The objective of this study was to clone a partial fragment of $\alpha$-amylase from Korean maize. We designed and synthesized an oligonucleotide probe and two kinds of PCR primers based on cDNA conserved region of $\alpha$-amylase sequences from other plants. Total RNA from 3-day-old maize seedling was used as template for 1st strand cDNA synthesis and RNA-DNA hybrid was used as template for polymerase chain reaction(PCR). The product of PCR was about 0.5 kb long and inserted into pUC19. We named this recombinant plasmid as pZM$\alpha$'. The cloned fragment was certified by Southern blot analysis using labeled synthetic oligonucleotide as probe.
Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein L (hnRNP L) is a major pre-mRNA binding protein and it is an abundant nuclear protein that shuttles between the nucleus and the cytoplasm. hnRNP L is known to be related to many cellular processes, including chromatin modification, pre-mRNA splicing, mRNA export of intronless genes, internal ribosomal entry site (IRES)-mediated translation, mRNA stability, and spermatogenesis. In order to identify the cellular proteins interacting with hnRNP L, this study performed a yeast two-hybrid screening, using a human liver cDNA library. The study identified insulin-like growth factor binding protein-4 (IGFBP-4) as a novel interaction partner of hnRNP L in the human liver. It then discovered, for the first time, that hnRNP L interacts specifically with IGFBP-4 in a yeast two-hybrid system. The authenticity of this two-hybrid interaction of hnRNP L and IGFBP-4 was confirmed by an in vitro pull-down assay.
Total tRNA genes from Aspergillus nidulans were cloned for the further investigation of the structure and expression of Aspergillus tRNA genes. Aspergillus DNA was isolated from spores and cloned into pBR322 plasmid DNA using BamHI and $T_4$ ligase. The recombinant hybrid DNA was transformed into E. coli HB101 and some 30,000 transformants were initially selected. Of these, about 5,300 E. coli clones containing Aspergillus DNA inserted into plasmid pBR322 at BamHl site have been isolated. The hybridization data obtained from the labeled Aspergillus $^{32}P-tRNA$ indicated that 105 colonies carried the total tRNA genes. From the data above and cohybridization experiment, tRNA genes of Aspergillus nidulans seem to be twice more clustered than those of yeast.
To determine the site at which -1 ribosomal frameshifting occurs within the gag-pro overlap of HTL V-I. DNA fragment corresponding to a portion of the gene overlap was cloned into a SP6 vector. The resultant plasmid harbors the hybrid gene consisting of a synthetic gene encoding 5 amino acids derived from chick prelysozyme including the initiator methionine plus 141 nucleotides of gag-pro overlapping region followed by Staphylococcus aurcus protein A gene fragment. In vitro transcription by SP6 RNA polymerase with this DNA template made an abundant amount of single species mRNA. Cell-free translation programmed with the RNA transcribed in vitro yielded a polypeptide of 21 kDal in size. which could be purified into homogeneity by IgG-Sepharose affinity chromatography. In vitro system described in this study must be useful for rapid purification and sequencing of the Gag-Pro transframe protein. allowing to determine the exact frameshift site on mRNA and to identify the tRNA involved in frameshifting event for the expression of pro gene.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.9
no.6
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pp.1795-1799
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2008
The heterogeneous nuclear ribonucleoprotein K (hnRNP K) is a component of hnRNP complexes. This protein binds strongly to cytidine-rich RNA/DNA sequences. It is a nucleocytoplasmic shuttling protein. To investigate the functions of hnRNP K, I searched for hnRNP K-interacting proteins in HeLa cDNA library using a yeast two-hybrid screening system. One of the cDNA clones is identical to human hnRNP E1 (poly(rC) binding protein 1) cDNA (GenBank accession number XM_031585). In this study, hnRNP K is shown to specifically interact with hnRNP E1 in yeast two-hybrid system and in vitro biochemical assay.
