Lipopolysaccharide (LPS), found in the outer membrane of Gram negative bacteria, only exerts its toxic effects when in free form. LPS has three major parts, lipid A, the toxic component, along with a core polysaccharide and O-specific polysaccharide. LPS monomers are known to have molecular masses between 10 to 30 kDa. Under physiological conditions, LPS exists in equilibrium between monomer and vesicle forms. LPS removal by 100 kDa ultrafiltration was more efficient (99.6% of LPS removed) with a low concentration of protein (2.0 mg/ml) compared to a high concentration (20.1 mg/ml). In the presence of different detergents (0.5% Tween 20, 1.0% taurodeoxycholate and 1.0% Triton X-100), LPS removal was more efficient at low protein concentrations (2.0 mg/ml) compared to high protein concentrations (20.1 mg/ml).
Choi, Hye Jung;Hwang, Min Jung;Kim, Dong Wan;Joo, Woo Hong
Journal of Life Science
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v.26
no.5
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pp.603-607
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2016
A crude extracellular lipase from solvent-tolerant bacterium Pseudomonas sp. BCNU 106 was highly stable in the broad pH range of 4-10 and at temperature of 37℃. Crude lipase of BCNU 106 exhibited enhanced stability in 25% organic solvents such as xylene (121.85%), hexane (120.35%), octane (120.41 %), toluene (118.14%), chloroform (103.66%) and dodecane (102.94%) and showed excellent stability comparable with the commercial immobilized enzyme. In addition, the stability of BCNU 106 lipase retained above 110% of its enzyme activity in the presence of Cu2+, Hg2+, Zn2+ and Mn2+, whereas Fe2+ strongly inhibited its stability. The detergents including tween 80, triton X-100 and SDS were positive signals for lipase stability. Because of its stability in multiple organic solvents, cations and surfactants, the Pseudomonas sp. BCNU 106 lipase could be considered as a potential biocatalyst in the industrial chemical processes without using immobilization.
In this study, a fundamental study was conducted to establish the method for quantitative analysis and pretreatment of triclosan, one of the chemicals to be used as bactericides, detergents, and sterilizers. The extraction efficiency of triclosan was the highest when it was extracted by soxhlet apparatus with n-hexane, and it showed a satisfactory result when the samples were analyzed with both GC/ECD and GC/MS. To evaluate the reproductivity of the results, each 30 reference samples made with paper filter and cotton wool was prepared in this study. From the results with high extraction effectiveness, low analysis deviation, and good statistical analysis data, the method for the extraction and analysis for triclosan were resonable for the paper and textile samples applied in this study.
Cytochrome oxidase was purified from bovine-heart mitochondria and its enzymatic properties were examined. The purified cytochrome oxidase was identified by its absorption spectrum and chromatogram through gel filtration. The specific activity, purification degree and yield of purified cytochrome oxidase were 18 nmol/mg/ml/min, 24.83 fold and 0.93%, respectively. The activity of the enzyme assayed by a ferrocytochrome $c-O_2$ system was optimized at $25^{\circ}C$ and pH 6.5. Examining the effect of nonionic detergents established that cytochrome oxidase was deactivated by Triton X-100. The oxidase was activated by Tween 80 and deactivated by Tween 20. The Michaelis constant and maximum velocity of the oxidase for ferrocytochrome c were 0.032~0.044 mM and 0.019~0.021 mM/min, respectively. After adaption to basal diet for a week, experimental diets containing 6 mg Cu/kg, or zero mg Cu/kg, or 12 mg Cu/kg were fed to a control group, a copper-free group and a copper-rich group of Sprague-Dawley rats, respectively, for 4 weeks. The specific activities assayed for the ferrocytochrome $c-O_2$ system of isolated cytochrome oxidase from the rat liver of control, copper-free, and copper-rich group were 1.00, 1.19, and 0.878 nmol/mg/ml/min, respectively. Their degrees of purification were 11.38, 10.82 and 8.78 fold, respectively. The specific activities for liver and heart mitochondrial cytochrome oxidase of copper-free/copper-rich groups assayed using the ferrocytochrome $c-O_2$ system were 81.4% and 96.4%/64.1% and 61.1%, respectively, compared with those of the control.
