Bis-[dipyrido[3,2-$\alpha$:2',3'-c]phenazine)$_2$(1,10-phenanthroline)$_2Ru_2$]$^{2+}$ complexes (bis-Ru(II) complexes) tethered by linkers of various lengths were synthesized and their binding properties to DNA investigated by normal absorption and linear dichroism spectra, and fluorescence techniques in this study. Upon binding to DNA, the bis-Ru(II) complex with the longest linker (1,3-bis-(4-pyridyl)-propane), exhibited a negative $LD^r$ signal whose intensity was as large as that in the DNA absorption region, followed by a complicate $LD^r$ signal in the metal-to-ligand charge transfer region. The luminescence intensity of this bis-Ru(II) complex was enhanced. The observed $LD^r$ and luminescence results resembled that of the [Ru(1,10-phenanthroline)$_2$ dipyrido[3,2-$\alpha$:2',3'-c]phenazine]$^{2+}$ complex, whose dipyrido[3,2-$\alpha$:2',3'-c]phenazine (dppz) ligand has been known to intercalate between DNA bases. Hence, it is conclusive that both dppz ligands of the bis-Ru(II) complex intercalate. The binding stoichiometry, however, was a single intercalated dppz per ~ 2.3 bases, which violates the "nearest binding site exclusion" model for intercalation. The length between the two Ru(II) complexes may be barely long enough to accommodate one DNA base between the two dppz ligands, but not for two DNA bases. When the linker was shorter (4,4'-bipyridine or 1,2-bis-(4-pyridyl)-ethane), the magnitude of the LD in the dppz absorption region, as well as the luminescence intensity of both bis-Ru(II) complexes, was half that of the bis-Ru(II) complex bearing a long linker. This observation can be elucidated by a model whereby one of the dppz ligands intercalates while the other is exposed to the aqueous environment.
To quantify the presence of mercuric ions in aqueous solution, double-stranded DNA (dsDNA) of poly(dT) was employed using a light switch compound, $Ru(phen)_2(dppz)^{2+}$ (1) which is reported to intercalate into dsDNA of a right-handed B-form. Addition of mercuric ions induced the dehybridization of poly(dT)${\cdot}$poly(dA) duplexes to form a hairpin structure of poly(dT) at room temperature and the metal-to-ligand charge transfer emission derived from the intercalation of 1 was reduced due to the dehybridization of dsDNA. As the concentration of $Hg^{2+}$ was increased, the emission of 1 progressively decreased. This label-free emission method had a detection limit of 0.2 nM. Other metal ions, such as $K^+$, $Ag^+$, $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Co^{2+}$, $Ni^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Cd^{2+}$, $Cr^{3+}$, $Fe^{3+}$, had no significant effect on reducing emission. This emission method can differentiate matched and mismatched poly(dT) sequences based on the emission intensity of dsDNA.
The ionic strength dependent binding mode of 9-aminoacridine (9AA), a well-known DNA intercalator, to DNA is studied by flow linear dichroism, circular dichroism, fluorescence techniques and equilibrium dialysis. The DNA-bound 9AA exhibits spectral properties corresponding to the intercalative binding mode disregarding the salt concentrations; the angle between the long-axis transition moment of the 9AA molecule and DNA helix axis is calculated to be about 65°, indicating a significant deviation from the classical intercalation. At low salt concentrations, however, upwards bending curve in Stern-Volmer plot is observed (where 9AA is a fluorophore and DNA a quencher), indicating the coexistence of both static and dynamic quenching mechanisms or the existence of an additional binding site.
Some of the benzopyrene (BP)-DNA adduct are known to build intercalated motif between flanking base pairs in damaged DNA depending on the structural condition. The size of benzopyrene itself is definitely not comparable with any of the DNA bases and thus the question whether the lesion of some base pair by insertion of benzopyrene can happen with or without a dramatic distortion of the helical structure is a highly interesting theme. In this work we used a molecular dynamics simulation based on the theory of molecular mechanics. The specific consequences about the structural properties of the intercalated structures and benzopyrene motif in minor groove of the double helix are deduced after 5 ns simulation time.
Detection of exon 19 deletion mutation in the epidermal growth factor receptor (EGFR) gene, which results in increased and sustained phosphorylation of EGFR, is important for diagnosis and treatment guidelines in non-small-cell lung cancer. Here, we have developed a simple and convenient detection system using the interaction between G-quadruplex and fluorophore thioflavin T (ThT) for discriminating EGFR exon 19 deletion mutant DNA from wild type without a label and quencher. In the presence of exon 19 deletion mutant DNA, the probe DNAs annealed to the target sequences were transformed into G-quadruplex structure. Subsequent intercalation of ThT into the G-quadruplex resulted in a light-up fluorescence signal, which reflects the amount of mutant DNA. Due to stark differences in fluorescence intensity between mutant and wild-type DNA, we suggest that the induced G-quadruplex structure in the probe DNA can report the presence of cancer-causing deletion mutant DNAs with high sensitivity.