One specimen of a natural hybrid of an Oplegnathus (Oplegnathus fasciatus $\times$ Oplegnathus punctatus) was found in Tongyeong, Korea in August 2008. We, herein, describe its morphological and genetic characteristics and compare them with those of O. fasciatus and O. punctatus. In morphology, the hybrid showed many distinctive black rounded blotches on body sides and four faint vertical bars, being in those features similar to O. punctatus. Although the counts and measurements of the hybrid mostly overlapped between O. fasciatus and O. punctatus, the Oplegnathus hybrid resembled O. punctatus in the ratio of pelvic-fin length in standard length: Oplegnathus hybrid (26.7%) was closer to O. punctatus (26.4%) than to O. fasciatus (17.2~23.6%). In genetics, as a result of analysis of 510 base pair sequences of mitochondrial DNA 16S rRNA, the hybrid was closer to O. fasciatus (d=0.000~0.010) than to O. punctatus (d=0.020). Our results suggest that the natural hybridization represented by the subject specimen occurred between an O. fasciatus female and an O. punctatus male.
Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein E1(hnRNP E1) is one of the primary pre-mRNA binding proteins in human cells. It consists of 356 amino acid residues and harbors three hnRNP K homology(KH) domains that mediate RNA-binding. The hnRNP E1 protein was shown to play important roles in mRNA stabilization and translational control. In order to enhance our understanding of the cellular functions of hnRNP E1, we searched for interacting proteins through a yeast two-hybrid screening while using HeLa cDNA library as target. One of the cDNA clones was found to be human ribosomal protein L18a cDNA(GenBank accession number BC071920). We demonstrated in this study that human ribosomal protein L18a, a constituent of ribosomal protein large subunit, interacts specifically with hnRNP E1 in the yeast two-hybrid system. Such an interaction was observed for the first time in this study, and was also verified by biochemical assay.
RNase MRP is a ribonucleoprotein complex with a site-specific endonuclease activity. Its original substrate for cleavage is the small mitochondrial RNA near the mitochondrial DNA replication origin, thus it was proposed to generate the primer for mtDNA replication. Recently, it has been shown to have another substrate in the nucleus, such as pre-S.8S ribosomal RNA in nucleolus. The gene for the RNA component of RNase MRP (MRP RNA) was found to be encoded by the nucleus genome, suggesting an interesting intracellular trafficking of MRP RNA to both mitochondria and nucleolus after transcription in nucleus. In this study, genomic DNA encoding MRP RNA was microinjected into the nucleus of Xenopus oocytes, to analyze promoter regions involved in the transcription. It showed that the proximal sequence element and TATA box are important for basal level transcription; octamer motif and Sp1 binding sites are for elevated level transcription. Most of Xenopus MRP RNA was exported out to the cytoplasm following transcription in the nucleus. Utilizing various hybrid constructs, export of MRP RNA was found to be regulated by the promoter and the 5' half of the coding region of the gene. Interestingly, the transcription in nucleus seems to be coupled to the export of MRP RNA to cytoplasm. Intracellular transport of injected MRP RNA can be easily visualized by whole-mount in situ hybridization following microinjection; it also shows possible intra-nuclear sites for transcription and export of MRP RNA.
Kim, Hyoseon;Lee, Kwang Hyun;Kim, Kyung Bo;Park, Yong Serk;Kim, Keun-Sik;Kim, Dong-Eun
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.34
no.3
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pp.735-742
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2013
Peptide nucleic acids (PNAs) that bind to complementary nucleic acid sequences with extraordinarily high affinity and sequence specificity can be used as antisense oligonucleotides against microRNAs, namely antagomir PNAs. However, methods for efficient cellular delivery must be developed for effective use of PNAs as therapeutic agents. Here, we demonstrate that antagomir PNAs can be delivered to hepatic cells by complementary DNA oligonucleotide and cationic liposomes containing galactosylated ceramide and a novel cationic lipid, DMKE (O,O'-dimyristyl-N-lysyl glutamate), through glycoprotein-mediated endocytosis. An antagomir PNA was designed to target miR-122, which is required for translation of the hepatitis C virus (HCV) genome in hepatocytes, and was hybridized to a DNA oligonucleotide for complexation with cationic liposome. The PNA-DNA hybrid molecules were efficiently internalized into hepatic cells by complexing with the galactosylated cationic liposome in vitro. Galactosylation of liposome significantly enhanced both lipoplex cell binding and PNA delivery to the hepatic cells. After 4-h incubation with galactosylated lipoplexes, PNAs were efficiently delivered into hepatic cells and HCV genome translation was suppressed more than 70% through sequestration of miR-122 in cytoplasm. PNAs were readily released from the PNA-DNA hybrid in the low pH environment of the endosome. The present study indicates that transfection of PNA-DNA hybrid molecules using galactosylated cationic liposomes can be used as an efficient non-viral carrier for antagomir PNAs targeted to hepatocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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