2002
A phosphor for Plasma Display Panel, BaMgAl$_{10}$ O$_{17}$ :Eu$^{2+}$, showing a blue emission band at about 450nm was prepared by a solid-state reaction using BaCO$_3$, $Al_2$O$_3$, MgO, Eu$_2$O$_3$ as starting materials wish flux AlF$_3$. The study of the behaviour of Eu in BAM phosphor was carried out by the photoluminescence spectra and the Rietveld method with X-ray and neutron powder diffraction data to refine the structural parameters such as lattice constants, the valence state of Eu, the preferential site of Mg atom and the site fraction of each atom. The phenomenon of the concentration quenching was abound 2.25~2.3wt% of Eu due to a decrease in the critical distance for energy transfer of inter-atomic Eu. Through the combined Rietveld refinement, R-factor, R$_{wp}$, was 8.11%, and the occupancy of Eu and Mg was 0.0882 and 0.526 at critical concentration. The critical distance of Eu$^{2+}$ in BAM was 18.8$\AA$ at 2.25% Eu of the concentration quenching. Furthermore, c/a ratio was decreased to 3.0wt% and no more change was observed over that concentration. The maximum entropy electron density was found that the modeling of $\beta$-alumina structure in BaMgAl$_{10}$ O$_{17}$ :Eu$^{2+}$correct coincided showing Ba, Eu, O atoms of z= 1/4 mirror plane.e.ane.e.
For screening of autoregulator receptor gene from Saccharopolyspora erythraea, PCR was performed with primers of receptor gene designed on the basis of amino acid sequences of autoregulator receptor proteins with known function. PCR products were subcloned into the BamHI site of pUC19 and transformed into the E. coli DH5$\alpha$. The isolated plasmid from transformant contained the fragment of 120 bp, which was detected on 2% gel after BamHI treatment. The insert, 120 bp PCR product, was confirmed as the expected internal segment of gene encoding autoregulator receptor protein by sequencing. Southern and colony hybridization using Saccha. erythraea chromosomal DNA were performed with the insert as probe. The plasmid (pEsg) having 3.2 kbp SacI DNA fragment from Saccha. erythraea is obtained. The 3.2 kbp SacI DNA fragment was sequenced by the dye terminator sequencing. The nucleotide sequence data was analyzed with GENETYX-WIN (ver 3.2) computer program and DNA database. frame analyses of the nucleotide sequence revealed a gene encoding autoregulator receptor protein which is a region including KpnI and SalI sites on 3.2 kbp SacI DNA fragment. The autoregulator receptor protein consisting of 205 amino acid was named EsgR by author. In comparison with known autoregulator receptor proteins, homology of EsgR showed above 30%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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