Characterization and in vitro inhibition studies of protease inhibitor from the mushroom Pleurotus floridanus (PfTI) towards the pest Papilio demoleus is studied. The addition of 1 mM Mn2+, Na2+, Ba2+ and Ni 2+ enhanced the PfTI activity. The ICP-atomic emission spectrum showed the presence of Ca2+, Mg2+ and Zn2+ in the PfTI. Surfactants SDS and CTAB at a concentration of 1% reduced the PfTI activity whereas, the nonionic detergents Triton X and Tween 80 increased the activity. The inhibitory activity gradually decreased with increase in concentration of DMSO and H2O2. The activity was increased by dithiothreitol up to a concentration of 80 μM and inactivated at 140 μM. The activity of PMSF modified PfTI was drastically reduced to 0.234 U/mL at 4 mM concentration and similar results were obtained for modification of cysteine by N-Ethylmaleimide at slightly higher concentrations. The complex of trypsin and PfTI showed complete loss in fluorescence intensity at 343 nm compared with control. In vitro inhibition studies of PfTI with midgut proteases isolated from citrus pest P. demoleus with protease activity of 1.236 U was decreased to 0.613 U by 50 μL (0.1 mg/mL) of the inhibitor. Inhibitor was stable up to 0.04 M concentration of HCl.
Journal of the Korean Society of Clothing and Textiles
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v.13
no.3
s.31
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pp.207-222
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1989
New process for the preparation of the artificially soild cloth (ASC) used for detergency evaluation was developed and its detergency was also studied. ASC was prepared by the dipping of cotton cloth in the water in which oily soil, protein (gelatine), carbon black and clay had been dispersed. The clay used for this ASC was red yellowish soil around Mt. Kumjung and was a typical soil in Pusan area. Adhesive status of soil at prepared ASc was examined by an electron microscope, and crystallyzation and color change of used clay were evaluated with the determination of X-ray diffraction and surface reflectance. For the evaluation of detergency by the washing with commercial and model detergents, the behavior of soil removal from this ASC comparing with naturally soiled collar cloth was examined. Those results are summerized as followings; 1) Adhesive ststus of soil at prepared ASc was very similar to that of naturally soiled collar cloth. 2) A crystalline of clay calcined at $800^{\circ}C$ was disappeared in part and color of calcined clay changed into reddish yellow by the decomposition of organic matters. 3) More uniform ASc was prepared with clay calcined at $800^{\circ}C\;that\;200^{\circ}C$ however its detergency prepared from clay calcined at $800^{\circ}C$ was poor 4) A significant relationship between the content of inorganic matter in ASc and K/S value was found, however no significant result between the content of protein contaminated and K/S value was observed. 5) Detergency of prepared ASc had a very similar to that of naturally soiled collar cloh.
Journal of the Korean Society of Clothing and Textiles
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v.30
no.11
s.158
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pp.1589-1597
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2006
Nowadays, Korean consumers prefer drum-type washing machines to pulsator-type washers. Washing is a complex process involving the interaction of numerous physical and chemical influences. The main factors in the washing operations are the washing chemistry of the detergent along with the mechanical input, the wash temperature, and the time provided by the washing machine. Heavy-duty detergents that are used in drum-type washing machines contain different components from those used in vertical-axis washing machines. The bath ratio and the mechanical actions to which laundry is subjected are different between the drum-type and the vertical-axis washing machines. In this study we examined the effects of wash temperature, wash time, detergent concentration, and revolution speed on the removal of soils from artificially soiled cloths in a drum-type washing machine with heavy-duty commercial detergent. We used multiple regression analyses to find the relative importance of the factors and the optimum washing conditions. The results of these experiments showed that the washing temperature was the most important factor in the effective removal of most soils. This was followed by the washing time, the detergent concentration, and finally the revolution speed. In this study it was found that superfluous amounts of detergent did not sufficiently increase the soil removal rate. Koreans who are used to washing with cold water should increase the wash time to launder more efficiently.
