In Escherichia coli, DicA protein is involved in cell division control. DicA protein is known to bind DNA better at $25^{\circ}C$ than at $37^{\circ}C$. However, the molecular cause of the temperature dependent binding is not clear. In this study, we investigated how DicA binds DNA and why its DNA binding activity depends on temperature. An unique in vivo DNA binding assay developed in this laboratory showed that unlike the homologous proteins such as RovA or SlyA, DicA uses its N-terminal domain for DNA binding. The in vivo DNA binding assay of DicA also demonstrated that the temperature-dependent DNA binding activity does not come from Cnu or H-NS that is known to bind DNA better at $25^{\circ}C$ than at $37^{\circ}C$. Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA), when performed with purified DicA protein, did not show temperature-dependent DicA binding activity. However when EMSA was performed with crude protein from WT E. coli cells, temperature-dependent DicA binding activity was observed, suggesting that there is a factor(s) that confers temperature DNA binding activity of DicA in vivo.
eDNA, an abbreviation for environmental DNA, means DNA derived from organisms inhabiting in a specific environment. The utilization of eDNA extracted from environmental samples allows for efficient and accurate monitoring of organisms inhabiting the respective environment. Specifically, eDNA obtained from seawater samples can be used to analyze marine biodiversity. After collecting seawater samples and extracting eDNA, metagenome analysis enables the taxonomic and diversity analysis among marine organisms inhabiting the sampled area. This review proposed an overall process of marine biodiversity analysis by utilizing eDNA from seawater. Currently, the application of eDNA for analyzing marine biodiversity in domestic setting is not yet widespread. This review can contribute to establishment of marine eDNA research methods in Korea, providing valuable assistance in standardizing the use of eDNA in marine biodiversity studies.
In this study, the extent of plasmid DNA damage was observed according to concentration of BSH(Boron Sulfhydryl Hydride) and irradiation doses of neutron and ${\gamma}$-ray. The plasmid used was both pBR 322 (2870 bp) and ${\Phi}X174$ RF(5386 bp) DNA. Plasmid DNA damage by irradiation in the presence of BSH was analyzed by agarose gel electrophoresis. In the neutron experiment, DNA damage of both plasmid DNAs was increased according to increasing the concentration of BSH and neutron doses. But in the ${\gamma}$-ray experiment, there appeared no dose dependency as compared to the neutron experiment. The extent of the plasmid DNA damage in the presence of BSH was somewhat different according to irradiation by neutron or ${\gamma}$-ray.
To develop a simplified method that can rapidly prepare DNA microarray probes in a massive scale, a lambda phage genomic DNA-fragments library was constructed for the microarray-probes collection. Four methods of DNA band recovery from the first PCR products were tested and compared. The DNA microarray probes were collected by a novel method of nested PCR that was mediated by gel isolation of the first PCR products. This method was named GIN-PCR. The probes that were prepared by this GIN-PCR technique were used as subjects to fabricate a DNA microarray. The results showed that a wooden toothpick was superior to the other 3 methods, since this technique can steadily transfer the DNA bands as the template of the second PCR after the first PCR. A group of probes were successfully collected and DNA microarrays were constructed using these probes. Hybridization results demonstrated that this technique of DNA recovery and probe preparation was rapid, efficient, and effective. We developed a cost-effective and less labor-intensive method for DNA microarray probe preparation by nested PCR that is mediated by wooden toothpick transfer of the DNA bands in the gel after electrophoresis.
It is still difficult and time consuming to obtain cDNA sequences that contain the entire nucleotide sequence of the corresponding mRNA. A rapid and high efficient cloning method to obtain full-length cDNA segments is thus developed. The cloning procedure described here consists of the construction of oligo(dT)-tailed vector primer using pWR34 plasmid, polyadenylation of mRNA-cDNA heteroduplex using terminal deoxytransferase, and replacement of MRNA strand with DNA by RNase H and DNA polymerase I. The restriction endonuclease analysis shows that the size of inserted-cDNA is in the range of 1.5~4.0 kb long suggesting that most of cloned cDNA are full-length or nearly full-length cDNA. The plasmid-DNA recombinants obtained were 4$\times$$10^5$~$10^{6}$ per $\mu\textrm{g}$ of rat liver poly (A$^+$)mRNA, which is 4 to 10 fold higher cloning efficiency in comparison to the presently used methods for full-length cDNA cloning. The results indicate that the described cloning system is much simpler, less time consuming, and very efficient cloning method to construct a cDNA library.
