Background : Lung carcinogenesis is a multistage process involving alterations in multiple genes and diverse pathway. Mutational activation of oncogenes and inactivation of tumor suppressor genes, and subsequent increased genetic instability are the major genetic events. The p53 gene and FHIT gene as tumor suppressor genes contribute to the pathogenesis of lung cancer, evidenced by mutation, microsatellite instability(MI) and loss of heterozygosity(LOH). Methods : We analysed genetic mutations of p53 and FHIT gene in 29 surgical specimens of nonsmall cell lung cancer using PCR-single strand conformation polymorphism, DNA sequencing and RT-PCR. MI and LOH were analyzed in loci of D3S1285, D9S171, and TP53. Results : In 2 cases, point mutation of p53 gene was observed on exon 5. MI of 3 times and LOH of 14 times were observed in at least one locus. In terms of the location of microsatellite, D3S1285 as a marker of FH1T was observed in 5 cases out of 26 specimens; D9S171 as a marker of p16 in 5 out of 17; and TP53 as a marker of p53 in 7 out of 27. In view of histologic type, squamous cell carcinoma presented higher frequency of microsatellite alteration, compared to others. Mutation of FHIT gene was observed in 11 cases and 6 cases of those were point mutation as a silent substitution on exon 8. FHIT mRNA expression exhibited deletion on exon 6 to 9 in 4 cases among 15 specimens, presenting beta-actin normally. Conclusion : Our results show comparable frequency of genetic alteration in nonsmall cell lung cancer to previous studies of Western countries. Microsatellite analysis might have a role as a tumor marker especially in squamous cell carcinoma. Understanding molecular abnormalities involved in the pathogenesis could potentially lead to prevention, earlier diagnosis and the development of novel investigational approaches to the treatment of lung cancer.
Lin, Hai Hua;Kim, Hee-Youn;Yun, Yeo-Jun;Park, Chan Geun;Kim, Bum-Joon;Park, Young-Gil;Kook, Yoon-Hoh
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.63
no.2
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pp.128-138
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2007
Backgrounds: Mutations of katG and inhA (ORF and promoter) are known to be related to isoniazid (INH) resistance of Mycobacterium tuberculosis. Because reports on these mutations in Korean isolates are limited (i.e. only the frequency of katG codon 463 was evaluated.), we tried to know the kinds of mutations of two genes and their frequencies in INH resistant Korean M. tuberculosis strains. Methods: PCR was performed to amplify katG (2,223 bp), inhA ORF (-77~897, 975 bp), and inhA promoter (-168~80, 248 bp) from 29 multidrug resistant M. tuberculosis (MDR-TB) DNAs prepared by bead beater-phenol method. Their sequences were determined and analyzed by ABI PRISM 3730 XL Analyzer and MegAlign package program, respectively. Results: All of the isolates had more than one mutation in katG or inhA gene. Twenty seven (93%) of 29 tested strains had katG mutations, which suggests that katG is a critical gene determining INH resistance of M. tuberculosis. Amino acid substitutions, such as Arg463Leu and Ser315Thr, due to point mutations of the katG were the most frequent (62.1% and 55.2%) mutations. In addition, deletion of the katG gene was frequently observed (17.2%). Analyzed Korean MDR-TB isolates also had variable inhA mutations. Point mutation of inhA promoter region, such as -15 ($C{\rightarrow}T$) was frequently found. Substitution of amino acid (Lsy8Asn) due to point mutation ($AAA{\rightarrow}AAC$) of inhA ORF was found in 1 isolate. Interestingly, 14 point mutated types that were not previously reported were newly found. While four types resulted in amino acid change, the others were silent mutations. Conclusions: Although it is not clear that the relationship of these newly found mutations with INH resistance, they show marked diversity in Korean MDR-TB strains. It also suggests their feasibility as a molecular target to supplement determining the INH resistance of clinical isolates because of the possible existence of low-level INH resistant strains.
Patients with non-small cell lung cancer (NSCLC) who have activating epidermal growth factor receptor (EGFR) mutations derive clinical benefit from treatment with EGFR-tyrosine kinase inhibitors ((EGFR-TKIs)-namely gefitinib and erlotinib. However, these patients eventually develop resistance to EGFR-TKIs. Despite the fact that this acquired resistance may be the result of a secondary mutation in the EGFR gene, such as T790M or amplification of the MET proto-oncogene, there are other mechanisms which need to be explored. MicroRNAs (miRs) are a class of small non-coding RNAs that play pivotal roles in tumorigenesis, tumor progression and chemo-resistance. In this study, we firstly successfully established a gefitinib resistant cell line-HCC827/GR, by exposing normal HCC827 cells (an NSCLC cell line with a 746E-750A in-frame deletion of EGFR gene) to increasing concentrations of gefitinib. Then, we found that miR-214 was significantly up-regulated in HCC827/GR. We also showed that miR-214 and PTEN were inversely expressed in HCC827/GR. Knockdown of miR-214 altered the expression of PTEN and p-AKT and re-sensitized HCC827/GR to gefitinib. Taken together, miR-214 may regulate the acquired resistance to gefitinib in HCC827 via PTEN/AKT signaling pathway. Suppression of miR-214 may thus reverse the acquired resistance to EGFR-TKIs therapy.