Extracellular serine proteases were isolated from a soil bacterium, alkalophilic coryneform bacterium TU-19, which have been grown in a liquid medium optimized at 3$0^{\circ}C$ and pH 10.0. Three different sizes, 120 kDa (protease I), 80 kDa (protease II), and 45 kDa (protease III), of serine pro teases were purified using Sephadex G-150 and QAE-Sephadex chromatography (Kang et al. 1995. Agric. Chem Biotech. 38: 534-540). SDS-PAGE showed that the 120 kDa protease was degraded into the 80 kDa protease in 20 mM Tris-HCI (pH 8.0) buffer solution. This degradation was enhanced in the presence of 0.5 M NaCl and 5 mM EDTA, but was inhibited in the presence of 5 mM $CaCl_2$. These results indicated that the $Ca^{2+}$ ion seems to stabilize the 120 kDa protease like other proteases derived from Bacillus species. The $NH_2$-terminal amino acid sequences of the 10 residues of both proteases were completely identical: Met-Asn-Thr-Gln-Asn-Ser-Phe-Leu-Ile-Lys. In contrast to this, the 80 kDa protease has 1.5 times higher specific activity than the 120 kDa protease does (Kang et al. 1995. Agric. Chern. Biotech. 38: 534-540). Therefore the C-terminal of the 120 kDa protease seems to be autolyzed to the 80 kDa protease but this autolysis did not decrease the protease activity. Optimum pH and temperature of both 80 kDa and 120 kDa proteases were pH 10.5 and $45^{\circ}C$, respectively, and pH and thermal stability were almost identical. Several divalent ions except the $Fe^{2+}$ ion showed similar effects on activities of both proteases, which are similarly resistant to three different detergents.
A novel protease gene from Bacillus gibsonii, aprBG, was cloned, expressed in B. subtilis, and characterized. High-level expression of aprBG was achieved in the recombinant strain when a junction was present between the promoter and the target gene. The purified recombinant enzyme exhibited similar N-terminal sequences and catalytic properties to the native enzyme, including high affinity and hydrolytic efficiency toward various substrates and a superior performance when exposed to various metal ions, surfactants, oxidants, and commercial detergents. AprBG was remarkably stable in 50% organic solvents and retained 100% activity and stability in 0-4 M NaCl, which is better than the characteristics of previously reported proteases. AprBG was most closely related to the high-alkaline proteases of the subtilisin family with a 57-68% identity. The secretion and maturation mechanism of AprBG was dependent on the enzyme activity, as analyzed by site-directed mutagenesis. Thus, when taken together, the results revealed that the halo-solvent-tolerant protease AprBG displays significant activity and stability under various extreme conditions, indicating its potential for use in many biotechnology applications.
An esterase gene, estA1, was cloned from Alteromonas sp. 39-G1 isolated from the Beaufort Sea. The gene is composed of 1,140 nucleotides and codes for a 41,190 Da protein containing 379 amino acids. As a result of a BLAST search, the protein sequence of esterase EstA1 was found to be identical to Alteromonas sp. esterase (GenBank: PHS53692). As far as we know, no research on this enzyme has yet been conducted. Phylogenetic analysis showed that esterase EstA1 was a member of the bacterial lipolytic enzyme family IV (hormone sensitive lipases). Two deletion mutants (Δ20 and Δ54) of the esterase EstA1 were produced in Escherichia coli BL21 (DE3) cells with part of the N-terminal of the protein removed and His-tag attached to the C-terminal. These enzymes exhibited the highest activity toward p-nitrophenyl (pNP) acetate (C2) and had little or no activity towards pNP-esters with acyl chains longer than C6. Their optimum temperature and pH of the catalytic activity were 45℃ and pH 8.0, respectively. As the NaCl concentration increased, their enzyme activities continued to increase and the highest enzyme activities were measured in 5 M NaCl. These enzymes were found to be stable for up to 8 h in the concentration of 3-5 M NaCl. Moreover, they have been found to be stable for various metal ions, detergents and organic solvents. These salt-tolerant and chemical-resistant properties suggest that the enzyme esterase EstA1 is both academically and industrially useful.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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