In order to study the role of C-terminal aromatic region of T4 endonuclease V in the interaction with substrate DNA, NMR and Fluorescence spectrum were recorded. Analysis of flu orescence emission spectra showed that C-terminal region of T4 endonuclease V is in or very near the binding site. In the HSQC spectrum of $^{15}N$-Tyr-labeled T4 endonuclease V*DNA complex, the broadening of a peak was observed. It is presumed that this peak corresponds to one among three tyrosine residues which belong to the WYKYY segment of C-terminal region of T4 endonuclease V. Interactions of peptide fragments consisting of C-terminal residues of T4 endonuclease V with DNAs(TT-, T^T-DNA) were investigated by NMR and Fluorescence experiment. The results suggest that two peptide fragments themselves bind to DNAs and their binding pattern is not an intercalation mode.
The interactions of Cu(II)-meso-Tetrakis(n-N-methylpyridiniumyl)porphyrin (n = 2,3,4), respectively referred to as o-, m- and p-CuTMPyP, and DNA, poly$[d(A-T)_2]$ and poly$[d(G-C)_2]$ were investigated by circular and linear dichroism (CD and LD). In the o-CuTMPyP case, in which the rotation of the pyridinium ring is prevented, the shape of the CD spectrum when associated to DNA and poly$[d(A-T)_2]$ resembles and is characterized by a positive band at a low drug to DNA concentration ratio (R ratio) and is bisignate at a high R ratio. The former CD spectrum shape has been attributed to porphyrin that is bound monomerically outside of DNA while the latter can be attributed to those that are stacked. When o-CuTMPyP is bound to poly$[d(G-C)_2]$, the excitonic CD appeared at a relatively high R ratio. In contrast, a characteristic negative CD band in the Soret region was apparent for both m- and p-CuTMPyP when bound to DNA and poly$[d(G-C)_2]$ at the low R ratios, indicating that the porphyrin molecule intercalates. However, the DNA is bent near the intercalation site and the plane of the porphyrin molecule tilts relative to the DNA helix axis, as judged by the magnitude of the reduced LD. Various stacking patterns were identified by the shape of the CD spectrum for m- and p-CuTMPyP when bound to poly$[d(A-T)_2]$. Three species for the former complex and two for the latter complex were found which may reflect the extent of the stacking.
Park, Hye-Seo;Kim, Eun-Hee;Kang, Mi-Ran;Chung, In-Kwon;Cheong, Chae-Joon;Lee, Weon-Tae
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.25
no.10
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pp.1559-1563
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2004
The topoisomerase II poisoning effect of certain protoberberine alkaloids is associated with anti-cancer activity. Structure-activity relationships of protoberberine analogues substituted on the ring protons reveal that substitution at the C19 position is an important determinant of biological activity. In this study, the effects of substituent modification at the C19 position on the interaction of protoberberines with DNA are determined using UV and NMR spectroscopy. The line broadening effect on aliphatic resonances, chemical shift changes of the imino protons of HP14 upon berberine and berberrubine binding to HP14, and the rate of the exchange process between protoberberine analogs bound indicate that berberrubine binds HP14 more specifically than berberine. In addition, the free HP14 is altered by the substituent at the 19-position. UV spectra of berberrubine have shown a hypochromic effect together with a slight red shift, which are usually regarded as characteristics of DNA intercalation. These results are consistent with our previous report that the berberrubine is partially intercalated with HP14 with molar ratio 1 : 1, whereas a non-specific interaction is predominant between the berberine and HP14.
Objectives : We tried to observe the fluorescence anisotropy and intensity of ethidium ion in the intercalating binding interaction between DNA and ethidium ions in the presence of berberine, and then tried to explain the effect of berberine on the intercalating interaction of ethidium ion with DNA. Methods : DNA(calf thymus DNA), berberine and ethidium bromide(EtBr) were purchased from Sigma-Aldrich Co. Proper amount of each compound was dissolved in 20 mM sodium phosphate buffer(pH 7.0) containing 100 mM of NaCl to prepare stock solutions. Collections of the fluorescence anisotropy and intensity data were performed on JASCO FP-8300 spectrofluorometer equipped with a polarizer and a Peltier temperature controller. The excitation of ethidium ion was done at 550 nm and the emission data were collected at 600 nm. For Stern-Volmer plot, the fluorescence data were collected at $18^{\circ}C$ and $30^{\circ}C$. Results : According to the results of this research, the weak competitive binding pattern between ethidium ion and berberine appeared in binding with DNA at low ratio of DNA to ethidium ion. But at high ratio of DNA to ethidium ion, this weak competition disappeared. Instead, berberine might bind to DNA by intercalating way. In other words, berberine could de-intercalate ethidium ion from DNA at low concentration of DNA relative to ethidium ion, but could not at high concentration of DNA relative to ethidium ion. In addition, the mechanism of fluorescence quenching of ethidium ion could also proceed differently, depending on the ratio of the amount of DNA to that of ethidium ion. Conclusions : The effect of berberine on the DNA-ethidium ion intercalating interaction could work differently, depending on the relative ratio of the amount of DNA to that of ethidium ion. This study also showed that fluorescence anisotropy analysis is very useful method to obtain detailed information for investigation of the complex binding interactions. In order to fully understand the mechanism of action of the pharmacological effect by berberine, studies on the effect of berberine on the action of proteins such as various enzymes closely related to berberine-induced medicinal effects should be continued.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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