Toll-like receptors (TLRs) play an important role in the recognition of invading pathogens and the modulation of innate immune responses in mammals. The TLR4 and TLR7 are well known to recognize the bacterial lipopolysaccharide (LPS) and single stranded (ssRNA) ligands, respectively and play important role in host defense against Gram-negative bacteria and ssRNA viruses. In the present study, coding exon fragments of these two TLRs were identified, cloned, sequenced and analyzed in terms of insertion-deletion polymorphism, within bovine TLRs 4 and 7, thereby facilitating future TLR signaling and association studies relevant to bovine innate immunity. Comparative sequence analysis of TLR 4 exons revealed that this gene is more variable, particularly the coding frame (E3P1), while other parts showed percent identity of 95.7% to 100% at nucleotide and amino acid level, respectivley with other Bos indicus and Bos taurus breeds from different parts of the world. In comparison to TLR4, sequence analysis of TLR7 showed more conservation among different B. indicus and B. taurus breeds, except single point mutation at 324 nucleotide position (AAA to AAM) altering a single amino acid at 108 position (K to X). Percent identity of TLR7 sequences (all 3 exons) was between 99.2% to 100% at nucleotide and amino acid level, when compared with available sequence database of B. indicus and B. taurus. Simple Modular Architecture Research Tool (SMART) analysis showed variations in the exon fragments located in the Leucine Rich Repeat (LRR) region, which is responsible for binding with the microbial associated molecular patterns and further, downstream signaling to initiate anti-microbial response. Considering importance of TLR polymorphism in terms of innate immunity, further research is warranted.
KO mice provide an excellent tool to determine roles of specific genes in biomedical filed. Traditionally, knockout mice were generated by homologous recombination in embryonic stem cells. Recently, engineered nucleases, such as zinc finger nuclease, transcription activator-like effector nuclease and clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), were used to produce knockout mice. This new technology is useful because of high efficiency and ability to generate biallelic mutation in founder mice. Until now, most of knockout mice produced using engineered nucleases were C57BL/6 strain. In the present study we used CRISPR-Cas9 system to generate knockout mice in FVB strain. We designed and synthesized single guide RNA (sgRNA) of CRISPR system for targeting gene, Abtb2. Mouse zygote were obtained from superovulated FVB female mice at 8-10 weeks of age. The sgRNA was injected into pronuclear of the mouse zygote with recombinant Cas9 protein. The microinjected zygotes were cultured for an additional day and only cleaved embryos were selected. The selected embryos were surgically transferred to oviduct of surrogate mother and offsprings were obtained. Genomic DNA were isolated from the offsprings and the target sequence was amplified using PCR. In T7E1 assay, 46.7% among the offsprings were founded as mutants. The PCR products were purified and sequences were analyzed. Most of the mutations were founded as deletion of few sequences at the target site, however, not identical among the each offspring. In conclusion, we found that CRISPR system is very efficient to generate knockout mice in FVB strain.
Seo, Back-Won;Kim, Hee-Kyoung;Lee, Yin-Won;Yun, Sung-Hwan
The Plant Pathology Journal
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v.23
no.2
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pp.51-56
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2007
A plant pathogenic fungus, Gibberella zeae (anamorph: Fusarium graminearum), not only generates economic losses by causing disease on cereal grains, but also leads to severe toxicosis in human and animals through the production of mycotoxins in infected plants. Here, we characterized a histidine auxotrophic mutant of G. zeae, designated Z43R1092, which was generated using a restriction enzyme-mediated integration (REMI) procedure. The mutant exhibited pleiotropic phenotypic changes, including a reduction in mycelial growth and virulence and loss of sexual reproduction. Outcrossing analysis confirmed that the histidine auxotrophy is linked to the insertional vector in Z43R1092. Molecular analysis showed that the histidine requirement of Z43R1092 is caused by a disruption of an open reading frame, designated GzHIS7. The deduced product of GzHIS7 encodes a putative enzyme with an N-terminal glutamine amidotransferase and a C-terminal cyclase domain, similar to the Saccharomyces cerevisiae HIS7 required for histidine biosynthesis. The subsequent gene deletion and complementation analyses confirmed the functions of GzHIS7 in G. zeae. This is the first report of the molecular characterization of histidine auxotrophy in G. zeae, and our results demonstrate that correct histidine biosynthesis is essential for virulence, as well as sexual development, in G. zeae. In addition, our results could provide a G. zeae histidine auxotroph as a recipient strain for genetic transformation using this new selectable marker.