Taq DNA polymerase exhibits a sizable drawback compared to the other thermophilic DNA polymerases in that it demonstrates lower proof-reading activity due to the deficiency of 3'-5'exonuclease activity. A study was undertaken to improve the 3'-5' exonuclease activity in the PCR of Taq DNA polymerase. The three-dimensional structural alignment of the polymerase and 3'-5' exonuclease domains from the pol I family DNA polymerases explains why Taq DNA polymerase has just a background level of 3'-5'exonuclease activity. A comparison indicated that the two polymerase domains are very similar in primary and tertiary conformations, even though Taq DNA polymerase carries a much shorter 3'-5'exonuclease domain than that of E. coli DNA polymerase I. Those two polymerase domains were interchanged between Taq DNA polymerase and E. coli DNA polymerase I. The 3'-5' exonuclease domain from E. coli DNA polymerase I was separated and pasted into the polymerase domain of Taq DNA polymerase I, which resulted in a functional fusion-Stoffel fragment. The 3'-5'exonuclease activity of the fusion-Stoffel fragment increased up to 48% of the value of the Klenow fragment, while that of Taq DNA polymerase remained at 6.0% of the Klenow fragment.
This study exploits the robot system which is necessary in gene study and bio-technology industry. As well, a DNA chip, which of use has been increased recently, can be manufactured with this system. The robot consists of a device spotting DNA on the silylated slide, a well plate, a bed for fixing well plates, devices of washing and drying the pin in DNA spotting .device, a distillation-water vessel, and a discharge vessel of wash water. We made the period of sticking DNA to the pin on the well plate to be 15 seconds. The spot size of DNA was set to be 0.28 mm on the average by bringing the slide into contact with pin during 1 second. If DNA is spotted in minimum space possible about 0.32mm, this system can stick about 8,100 DNA spots on the well plate with this rate. Analyzing the procedure: Movement starts, Pin washes, dries, and smears DNA on the well plate. Spotting DNA onto 12 chips took 2 minutes and 50 seconds.
Chinese hamster ovary (CHO)-K1 cells echibited a differential sensitivity in the process of DNA repair synthesis induced by ethyl methanesulfonate (EMS) or bleomycin (BLM) in relation to cell cycle. Two assays were employed in this study: alkaline elution and unscheduled DNA synthesis. The post-treat-ment with aphidicolin (APC), an inhibitor of DNA polymerase alpha, inhibited DNA repair synthesis induced by EMS in G2 phase, while APC did not show any effect on BLM-induced DNA repair synthesis in all phases. On the other hands, the 2', 3'-dideoxythymidine (ddTTP), an inhibitor of DNA polymerase beta, inhibited DNA repair synthesis induced by EMS or BLM in both of G1 and G2 phases. These results suggested that the involvement of DNA polymerase alpha and beta in DNA repair was dependent on cell stage or used chemical agent.
The binding interaction of ethidium to a series of synthetic deoxyoligonucleotides containing a B-Z junction between left-handed Z-DNA and right-handed B-DNA, was studied. The series of deoxyoligonucleotides was designed so as to vary a dinucleotide step immediately adjacent to a B-Z junction region. Ethidium binds to the right-handed DNA forms and hybrid B-Z forms which contain a B-Z junction, in a highly cooperative manner. In a series of deoxyoligonucleotides, the binding affinity of ethidium with DNA forms which were initially hybrid B-Z forms shows over an order of magnitude higher than that with any other DNA forms, which were entirely in B-form DNA The cooperativity of binding isotherms were described by an allosteric binding model and by a neighbor exclusion model. The binding data were statistically compared for two models. The conformation of allosterically converted DNA forms under binding with ethidium is found to be different from that of the initial B-form DNA as examined by CD spectra. The ratio of the binding constant was interestingly correlated to the free energy of base unstacking and the conformational conversion of the dinucleotide. The more the base stacking of the dinucleotide is unstable, or the harder the conversion of B to A conformation, the higher the ratio of the binding constant of ethidium with the allosterically converted DNA forms and with the initial B-Z hybrid forms. DNA sequence around a B-Z junction region affects the binding affinity of ethidium. The results in this study demonstrate that ethidium could preferentially interact with unusual DNA structures.
Dose response forDNA repair synthesis induced by various concentrations of MMC (0.05 $\\sim$ 0.5 $\\mu$g/ml) in HeLa $S_3$ cells was not dose-dependent and the amounts of it were relatively lower, representing $7\\sim9%$ of total DNA synthesizing cells in $0.1\\sim0.5 \\mug/ml$ concentrations. Time dependence study showed that MMC-induced DNA repair synthesis occurred as long as for 24 hours with similar incidences in all time courses. Pretreatment with BUdR was found to have a sensitization effect on MMC-induced DNA repair synthesis, but that with IUdR was not. Combined treatment with BUdR of IUdR and MMC suppressed remarkably the semiconservative DNA synthesis especially at later time course. These results seem to suggest that damages induced in DNA by MMC might be repaired by both fast and slow excision processes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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