Kim, Joon-Sung;Lee, Jae-Seung;Noh, Ha-Young;Kim, Byung-Ju;Woo, Young-Jong;Park, Jee-Min;Kim, Myung-Gwan;Kim, Gu-Hwan;Yoo, Han-Wook
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.46
no.5
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pp.505-509
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2003
Lesch-Nyhan syndrome is an X-linked recessive disorder characterized by hyperuricemia, choreoathetosis, spasticity, mental retardation, and compulsive, self-injurious behavior. This disorder results from a complete deficiency of the purine salvage enzyme, hypoxanthine-guanine phosphoribosyl transferase(HPRT). We report here on a case of Lesch-Nyhan syndrome in a 1-year, 7-month-old male who presented with frequent vomiting, failure to thrive, and developmental delay. The diagnostic work-up revealed hyperuricemia, hyperuricosuria, and medullary nephrolithiasis. The HPRT activity in the erythrocytes was undetectable with a biochemical assay. We also identified de novo mutation which was a deletion of the 649th base, adenosine, in HPRT gene(649delA) by analysis of cDNA using RT-PCR technique coupled with direct sequencing.
Jung, Seong Kwan;Park, Kyu Hee;Shin, Hae Kyung;Eun, So Hee;Eun, Baik-Lin;Yoo, Kee Hwan;Hong, Young Sook;Lee, Joo Won;Bae, Sook Young
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.52
no.6
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pp.701-704
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2009
SmithMagenis syndrome (SMS) is a rare disorder with multiple congenital anomalies caused by a heterozygous interstitial deletion involving chromosome 17p11.2, where the retinoic acid-induced 1 (RAI1) gene is located, or by a mutation of RAI1. Approximately 90% of the patients with SMS have a detectable 17p11.2 microdeletion on fluorescence in-situ hybridization (FISH). SMS is characterized by mental retardation, distinctive behavioral features, craniofacial and skeletal anomalies, speech and developmental delay, and sleep disturbances. Although there are some intervention strategies that help individuals with SMS, there are no reported specific interventions for improving the outcome in children with SMS. Here, we report two cases of SmithMagenis syndrome.
We have developed an efficient and precise method for genome manipulations in Bacillus subtilis that allows rapid alteration of a gene sequence or multiple gene sequences without altering the chromosome in any other way. In our approach, the Escherichia coli toxin gene mazF, which was used as a counter-selectable marker, was placed under the control of a xylose-inducible expression system and associated with an antibiotic resistance gene to create a "mazF-cassette". A polymerase chain reaction (PCR)-generated fragment, consisting of two homology regions joined to the mazF-cassette, was integrated into the chromosome at the target locus by homologous recombination, using positive selection for antibiotic resistance. Then, the excision of the mazF-cassette from the chromosome by a single-crossover event between two short directly repeated (DR) sequences, included in the design of the PCR products, was achieved by counter-selection of mazF. We used this method efficiently and precisely to deliver a point mutation, to inactivate a specific gene, to delete a large genomic region, and to generate the in-frame deletion with minimal polar effects in the same background.
Aspergillus oryzae is generally recognized as safe, but it is closely related to A. flavus in morphology and genetic characteristics. In this study, we tested the aflatoxigenicity and genetic analysis of nine commercial A. oryzae strains that were used in Korean soybean fermented products. Cultural and HPLC analyses showed that none of the commercial strains produced detectable amount of aflatoxins. According to the molecular analysis of 17 genes in the aflatoxin (AF) biosynthetic pathway, the commercial strains could be classified into three groups. The group I strains contained all the 17 AF biosynthetic genes tested in this study; the group II strains deleted nine AF biosynthetic genes and possessed eight genes, including aflG, aflI, aflK, aflL, aflM, aflO, aflP, and aflQ; the group III strains only had six AF biosynthetic genes, including aflG, aflI, aflK, aflO, aflP, and aflQ. With the reverse transcription polymerase chain reaction, the group I A. oryzae strains showed no expression of aflG, aflQ and/or aflM genes, which resulted in the lack of AF-producing ability. Group II and group III strains could not produce AF owing to the deletion of more than half of the AF biosynthetic genes. In addition, the sequence data of polyketide synthase A (pksA) of group I strains of A. oryzae showed that there were three point mutations (two silent mutations and one missense mutation) compared with aflatoxigenic A. flavus used as the positive control in this study.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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